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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats Représentatifs
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

Ce protocole vise à plaquer de manière stable des assembloïdes fusionnés dorsaux-ventraux sur des réseaux multi-électrodes pour modéliser l’épilepsie in vitro.

Résumé

Les organoïdes du cerveau humain sont des structures tridimensionnelles (3D) dérivées de cellules souches pluripotentes humaines (hPSC) qui récapitulent des aspects du développement du cerveau fœtal. La fusion in vitro d’organoïdes cérébraux dorsaux avec des organoïdes cérébraux spécifiés localement génère des assembloïdes, qui ont des microcircuits fonctionnellement intégrés avec des neurones excitateurs et inhibiteurs. En raison de leur complexité structurelle et de la diversité de leur population de neurones, les assembloïdes sont devenus un outil in vitro utile pour étudier l’activité aberrante des réseaux. Les enregistrements multi-électrodes (MEA) servent de méthode pour capturer les potentiels de champ électrique, les pointes et la dynamique de réseau longitudinale d’une population de neurones sans compromettre l’intégrité de la membrane cellulaire. Cependant, il peut être difficile de faire adhérer des assembloïdes sur les électrodes pour des enregistrements à long terme en raison de leur grande taille et de leur surface de contact limitée avec les électrodes. Ici, nous démontrons une méthode permettant de plaquer des assembloïdes sur des plaques MEA pour enregistrer l’activité électrophysiologique sur une période de 2 mois. Bien que le protocole actuel utilise des organoïdes corticaux humains, il peut être largement adapté à des organoïdes différenciés pour modéliser d’autres régions du cerveau. Ce protocole établit un test électrophysiologique longitudinal robuste pour étudier le développement d’un réseau neuronal, et cette plateforme a le potentiel d’être utilisée dans le criblage de médicaments pour le développement thérapeutique dans l’épilepsie.

Introduction

Les organoïdes cérébraux dérivés de cellules souches pluripotentes humaines (hPSC) sont des structures 3D spatialement auto-organisées reflétant l’architecture tissulaire et les trajectoires de développement in vivo. Ils sont composés de plusieurs types de cellules, y compris des progéniteurs (cellules neuroépithéliales, glie radiale, progéniteurs neuronaux, progéniteurs gliaux), des neurones (neurones excitateurs de type cortical et interneurones inhibiteurs) et des cellules gliales (astrocytes et oligodendrocytes)1,2. Les assembloïdes représentent la prochaine génér....

Protocole

Toutes les procédures expérimentales décrites ci-dessous ont été menées conformément aux directives éthiques du conseil d’examen institutionnel de la faculté de médecine de l’Université du Michigan et du comité de surveillance de la recherche sur les cellules souches pluripotentes humaines. Les lignées iPSC utilisées dans ce protocole et les expériences représentatives ont été dérivées de fibroblastes de prépuce humain obtenus d’une source commerciale. Les détails des lignées cellulaires, des réactifs et de l’équipement utilisés dans cette étude sont répertoriés dans la table des matériaux.

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Résultats Représentatifs

Des assembloïdes dorsaux-ventraux humains ont été placés sur une plaque MEA à 6 puits (n = 6 par différenciation, 3 différenciations), chaque puits contenant 64 électrodes (Figure 2A). Neuf des dix assembloïdes prévus pour l’enregistrement longitudinal ont été solidement fixés aux électrodes pendant plus de 50 jours in vitro (figure 2D). 6 des 8 assembloïdes désignés p.......

Discussion

Des méthodes basées sur la MEA pour l’enregistrement électrophysiologique de l’activité du réseau dans des assembloïdes dérivés d’iPSC ont été utilisées pour la modélisation in vitro de l’épilepsie22,23. Cette plateforme proposée intégrant des connexions synaptiques excitatrices et inhibitrices a le potentiel d’aborder les mécanismes de l’hyperexcitabilité neuronale et le rôle des interneuro.......

Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont pas de divulgations pertinentes.

Remerciements

Ce manuscrit a été soutenu par R01NS127829 NIH/NINDS (LTD). La figure 1 a été générée à l’aide de biorender.com.

