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* Diese Autoren haben gleichermaßen beigetragen
Dieses Protokoll beschreibt eine Methode zur synchronen Erfassung und Co-Registrierung von intrazellulären Signalereignissen und der Sekretion von Insulin und Glukagon durch primäre humane Pseudoinseln unter Verwendung der adenoviralen Verabreichung eines zyklischen Adenosinmonophosphat (cAMP)-Biosensors, eines cAMP-Differenzdetektors in situ (cADDis) und eines Mikroperifusionssystems.
Die Langerhans-Inseln der Bauchspeicheldrüse, bei denen es sich um kleine 3D-Ansammlungen spezialisierter endokriner und unterstützender Zellen handelt, die in der gesamten Bauchspeicheldrüse verstreut sind, spielen eine zentrale Rolle bei der Kontrolle der Glukosehomöostase durch die Sekretion von Insulin durch Betazellen, was den Blutzucker senkt, und von Glukagon durch Alphazellen, das den Blutzucker erhöht. Intrazelluläre Signalwege, einschließlich derer, die durch cAMP vermittelt werden, sind der Schlüssel für die regulierte Alpha- und Betazell-Hormonsekretion. Die 3D-Inselstruktur ist zwar essentiell für die koordinierte Inselfunktion, stellt aber experimentelle Herausforderungen für mechanistische Studien der intrazellulären Signalwege in primären menschlichen Inselzellen dar. Um diese Herausforderungen und Einschränkungen zu überwinden, beschreibt dieses Protokoll eine integrierte Live-Cell-Imaging- und Mikrofluidik-Plattform, die primäre menschliche Pseudoinseln verwendet, die von Spendern ohne Diabetes erzeugt wurden und in ihrer Morphologie, Zusammensetzung und Funktion nativen Inseln ähneln. Diese Pseudoinseln werden durch den Dispersions- und Reaggregationsprozess primärer humaner Inselzellen größengesteuert. Im dispergierten Zustand kann die Genexpression von Inselzellen manipuliert werden; So können beispielsweise Biosensoren wie der genetisch kodierte cAMP-Biosensor, cADDis, eingeführt werden. Nach ihrer Bildung ermöglichen Pseudoinseln, die einen genetisch kodierten Biosensor exprimieren, in Kombination mit konfokaler Mikroskopie und einer Mikroperifusionsplattform die synchrone Bewertung der Dynamik fluoreszierender Biosensoren und der sekretorischen Profile von Alpha- und Betazellhormonen, um einen besseren Einblick in zelluläre Prozesse und Funktionen zu erhalten.
Die Langerhans-Inseln sind Mini-Organe, die über die gesamte Bauchspeicheldrüse verstreut sind und deren Funktion für die Aufrechterhaltung der Glukosehomöostase entscheidend ist. Insulin wird aus Betazellen nach dem Metabolismus von Glukose, einem Anstieg des ATP/ADP-Verhältnisses, dem Verschluss von ATP-empfindlichen Kaliumkanälen, der Depolarisation der Plasmamembran und dem Einstrom von extrazellulärem Kalzium1 sezerniert. Die Glucagon-Sekretion aus Alpha-Zellen ist weniger verstanden, aber es wurde postuliert, dass intrazelluläre und parakrine Signalwege zur Exozytose des Glucagon-Granula-Granulats beitragen
Humane Inselzellen (N = 4 Präparate) wurden durch Partnerschaften mit dem Integrated Islet Distribution Program, dem Human Pancreas Analysis Program, Prodo Laboratories, Inc. und Imagine Pharma gewonnen. Das Vanderbilt University Institutional Review Board betrachtet deidentifizierte menschliche Bauchspeicheldrüsenproben nicht als Forschung am Menschen. Diese Arbeit wäre ohne Organspender, ihre Familien und Organbeschaffungsorganisationen nicht möglich. In Tabelle 1 finden Sie demografische Informationen zu den Spendern. Menschliche Inselzellen von Pankreasspendern ohne Diabetes wurden mit einer Zeit von weniger als 15 Stunden kalter Ischämie isoliert....
Biosensor-exprimierende humane Pseudoinseln wurden durch die adenovirale Verabreichung von Konstrukten erzeugt, die für die cAMP-Biosensor-cADDis kodieren (Abbildung 1A). Abbildung 1B zeigt die Reaggregation der transduzierten humanen Inselzellen im Laufe der Zeit, wobei nach 6 Tagen Kultur vollständig ausgebildete Pseudoinseln beobachtet wurden. Die Zellen begannen innerhalb von 48 Stunden eine sichtbare cADDis-Fluoreszenz zu zeigen, und am Ende der .......
