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Dieses Protokoll bietet experimentelle In-vitro-Werkzeuge zur Bewertung der Transformation menschlicher Brustzellen. Detaillierte Schritte zur Nachverfolgung der Zellproliferationsrate, der verankerungsunabhängigen Wachstumskapazität und der Verteilung von Zelllinien in 3D-Kulturen mit Kellermembranmatrix werden beschrieben.
Tumorigenese ist ein mehrstufiger Prozess, bei dem Zellen Fähigkeiten erwerben, die ihr Wachstum, überleben und verbreiten unter feindlichen Bedingungen ermöglichen. Verschiedene Tests zielen darauf ab, diese Merkmale von Krebszellen zu identifizieren und zu quantifizieren; Sie konzentrieren sich jedoch häufig auf einen einzigen Aspekt der zellulären Transformation, und tatsächlich sind mehrere Tests für ihre korrekte Charakterisierung erforderlich. Ziel dieser Arbeit ist es, Forschern eine Reihe von Instrumenten zur Verfügung zu stellen, um die zelluläre Transformation in vitro aus einer breiten Perspektive zu bewerten und so fundierte Schlussfolgerungen zu ziehen.
Eine nachhaltige proliferative Signalaktivierung ist das Hauptmerkmal von Tumorgeweben und kann leicht unter In-vitro-Bedingungen überwacht werden, indem die Anzahl der im Laufe der Zeit erreichten Bevölkerungsverdoppelungen berechnet wird. Außerdem ermöglicht das Wachstum von Zellen in 3D-Kulturen ihre Interaktion mit umgebenden Zellen, ähnlich dem, was in vivo vorkommt. Dies ermöglicht die Bewertung der zellulären Aggregation und zusammen mit der immunfluoreszenzenten Kennzeichnung von ausgeprägten zellulären Markern, Um Informationen über ein weiteres relevantes Merkmal der Tumortransformation zu erhalten: den Verlust der richtigen Organisation. Ein weiteres bemerkenswertes Merkmal transformierter Zellen ist ihre Fähigkeit, ohne Bindung an andere Zellen und an die extrazelluläre Matrix zu wachsen, die mit dem Anker-Assay ausgewertet werden kann.
Detaillierte experimentelle Verfahren zur Bewertung der Zellwachstumsrate, zur immunfluoreszenzenten Kennzeichnung von Zelllinienmarkern in 3D-Kulturen und zur Erprobung des verankerungsunabhängigen Zellwachstums in weichem Agar werden bereitgestellt. Diese Methoden sind für primäre Epithelzellen (BPEC) der Brust aufgrund ihrer Relevanz bei Brustkrebs optimiert; Nach einigen Anpassungen können jedoch Prozeduren auf andere Zelltypen angewendet werden.
Für die Entwicklung von Neoplasma sind mehrere aufeinanderfolgende Ereignisse erforderlich. Im Jahr 2011 beschrieben Hanahan und Weinberg 10 Fähigkeiten, die das Wachstum, überleben und die Verbreitung transformierter Zellen ermöglichen: die sogenannten "Hallmarks of Cancer"1. Die hier beschriebene Methodik stellt drei verschiedene Werkzeuge zur Bewertung der in vitro zellulären Transformation zusammen, indem sie sich auf einige der Besonderheiten der Tumorzellen konzentriert. Diese Techniken bewerten die Zellproliferationsrate, das Verhalten von Zellen, wenn sie in 3D kultiviert werden, und ihre Fähigkeit, Kolonien mit Ankerunabhängigkeit zu b....
Menschliche Proben, die in den folgenden Experimenten verwendet wurden, wurden aus Reduktionsmammoplastiken gewonnen, die in der Clénica Pilar Sant Jordi (Barcelona) im Rahmen der Standardprozedur-Genehmigung durchgeführt wurden. Sofern nicht anders angegeben, werden alle Verfahren in einem biologischen Sicherheitskabinett der Klasse II durchgeführt.
1. In-vitro-Kultur der menschlichen Brustepithelzellen und Wachstumskurven-Plot-Aufbau
Ein experimentelles Modell der zellulären Transformation mit der Einführung von drei genetischen Elementen in BPECs wurde gewählt, um repräsentative Ergebnisse der onkogenen Transformation zu generieren6,7 ( Abbildung3). Nicht transformierte BPECs (N) wurden aus krankheitsfreiem Brustgewebe abgeleitet, wie von Ince und Kollegen6 beschrieben und gemäß dem hier angegebenen Protoko.......
Die in diesem Papier beschriebenen experimentellen Protokolle bieten nützliche Instrumente zur Bewertung der onkogenen Transformation von In-vitro-kulturierten Zellen. Jede Technik bewertet bestimmte Aspekte des Transformationsprozesses, und daher muss bei der Schlussfolgerungausarbeit aus einer einzigen Analyse besondere Aufmerksamkeit geschenkt werden. Wachstumskurven-Aufbau ist ein Ansatz, der Informationen erfordert, die bereits verfügbar sind, wenn Zellen für andere Zwecke kultiviert werden. Das macht diese Techn.......
Die Autoren haben nichts zu verraten.
