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该协议利用光片成像来研究斑马鱼幼虫的心脏收缩功能,并通过细胞跟踪和交互式分析深入了解心脏力学。
斑马鱼是一种有趣的模式生物,以其非凡的心脏再生能力而闻名。 在体内 研究收缩的心脏对于深入了解损伤引起的结构和功能变化至关重要。然而,获得斑马鱼心脏的高分辨率和高速 4 维(4D、3D 空间 + 1D 时间)图像以评估心脏结构和收缩力仍然具有挑战性。在这种情况下,使用内部光片显微镜(LSM)和定制的计算分析来克服这些技术限制。该策略涉及LSM系统构建、回顾性同步、单细胞跟踪和用户导向分析,使人们能够以单细胞分辨率研究转基因 Tg(myl7:nucGFP) 斑马鱼幼虫的整个心脏的微观结构和收缩功能。此外,我们能够进一步结合小分子化合物的显微注射,以精确和可控的方式诱导心脏损伤。总体而言,该框架允许人们跟踪生理和病理生理变化,以及心脏形态发生和再生过程中单细胞水平的区域力学。
斑马鱼 (Danio rerio) 是一种广泛使用的模式生物,用于研究心脏发育、生理学和修复,因为它具有光学透明度、遗传可处理性和再生能力 1,2,3,4。心肌梗死后,虽然结构和功能变化会影响心脏射血和血流动力学,但技术限制继续阻碍以高时空分辨率研究心脏再生过程中动态过程的能力。例如,传统的成像方法,如共聚焦显微镜,在成像深度、时间分辨率或光毒性方面存在局限性,无法捕捉多个心动周期期间的动态变化和评估心脏收缩功能5。
光片显微镜代表了一种最先进的成像方法,它通过快速扫描激光扫过心脏的心室和心房,获得具有增强的时空分辨率和可忽略不计的光漂白和光毒性效应的详细图像,从而成功地解决了这些问题6,7,8,9,10,11。<....
这项研究的批准由德克萨斯大学达拉斯分校的机构动物护理和使用委员会 (IACUC) 批准,协议编号为 #20-07。本研究采用 Tg(myl7:nucGFP) 转基因斑马鱼幼虫12 。所有数据采集和图像后处理均使用具有研究或教育许可证的开源软件或平台进行。这些资源可根据作者的合理要求获得。
1. 斑马鱼繁殖和胚胎显微注射
定时:2天
目前的方案包括三个主要步骤:斑马鱼制备和显微注射、光片成像和 4D 图像重建,以及细胞跟踪和 VR 交互。允许成年斑马鱼交配,收集受精卵,并根据所提出的实验的需要进行显微注射(图1)。这一步为探索斑马鱼在心脏发育和再生研究中的应用提供了一个切入点,它在随后的成像和分析中也起着至关重要的作用。使用定制的 LSM 系统在不同阶段(从 3 dpf 到 7 dpf)对收缩?.......
斑马鱼模型与工程方法的整合对于心肌梗塞、心律失常和先天性心脏缺陷的体内探索具有巨大的潜力。利用其光学透明度、再生能力以及与人类的遗传和生理相似性,斑马鱼胚胎和幼虫已被广泛用于研究 1,2,4。光片成像卓越的时空分辨率、最小的光损伤和光学切片能力使其在斑马鱼幼虫心脏形态和收缩功能的 4D 研究中?.......
作者没有要披露的利益冲突。
我们感谢波士顿儿童医院的 Caroline Burns 博士慷慨地分享转基因斑马鱼。我们感谢伊丽莎白·伊巴涅斯女士在德克萨斯大学达拉斯分校帮助饲养斑马鱼。我们也感谢德克萨斯大学达拉斯分校的D孵化器成员提供的所有建设性意见。这项工作得到了 NIH R00HL148493 (Y.D.)、R01HL162635 (Y.D.) 和 UT Dallas STARS 计划 (Y.D.) 的支持。
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
RESOURCE | SOURCE/Reference | IDENTIFIER | |
Animal models | |||
Tg(myl7:nucGFP) transgenic zebrafish | Burns Lab in Boston Children's Hospital | ZDB-TGCONSTRCT-070117-49 | |
Software and algorithms | |||
MATLAB | The MathWorks Inc. | R2023a | |
LabVIEW | National Instruments Corporation | 2017 SP1 | |
HCImage Live | Hamamatsu Photonics | 4.6.1.2 | |
Python | The Python Software Foundation | 3.9.0 | |
Fiji-ImageJ | Schneider et al.18 | 1.54f | |
3DeeCellTracker | Chentao Wen et al.15 | v0.5.2 | |
Unity | Unity Software Inc. | 2020.3.2f1 | |
Amira | Thermo Fisher Scientific | 2021.2 | |
3D Slicer | Andriy Fedorov et al.17 | 5.2.1 | |
ITK SNAP | Paul A Yushkevich et al.16 | 4 | |
Light-sheet system | |||
Cylindrical lens | Thorlabs | ACY254-050-A | |
4X Illumination objective | Nikon | MRH00045 | |
20X Detection objective | Olympus | 1-U2M585 | |
sCMOS camera | Hamamatsu | C13440-20CU | |
Motorized XYZ stage | Thorlabs | PT3/M-Z8 | |
Two-axis tilt stage | Thorlabs | GN2/M | |
Rotation stepper motor | Pololu | 1474 | |
Fluorescent beads | Spherotech | FP-0556-2 | |
473nm DPSS Laser | Laserglow | R471003GX | |
532nm DPSS laser | Laserglow | R531003FX | |
Microinjector and vacuum pump | |||
Microinjector | WPI | PV850 | |
Vacuum pump | Welch | 2522B-01 | |
Pre-Pulled Glass Pipettes | WPI | TIP10LT | |
Capillary tip for gel loading | Bio-Rad | 2239912 | |
Virtual reality hardware | |||
VR headset | Meta | Quest 2 | |
30mg/L PTU solution | |||
PTU | Sigma-Aldrich | P7629 | |
1X E3 working solution | - | - | |
1% Agarose | - | - | |
Low-melt agarose | Thermo Fisher | 16520050 | |
Deionized water | - | - | |
10g/L Tricaine stock solution | |||
Tricaine | Syndel | SYNC-M-GR-US02 | |
Deionized water | - | - | |
Sodium bicarbonate | Sigma-Aldrich | S6014 | |
150mg/L Tricaine working solution | |||
10g/L Tricaine stock solution | - | - | |
Deionized water | - | - | |
60X E3 stock solution | |||
Sodium Chloride | Lab Animal Resource Center (LARC), The University of Texas at Dallas | NaCl | |
Potassium Chloride | - | KCL | |
Calcium Chloride Dihydrate | - | CaCL2 x 2H2O | |
Magnesium Sulfate Heptahydrate | - | MgSO4 x 7H2O | |
RO Water | - | - | |
1X E3 working solution | |||
60X E3 stock solution | Lab Animal Resource Center (LARC), The University of Texas at Dallas | - | |
RO Water | - | - | |
1% Methylene Blue (optional) | - | C16H18ClN3S |
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