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  • 摘要
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  • 参考文献
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摘要

此处描述了植物体内核苷酸/核苷酸定量的精确和可重复的方法。此方法采用 HPLC-MS/MS。

摘要

核苷酸/核苷酸是核酸、糖体和酶、细胞信号分子和能量载体的构建基块,它们参与许多细胞活动。在这里,我们描述了一种快速可靠的方法,在植物核苷酸/核苷酸含量的绝对资格。简言之,用1mL的萃取缓冲液(甲醇、乙酮三酯和水的比例为2:2:1)提取了100毫克的均质植物材料。后来,样品被浓缩在冷冻干燥机中五次,然后注射到HPLC-MS/MS中。 核苷酸在多孔的石墨碳(PGC)柱上分离,核苷酸在C18柱上分离。每个核苷酸和核苷酸的质量转换都由质谱法监测。核苷酸和核苷酸的内容是根据其外部标准(ESTD)进行量化的。因此,使用这种方法,研究人员可以很容易地量化不同植物中的核苷酸/核苷酸。

引言

核苷酸/核苷酸是所有生物体中的核心代谢成分,核酸和许多凝血素(如烟酰胺腺苷二聚氰胺)的前体,在磷脂、甘油脂和多糖等大分子的合成中非常重要。从结构上讲,核苷酸包含一个核碱基,它可以是腺苷、瓜宁、尿素、细胞氨酸或胸腺素,以及糖莫伊蒂,它可以是核糖或脱氧核糖酶1,2。核苷酸有多达三个磷酸盐组结合到核苷酸3的糖雾的5碳位置。植物中核苷酸的新陈代谢对种子发芽和叶生长至关重要。为了更好地了解它们在植物发育中的生理作用,应建立体内不同核苷酸/核苷酸的绝对定量方法。

测量核苷酸/核苷酸的最常用方法之一采用高性能液相色谱 (HPLC) 和紫外可见 (UV-VIS) 探测器 4、7、8、9、10、11。2013年,使用HPLC,达恩克和维特量化了几种类型的核苷酸在阿拉伯多普西萨利亚纳7。与野生类植物相比,他们在瓜诺辛脱氨酶基因的T-DNA插入突变体中发现了增强的瓜诺辛含量。另一种丙酰胺核苷,环丙胺,也定量检测在植物使用这种方法,这导致鉴定一个真正的赛迪丁脱氨酶基因4。然而,基于紫外线探测器,这种方法不能轻易区分具有相似光谱和保留时间的核苷,例如瓜诺辛或异种氨酸。HPLC方法的检测极限相对较高,因此,它常用于测量体内核苷含量高,如青氨酸、尿氨酸、瓜诺辛等。

此外,气相色谱与质谱学(GC-MS)相结合,也可用于核苷测量。受益于它,哈克等。在A.thaliana12的种子中成功检测出尿素和尿酸,这是核苷代谢通路的下游代谢物。然而,GC通常用于分离挥发性化合物,但不适合热阴唇物质。因此,液相色谱与质谱学(LC-MS/MS)相结合可能是一种更合适、更准确的分析技术,用于内在识别、分离和定量核苷酸/核苷酸13、14。先前的几项研究报告说,HILIC列可用于核苷酸和核苷酸分离15,16和同位素标记的内部标准被用于化合物定量17。但是,这两个组件都相对昂贵,尤其是商业同位素标记标准。在这里,我们报告一种经济适用的LC-MS/MS方法,用于核苷酸/核苷酸测量。这种方法已经成功地用于不同核苷酸/核苷酸的量定量,包括ATP,N6-甲基-AMP,AMP,GMP,尿丁,青氨酸,和伪尿素1,5,6,18,在植物和德罗索菲拉。此外,我们在这里报告的方法也可以用于其他生物体。

研究方案

1 植物生长和材料收集

  1. 确保 阿拉伯多普西斯 种子在70%乙醇中消毒10分钟,并在用半强度的穆拉希格和Skoog营养物质制备的阿加板上播种。
  2. 在 4 °C 的黑暗下孵育含有 阿拉伯多虫 种子的板,持续 48 小时,然后在 22 °C 和 8 h 20 °C 的 16 h 光下将其转移到受控生长室中, 55 微米-2 s-1 下。
  3. 收获100毫克2周幼苗(新鲜重量),并冷冻在液氮中,用于代谢物提取。
    注意:研究人员应适当佩戴手套、防护眼镜和实验室外套,以避免材料收集过程中的人体组织污染。

2 核苷酸/核苷酸提取

  1. 在冷前搅拌机磨坊中使用 7-8 个钢珠将 100 毫克冷冻植物组织磨碎 5 分钟,频率为 60 Hz。
  2. 准备提取溶液,其中含有甲醇,乙酮三酯和水的比例为2:2:1。
  3. 用1mL的提取溶液补充同质化材料(包括大多数代谢物,但不包括蛋白质)。
  4. 在 4 °C 下,在 15 分钟内将由此产生的溶液以 12,000 x g 的速度离心。
  5. 将悬浮液的0.5 mL转移到新的1.5mL管中,并冻结在液氮中。
  6. 将冷冻样品蒸发在冷冻桶中,在 0.1 mL 中再喷出 5% 的甲基甲基三甲基和 95% 的水。
  7. 在 40,000 x g 下,在 4°C 下 10 分钟内将由此产生的溶液 (0.1 mL) 离心。 将超自然物装在小瓶中,用于 LC-MS/MS 测量。