Die Integration eines Mikroperifusionssystems, biosensorexprimierender Pseudoinseln und konfokaler Laser-Scanning-Mikroskopie ermöglicht die synchrone Beurteilung intrazellulärer Signalereignisse und dynamischer Hormonsekretionsprofile. Das dynamische Mikroperifusionssystem kann eine Reihe von genau definierten Stimuli an die Pseudoinseln abgeben und ermöglicht die Sammlung des Abwassers, in dem die Insulin- und Glukagonkonzentrationen mit einem kommerziell erhältlichen ELISA gemessen werden können. Gleichzeitig erf.......
Die Autoren haben nichts zu verraten.
Organspender und ihre Familien werden für ihre unschätzbaren Spenden geschätzt, und das International Institute for Organ Procurement Organizations, Advancement of Medicine (IIAM) und der National Disease Research Exchange (NDRI) werden für ihre Partnerschaft bei der Zugänglichmachung von menschlichem Bauchspeicheldrüsengewebe für die Forschung gewürdigt. Diese Arbeit wurde unterstützt vom Human Islet Research Network (RRID:SCR_014393), dem Human Pancreas Analysis Program (RRID:SCR_016202), DK106755, DK123716, DK123743, DK120456, DK104211, DK108120, DK112232, DK117147, DK112217, EY032442 und DK20593 (Vanderbilt Diabetes Research and Training Center), dem Leona M. and ....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Ad-CMV-cADDis | Welgen | Not applicable | |
0.01” FEP tubing | IDEX | 1527L | |
1 M HEPES | Gibco | 15630-080 | Enriched-CMRL Media Component |
1.5 mL and conical tubes | Any | Any | |
10 μm PTFE filter | Cole-Parmer | SK-21940-41 | Change every 8-10 runs |
100 mM Sodium Pyruvate | Thermo Scientific | 11360070 | Enriched-CMRL Media Component |
190 proof Ethanol | Decon labs | 2816 | Acid Ethanol Component |
200 mM GlutaMAX-I Supplement | Gibco | 35050061 | Enriched-CMRL Media Component |
Ascorbate | Sigma | A5960 | DMEM Perifusion Buffer Component |
Bovine Serum Albumin | Sigma | A7888 | DMEM Perifusion Buffer Component |
Bubble trap | Omnifit | 006BT | |
CellCarrier ULA 96-well Microplates | Perkin Elmer | 6055330 | |
cellSens analysis software | Olympus | v3.1 | Software used for data analysis |
CMRL 1066 | MediaTech | 15-110-CV | Enriched-CMRL Media Component |
Conical adapter (IDEX, P-794) | IDEX | P-794 | |
D-(+)-Glucose | Sigma | G7528 | Glucose Buffer Component |
DMEM | Sigma | D5030 | DMEM Perifusion Buffer Component |
Environmental chamber | okolab | IX83 | |
Epinepherine (Epi) | Sigma | E4250 | Stimulation Buffer Component |
Fetal Bovine Serum (FBS), Heat Inactivated | Sigma | 12306C | Enriched-CMRL Media Component |
Glucagon ELISA | Mercodia | 10-1281-01 | |
Glucagon Kit HTRF | Cisbio | 62CGLPEH | |
HCl (12N) | Any | Any | Acid Ethanol Component |
HEPES | Sigma | H7523 | DMEM Perifusion Buffer Component |
iCell Endothelial Cells Medium Supplement | Cell Dynamics | M1019 | iEC Media Component |
Idex Derlin nut & ferrule 1/4-24 | Cole-Parmer | EW-00414-LW | |
Insulin ELISA | Mercodia | 10-1113-01 | |
Isobutylmethylonine (IBMX) | Sigma | I5879 | Stimulation Buffer Component |
Laser scanning confocal microscope | Olympus | FV3000 | |
L-Glutamine | Sigma | G8540 | DMEM Perifusion Buffer Component |
Microchip (University of Miami, FP-3W) | University of Miami | FP-3W | |
Microchip holder | Micronit Microfluidics | FC_PRO_CH4525 | |
Model 2110 Fraction Collector | Biorad | 7318122 | |
P10, P200, and P1000 pipets and tips | Any | Any | |
Penicillin/Streptomycin | Gibco | 15140-122 | Enriched-CMRL Media Component |
Peristaltic pump | Instech | P720 | |
Phosphate Buffered Saline | Gibco | 14190-144 | Wash Islets |
Sarstedt dishes | Sarstedt | depends on dish diameter | |
Sodium Bicarbonate | Sigma | S6014 | DMEM Perifusion Buffer Component |
Sodium Pyruvate | Sigma | P2256 | DMEM Perifusion Buffer Component |
Stereoscope | Olympus | SZX12 | |
Steriflip Filter (0.22 μm) | Millipore | SCGP00525 | Filter all buffers twice |
VascuLife VEGF Medium Complete Kit | LifeLine Cell Technology | LL-0003 | iEC Media Component |
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