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* Ces auteurs ont contribué à parts égales
Ce protocole décrit une méthode d’acquisition synchrone et de co-enregistrement d’événements de signalisation intracellulaire et de sécrétion d’insuline et de glucagon par des pseudo-îlots humains primaires en utilisant l’administration adénovirale d’un biocapteur d’adénosine monophosphate cyclique (AMPc), d’un détecteur de différence d’AMPc in situ (cADDis) et d’un système de micropérifusion.
Les îlots pancréatiques de Langerhans, qui sont de petites collections 3D de cellules endocriniennes et de soutien spécialisées disséminées dans tout le pancréas, jouent un rôle central dans le contrôle de l’homéostasie du glucose par la sécrétion d’insuline par les cellules bêta, ce qui abaisse la glycémie, et de glucagon par les cellules alpha, qui augmente la glycémie. Les voies de signalisation intracellulaires, y compris celles médiées par l’AMPc, sont essentielles à la sécrétion régulée d’hormones alpha et bêta des cellules. La structure 3D des îlots pancréatiques, bien qu’essentielle à la coordination de la fonction des îlots pancréatiques, présente des défis expérimentaux pour les études mécanistiques des voies de signalisation intracellulaires dans les cellules primaires des îlots pancréatiques humains. Pour surmonter ces défis et ces limitations, ce protocole décrit une plate-forme intégrée d’imagerie et de microfluidique de cellules vivantes utilisant des pseudo-îlots humains primaires générés à partir de donneurs non diabétiques qui ressemblent à des îlots natifs dans leur morphologie, leur composition et leur fonction. La taille de ces pseudo-îlots est contrôlée par le processus de dispersion et de réagrégation des cellules primaires des îlots pancréatiques humains. À l’état dispersé, l’expression des gènes des cellules des îlots pancréatiques peut être manipulée ; par exemple, des biocapteurs tels que le biocapteur d’AMPc génétiquement codé, cADDis, peuvent être introduits. Une fois formés, les pseudo-îlots exprimant un biocapteur génétiquement codé, en combinaison avec la microscopie confocale et une plateforme de micropérifusion, permettent l’évaluation synchrone de la dynamique des biocapteurs fluorescents et des profils de sécrétion des hormones alpha et bêta des cellules alpha et bêta afin de mieux comprendre les processus et la fonction cellulaires.
Les îlots de Langerhans sont des mini-organes disséminés dans tout le pancréas dont la fonction est cruciale pour le maintien de l’homéostasie du glucose. L’insuline est sécrétée par les cellules bêta à la suite du métabolisme du glucose, d’une augmentation du rapport ATP/ADP, de la fermeture des canaux potassiques sensibles à l’ATP, d’une dépolarisation de la membrane plasmique et de l’afflux de calcium extracellulaire1. La sécrétion de glucagon par les cellules alpha est moins comprise, mais il a été postulé que les voies intracellulaires et paracrines contribuent à l’exocytose des granules de glucagon 2,3,4....
Les îlots humains (N = 4 préparations) ont été obtenus grâce à des partenariats avec le Programme de distribution intégrée des îlots pancréatiques, le Programme d’analyse du pancréas humain, Prodo Laboratories, Inc. et Imagine Pharma. Le comité d’examen institutionnel de l’Université Vanderbilt ne considère pas les spécimens pancréatiques humains anonymisés comme des recherches sur des sujets humains. Ce travail ne serait pas possible sans les donneurs d’organes, leurs familles et les organismes d’approvisionnement en organes. Voir le tableau 1 pour obtenir des renseignements démographiques sur les donateurs. Les îlots humains provenant de donneurs de....
Des pseudo-îlots humains exprimant des biocapteurs ont été créés par l’administration adénovirale de constructions codant pour le biocapteur d’AMPc, cADDis (Figure 1A). La figure 1B montre la réagrégation des cellules d’îlots humains transduites au fil du temps, avec des pseudo-îlots complètement formés observés après 6 jours de culture. Les cellules ont commencé à montrer une fluorescence visible de cADDis dans les 48 heures, et i.......
L’intégration d’un système de micropérifusion, de pseudo-îlots exprimant des biocapteurs et d’une microscopie confocale à balayage laser permet l’évaluation synchrone des événements de signalisation intracellulaire et des profils dynamiques de sécrétion hormonale. Le système de micropérifusion dynamique peut fournir une série de stimuli bien définis aux pseudo-îlots et permet la collecte de l’effluent, dans laquelle les concentrations d’insuline et de glucagon peuvent être mesurées par ELISA .......