3 LC-MS/MS 测量

  1. 通过在2升双离子水中溶解1.1克醋酸铵(移动A阶段),准备10m醋酸铵缓冲器。将pH到9.5调整10%的铵和醋酸。
  2. 准备2升超纯100%甲醇(移动阶段B1)进行核苷测量。此外,准备2升超纯100%乙酰胺(移动阶段B2)用于核苷酸测量。
  3. 将从步骤 2.7 中提取的每个样本的 0.02 mL 预处理代谢物注入带有二进制泵 (LC) 的 HPLC 系统,并配以三重四足质谱仪 (MS)。
    注意:HPLC 系统采用 C18 列(50 x 4.6 mm,颗粒大小 5 μm; 在 25 °C)缓冲与移动阶段 A 和 B1 (图 1A)为核苷分离,并使用多孔图形碳 (PGC) 列 (50 x 4.6 毫米, 粒子大小 5 μm; 工作在 25 °C) 与移动阶段 A 和 B2 (图 1B)为核苷酸分离.每个样本被注射三次用于技术复制。
  4. C18 列的表 1 中显示的方法以及 PGC 列 表 2 中显示的方法进行编程。设定0.65 mLmin-1的流量。
    注:质量转换(表3)由质谱仪监测。包含规范核苷酸和改性核苷酸的8个核苷酸和5个核苷酸的质量谱分析条件列在 表3中。
  5. 记录每个目标化合物的峰值区域(图 1)。

4 代标准校准曲线

  1. 将六个样本萃取汇集在一起,这些样本是按照第 2 节的描述产生的,并漩涡。然后,再次引用它到六个提取(相同的音量),以获得每个背景。
  2. 分别在这六个提取物中加入六种不同浓度的每个标准,并在步骤 3.3 之后逐一注入。
  3. 通过步骤 3.4 和 3.5 中描述的质量转换,以不同浓度记录每个标准的峰值区域。
  4. 绘制峰值区域与每个标准的名义浓度,以生成六点曲线。
    注:步骤 3.5 中记录的核苷酸/核苷酸的峰值区域应落在标准校准曲线范围内。
  5. 计算每个标准化合物的直线方程:Y =aX + b

5 代谢物的定量

  1. 使用步骤 3.5 记录的峰值区域和步骤 4.5 中的方程计算代谢物的内容。

结果

在这里,我们展示了N1-甲基叶氨酸的识别和定量,一种已知的改性核苷,在2周大的阿拉伯多 普西斯 野生类型(Col-0)幼苗为例。质谱剖面图表明,N1-甲基甲基诺辛标准产生的产品离子为150m/z和133m/z(图2A),在Coll-0提取(图2B)中也观察到相同的轮廓。由于产品离子的丰度高达150米/z,因此选择282.1至150?...

讨论

生物体含有各种核苷酸/核苷酸,包括规范和异常核苷酸。然而,它们的起源和代谢端点,特别是经过修改的核苷酸,仍然模糊不清。此外,目前对核苷酸/核苷酸代谢功能和平衡的理解还有待探索和扩展。为了调查它们,需要采用精确和金标准的方法来识别和量化这些代谢物。在这里,我们描述了一个使用质量谱进行核苷酸/核苷酸检测的协议。以N1-甲基甲基诺辛为例,该方法可检测低至0....

披露声明

作者没有利益冲突要披露。

致谢

这项工作得到了中央大学基础研究基金(KJQN202060)、中国国家自然科学基金(31900907)、江苏省自然科学基金(BK20190528)、国际遗传工程和生物技术中心(CRP/CHN20-04_EC)和M.C的财政支持。 中央大学基础研究基金(LGZD202004)至X.L.

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
acetonitrileSigma-Aldrich1000291000
adenosineSigma-AldrichA9251-1G
ammonium acetateSigma-Aldrich73594-100G-F
AMPSigma-Aldrich01930-5G
CMPSigma-AldrichC1006-500MG
cytidineSigma-AldrichC122106-1G
GMPSigma-AldrichG8377-500MG
guanosineSigma-AldrichG6752-1G
Hypercarb columnThermo Fisher Scientific GmbH35005-054630
IMPSigma-Aldrich57510-5G
inosineSigma-AldrichI4125-1G
methanolSigma-Aldrich34860-1L-R
N1-methyladenosineCarbosynthNM03697
O6-methylguanosineCarbosynthNM02922
Murashige and Skoog MediumDuchefa BiochemieM0255.005
Polaris 5 C18A columnAgilent TechnologiesA2000050X046
pseudouridineCarbosynthNP11297
UMPSigma-AldrichU6375-1G
uridineSigma-AldrichU3750-1G

参考文献

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  2. Zrenner, R., Stitt, M., Sonnewald, U., Boldt, R. Pyrimidine and purine biosynthesis and degradation in plants. Annual Review of Plant Biology. 57, 805-836 (2006).
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  6. Chen, M., Witte, C. -. P. A kinase and a glycosylase catabolize pseudouridine in the peroxisome to prevent toxic pseudouridine monophosphate accumulation. The Plant Cell. 32 (3), 722-739 (2020).
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