Das Labor der AG wird vom spanischen Rat für nukleare Sicherheit finanziert. T.A. und A.G. sind Mitglieder einer von der Generalitat de Catalunya (2017-SGR-503) anerkannten Forschungsgruppe. MT hat einen Vertrag, der von der Wissenschaftlichen Stiftung Asociacion Espaéola Contra el Céncer [AECC-INVES19022TERR] finanziert wird. Der G.F.-Vertrag wird durch einen Zuschuss der Cellex Foundation finanziert.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1 ml Serological Pipettes | Labclinics | PLC91001 | |
1.5 ml Eppendorfs | Thermo Fisher Scientific | 3451 | Dark eppendorfs are preferred for MTT long-term storage |
10 μl Pipette tips w/o filter | Biologix | 20-0010 | |
100 ml glass bottle | With cap, autoclavable | ||
1000 μl Pipette tips w/ filter | Labclinics | LAB1000ULFNL | |
1000 μl Pipette tips w/o filter | Biologix | 20-1000 | |
15 ml Conical tubes | VWR | 525-0400 | |
2 ml Serological Pipettes | Labclinics | PLC91002 | |
200 μl Pipette tips w/ filter | Labclinics | FTR200-96 | |
5 ml Serological Pipettes | Labclinics | PLC91005 | |
50 ml Conical Tubes | VWR | 525-0304 | |
Acetone | PanReac AppliChem | 211007 | Used for 3D structure fixation prior to immunofluorescent labelling |
Agar | Sigma-Aldrich | A1296 | Used for anchorage assay |
Anti-Claudin 4 antibody | Abcam | 15104, RRID:AB_301650 | Working dilution 1:100, host: rabbit |
Anti-Cytokeratin 14 [RCK107] antibody | Abcam | 9220, RRID:AB_307087 | Working dilution 1:100, host: mouse |
Anti-mouse Cyanine Cy3 antibody | Jackson ImmunoResearch Inc. | 115-165-146, RRID:AB_2338690 | Working dilution 1:500, host: goat |
Anti-rabbit Alexa Fluor 488 antibody | Thermo Fisher Scientific | A-11034, RRID:AB_2576217 | Working dilution 1:500, host: goat |
Autoclave | |||
BioVoxxel Toolbox | RRID:SCR_015825 | ||
Cell culture 24-well Plate | Labclinics | PLC30024 | Used for 3D cultures in Matrigel. Flat Bottom |
Cell culture 6-well Plate | Labclinics | PLC30006 | Used for anchorage assay |
Cell incubator (37 ºC and 5 % CO2) | |||
Cell Strainers | Fisherbrand | 11587522 | Mesh size: 40 μm |
CellSense software | Olympus | Used to image acquisition | |
Centrifuge | |||
Cholera Toxin from Vibrio cholerae | Sigma-Aldrich | C8052 | Used to supplement cell culture medium |
Class II Biological Safety Cabinet | Herasafe | HAEREUS HS12 | |
Confocal inverted Microscope | Leica | TCS SP5 | |
Cover glasses | Witeg Labortechnik GmbH | 4600122 | 22 X 22 mm, thickness 0.13 - 0.17 mm |
DAPI | 2-(4-amidinophenyl)-1H -indole-6-carboxamidine | ||
Fetal Bovine Serum | Biowest | S1810 | Used to inactivate trypsine action |
Fiji software (ImageJ) | National Institutes of Health | RRID:SCR_002285 | Free download, no license needed |
Glass Pasteur Pipettes | |||
Glass slides | Fisherbrand | 11844782 | |
Goat Serum | Biowest | S2000 | Used for immunofluorescence of 3D structures |
Heat-Resistant Gloves | Used for agar manipulation after autoclave | ||
Heater bath (37 ºC) | Used to temper solutions prior to cell subculture | ||
Heater bath (42 ºC) | Used to keep agar warm | ||
Heating plate | Used for Matrigel dehydration | ||
Humid chamber | Used for the incubation of antibodies during immunofluorescence | ||
Ice | Used during Matrigel manipulation | ||
Ice-box | |||
Inverted Optic Microscope | Olympus | IX71 | |
Matrigel Matrix | Becton Dickinson | 354234 | Store at -20 ºC and keep cold when in use. Referred to as basement membrane matrix |
Methanol | PanReac AppliChem | 131091 | Used for 3D structure fixation prior to immunofluorescent labelling |
Micropipette | p1000, p200 and p10 | ||
Microsoft Office Excel | Microsoft | RRID:SCR_016137 | Used to calculate population doubling and to obtain growth rate equation |
MilliQ water | Referred to as ultrapure water | ||
Nail Polish | Used to seal samples after mounting | ||
Parafilm M | Bemis | PM-999 | Used to cover antibody solution during incubation |
PBS pH 7.4 (w/o calcium & magnesium) | Gibco | 10010-056 | Sterile. Used for cell subculture |
PBS tablets | Sigma-Aldrich | P4417 | Dilute in milliQ water. No sterility required. Used for immunofluorescence |
Pipette Aid | |||
Primaria T25 flasks | Corning | 353808 | Used for BPEC culture |
Scepter Automated Cell Counter | Millipore | PHCC20060 | Alternatively, use an haemocytometer |
Scissors | Used to cut pipette tips and parafilm | ||
Sterile filters 0.22 μm | Millipore | SLGP033RS | Used to filter MTT solution |
Thiazolyl Blue Tetrazolium Bromide (MTT) | Sigma-Aldrich | M2128 | Store at -20 ºC |
Triton X-100 | Sigma-Aldrich | T8787 | Used for immunofluorescence of 3D structures |
Trypsin-EDTA 10X | Biowest | X0930 | Dilute in PBS to obtain 3X solution |
Vectashield Antifade Mounting Medium | Vector Laboratories | H-1000 | |
WIT-P-NC Culture Medium | Stemgent | 00-0051 | Used for primary BPEC culture |
WIT-T Culture Medium | Stemgent | 00-0047 | Used for transformed BPEC culture |
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