Les auteurs n’ont rien à divulguer.
Les donneurs d’organes et leurs familles sont appréciés pour leurs dons inestimables, et l’Institut international des organisations d’approvisionnement en organes, l’Advancement of Medicine (IIAM) et le National Disease Research Exchange (NDRI) sont reconnus pour leur partenariat visant à rendre le tissu pancréatique humain accessible à la recherche. Ces travaux ont été soutenus par le Réseau de recherche sur les îlots humains (RRID :SCR_014393), le Programme d’analyse du pancréas humain (RRID :SCR_016202), DK106755, DK123716, DK123743, DK120456, DK104211, DK108120, DK112232, DK117147, DK112217, EY032442 et DK20593 (Vanderbilt Diabetes Research and Training Center), l....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Ad-CMV-cADDis | Welgen | Not applicable | |
0.01” FEP tubing | IDEX | 1527L | |
1 M HEPES | Gibco | 15630-080 | Enriched-CMRL Media Component |
1.5 mL and conical tubes | Any | Any | |
10 μm PTFE filter | Cole-Parmer | SK-21940-41 | Change every 8-10 runs |
100 mM Sodium Pyruvate | Thermo Scientific | 11360070 | Enriched-CMRL Media Component |
190 proof Ethanol | Decon labs | 2816 | Acid Ethanol Component |
200 mM GlutaMAX-I Supplement | Gibco | 35050061 | Enriched-CMRL Media Component |
Ascorbate | Sigma | A5960 | DMEM Perifusion Buffer Component |
Bovine Serum Albumin | Sigma | A7888 | DMEM Perifusion Buffer Component |
Bubble trap | Omnifit | 006BT | |
CellCarrier ULA 96-well Microplates | Perkin Elmer | 6055330 | |
cellSens analysis software | Olympus | v3.1 | Software used for data analysis |
CMRL 1066 | MediaTech | 15-110-CV | Enriched-CMRL Media Component |
Conical adapter (IDEX, P-794) | IDEX | P-794 | |
D-(+)-Glucose | Sigma | G7528 | Glucose Buffer Component |
DMEM | Sigma | D5030 | DMEM Perifusion Buffer Component |
Environmental chamber | okolab | IX83 | |
Epinepherine (Epi) | Sigma | E4250 | Stimulation Buffer Component |
Fetal Bovine Serum (FBS), Heat Inactivated | Sigma | 12306C | Enriched-CMRL Media Component |
Glucagon ELISA | Mercodia | 10-1281-01 | |
Glucagon Kit HTRF | Cisbio | 62CGLPEH | |
HCl (12N) | Any | Any | Acid Ethanol Component |
HEPES | Sigma | H7523 | DMEM Perifusion Buffer Component |
iCell Endothelial Cells Medium Supplement | Cell Dynamics | M1019 | iEC Media Component |
Idex Derlin nut & ferrule 1/4-24 | Cole-Parmer | EW-00414-LW | |
Insulin ELISA | Mercodia | 10-1113-01 | |
Isobutylmethylonine (IBMX) | Sigma | I5879 | Stimulation Buffer Component |
Laser scanning confocal microscope | Olympus | FV3000 | |
L-Glutamine | Sigma | G8540 | DMEM Perifusion Buffer Component |
Microchip (University of Miami, FP-3W) | University of Miami | FP-3W | |
Microchip holder | Micronit Microfluidics | FC_PRO_CH4525 | |
Model 2110 Fraction Collector | Biorad | 7318122 | |
P10, P200, and P1000 pipets and tips | Any | Any | |
Penicillin/Streptomycin | Gibco | 15140-122 | Enriched-CMRL Media Component |
Peristaltic pump | Instech | P720 | |
Phosphate Buffered Saline | Gibco | 14190-144 | Wash Islets |
Sarstedt dishes | Sarstedt | depends on dish diameter | |
Sodium Bicarbonate | Sigma | S6014 | DMEM Perifusion Buffer Component |
Sodium Pyruvate | Sigma | P2256 | DMEM Perifusion Buffer Component |
Stereoscope | Olympus | SZX12 | |
Steriflip Filter (0.22 μm) | Millipore | SCGP00525 | Filter all buffers twice |
VascuLife VEGF Medium Complete Kit | LifeLine Cell Technology | LL-0003 | iEC Media Component |
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