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matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
10 cm Corning Non TC-treated culture dishesCorning08-772-32For suspension culture on the shaker
100 mL Beaker Fisher ScientificFB100100
100% EthanolFisher ScientificBP28184-4L
2-Mercaptoethanol (β-ME)Thermo Fisher21985023Working concentration 100 μM
48-well cell culture plateFisher Scientific50-202-140
6-well cell culture plateFisher Scientific07-200-83
Aggrewell 800Fisher Scientific501974754
Allegra X-14R Refrigerated CentrifugeBeckman Coulter BE-AX14R
AllopregnanoloneCayman16930Suspended 5mg into DMSO to get 1 mM stock solution. Aliquot and freeze at −80 °C. Dilute at 1:10,000 for use. Working concentration 100 nM.
Automated cell counterThermo FisherAMQAX2000
Axion CytoView MEA 6-well plates Axion BiosystemsM384-tMEA-6B
Axion Maestro MEA platformAxion BiosystemsMaestroWith temp environmental control
B-27 supplement (regular, with Vitamin A)Thermo Fisher21985023
B-27 supplement (without Vitamin A)Thermo Fisher12587010
Basement membrane matrix- GeltrexThermo FisherA1569601
Bead bathFisher Scientific10-876-001Isotemp
Benchtop inverted microscopeOlympusCKX53Kept in laminar flow clean bench
BicucullineSigma-Aldrich14340Working concentration 10 μM
BleachCLOROX67619-26
Borate buffer 20xThermo Fisher28341Working concentration at 1x
BrainPhys mediaStemCell Technologies5790
Cell dissociation reagent (StemPro Accutase)Thermo FisherA1110501
Celltron orbital shakerHT-Infors I69222 
Detergent/enzyme (Terg-A-Zyme)Sigma-AldrichZ273287Working concentration 1% m/v
DMEM/F12 + HEPES/L-GlutamineThermo Fisher113300
DMSOSigma-Aldrich67685
DorsomorphinSigma-AldrichP5499Dissolve 5mg into DMSO to get 10 mM stock solution. Aliquot and freeze at −20 °C. Dilute at 1:2000 for use. (working concentration 5 μM)
D-PBS w/o calcium or magnesiumThermo Fisher14190144
Glial cell line-derived neurotrophic (GDNF)Peprotech450-10Dissolve 100 μg in 1mL of PBS to 100 μg/mL. Aliquot and freeze at −20 °C. Dilute at 1:5000 for use. (working concentration 20 ng/mL).
GlutaMAX supplementThermo Fisher35050061
HemacytometerElection Microscopy Sciences63510-20
HEPESThermo Fisher15630080
Heraguard ECO Clean BenchThermo Fisher51029692
Humidity controlled cell culture incubatorThermo Fisher370set to 37 °C, 5% CO2
IWP-2SelleckchemS7085Aliquot and freeze at −80 °C. It will precipitate if thawed at room temp. Frozen aliquots should be placed directly into 37 °C before use.
Knockout serum replacement (KOSR)Thermo Fisher10828010
mTeSRplus (medium + supplements)StemCell Technologies100-0276cGMP, stabilized feeder-free medium for human iPSC cells
N2 supplementThermo Fisher17502048
Neurobasal AThermo Fisher21103049
Non-essential amino acids (NEAA)Thermo Fisher11140050
NT3Peprotech450-03Dissolve 100 μg in 1mL of PBS to 100 μg/mL. Aliquot and freeze at −20 °C. Dilute at 1:5000 for use. (working concentration 20 ng/mL).
NuFF Human neonatal foreskin fibroblastsMTI-GlobalStemGSC-3002
ParafilmPARAFILMP7793
Penicilin/StreptomycinThermo Fisher15140122
Pipette (P10, P200, P1000)EppendorfEP4926000034Autoclaved cut P1000 tips for organoid collection
Poly (Ethyleneimine) (PEI)Sigma-AldrichP3143Dilute stock in sterile borate buffer. Working concentration 0.07%. See details in manuscript.
Recombinant human epidermal growth factor (EGF)R&D Systems236-EG-200Suspended in PBS. Aliquot and freeze at -20 °C.
Recombinant Human fibroblast growth factor (FGF)-basic Peprotech100-18BSuspended in PBS. Aliquot and freeze at -20 °C.
Recombinant human-brain-derived neurotrophic factor (BDNF)Peprotech450-02Centrifuge briefly before reconstitution. Dissolve 100 μg in 1 mL of PBS to 100 μg/mL. Aliquot and freeze at −20 °C. Dilute at 1:5000 for use. (working concentration 20 ng/mL).
Retinoic acid (RA)Sigma-AldrichR2625Dissolve 100 mg into 3.3 mL of DMSO to get 100 mM stock solution. Aliquot the stock 100 μL/tube and freeze at −80 °C. Take 200 μL of 100 mM stock and dilute 10x (add 1.8 mL of DMSO) to make 10 mM stock. Aliquot 50 μL/tube and store at −80 °C. Dilute at 1:100,000 for use. (working concentration 100 nM).
ROCK inhibitor Y-27632Tocris12541:200 from 10 mM stock
SAG (smoothened agonist)SelleckchemS7779Aliquot and freeze at −80 °C. Stock concentration 1mM. Use at 1:10,000 dilution (working concentration 100 nM).
SB-431542Tocris1614Dissolve 5mg into 1.3 mL of DMSO to get 10 mM stock solution. Aliquot and freeze at −80 °C. Dilute at 1:1000 for use. (working concentration 10 μM)
Serological pipette fillerFisher Scientific14-387-166
Steriflip vacuum tube top filterSigma-AldrichSE1M179M6
Sterile cell culture hoodsBaker CompanySG-600
Trypan blue solution (0.4%)Thermo Fisher15250061
Trypsin-EDTA (0.25%)Thermo Fisher25200056
Zoom stereomicroscopeOlympusSZ61/SZ51Kept in laminar flow clean bench

Références

  1. Lancaster, M. A., Knoblich, J. A. Organogenesis in a dish: Modeling development and disease using organoid technologies. Science. 345 (6194), 1247125 (2014).
  2. Tanaka, Y., et al.

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