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In diesem Artikel

  • Zusammenfassung
  • Zusammenfassung
  • Einleitung
  • Protokoll
  • Repräsentative Ergebnisse
  • Diskussion
  • Offenlegungen
  • Danksagungen
  • Materialien
  • Referenzen
  • Nachdrucke und Genehmigungen

Zusammenfassung

Dieses Protokoll beschreibt die Herstellung des Inokulums, die Quantifizierung des Biofilms auf Mikrotiterplatten mit kristallviolettem Farbstoff, die Lebensfähigkeit in Biofilmen und die Visualisierung von Biofilmen von Acinetobacter.

Zusammenfassung

Acinetobacter verursacht nosokomiale Infektionen und seine Biofilmbildung kann zum Überleben auf trockenen Oberflächen wie z.B. Krankenhausumgebungen beitragen. Daher sind Biofilmquantifizierung und -visualisierung wichtige Methoden, um das Potenzial von Acinetobacter-Stämmen zur Verursachung nosokomialer Infektionen zu bewerten. Die Biofilme, die sich auf der Oberfläche der Mikrotiterplatte bilden, können in Bezug auf Volumen und Zellzahl quantifiziert werden. Biofilmvolumina können durch Färben mit Kristallviolett, Waschen, Entfärben mit Ethanol und anschließendes Messen des gelösten Farbstoffs mit einem Mikroplatten-Reader quantifiziert werden. Um die Anzahl der in die Biofilme eingebetteten Zellen zu quantifizieren, werden die Biofilme mit Hilfe von Zellschabern abgekratzt, in der Kochsalzlösung geerntet, in Gegenwart von Glasperlen kräftig gerührt und auf Acinetobacter-Agar verteilt. Anschließend werden die Platten bei 30 °C für 24-42 h inkubiert. Nach der Inkubation werden die roten Kolonien gezählt, um die Anzahl der Zellen in Biofilmen abzuschätzen. Diese brauchbare Zählmethode kann auch für die Zählung von Acinetobacter-Zellen in Biofilmen mit gemischten Spezies nützlich sein. Acinetobacter-Biofilme können mit Hilfe von Fluoreszenzfarbstoffen sichtbar gemacht werden. Eine kommerziell erhältliche Mikrotiterplatte, die für die mikroskopische Analyse entwickelt wurde, wird zur Bildung von Biofilmen verwendet. Anschließend werden die an der Unterseite befestigten Biofilme mit SYTO9- und Propidiumiodid-Farbstoffen gefärbt, gewaschen und dann mit konfokaler Laser-Scanning-Mikroskopie visualisiert.

Einleitung

Es ist bekannt, dass Acinetobacter nosokomiale Infektionen verursacht, und über seine Infektion beim Menschen, insbesondere in Gesundheitseinrichtungen, wird zunehmend berichtet1. Es ist in Krankenhäusern, Gesundheitseinrichtungen und lebensmittelnahen Umgebungen weit verbreitet 2,3,4. Es kann über einen langen Zeitraum in Umgebungen wie Krankenhausoberflächen wie Bettgittern, Nachttischen, der Oberfläche von Beatmungsgeräten und Waschbecken überleben4. Eine solche Persistenz auf Umweltoberflächen könnte einer der signi....

Protokoll

1. Herstellung des bakteriellen Inokulums

  1. Nehmen Sie die bei -80 °C gelagerte Durchstechflasche mit Glycerinvorrat heraus.
  2. Entfernen Sie den Bakterienstamm (2-10 μl) mit einer sterilen Pipettenspitze aus der Durchstechflasche.
    HINWEIS: In diesem Protokoll werden die Acinetobacter-Stämme A. bouvetii (13-1-1), A. junii (13-1-2), A. pittii (13-2-5), A. baumannii (13-2-9), A. radioresistens (20-1) und A. ursingii (24-1) verwendet.
  3. Eine handelsübliche Blutagarplatte (tryptischer Soja-Agar, ergänzt mit 5 % Schafsblut, siehe Materialtabelle) mit d....

Repräsentative Ergebnisse

Gemäß dem Protokoll wurden die Biofilme von Acinetobacter-Isolaten , die ursprünglich aus Küchenoberflächen isoliert wurden, auf einer 96-Well-Polystyrolplatte gebildet, mit Kristallviolett gefärbt, und die Farbstoffe wurden in Ethanol gelöst und auf Biofilmmasse gemessen (Abbildung 1). Die Anzahl der Biofilme variierte je nach Stämmen stark und reichte von OD 0,04 bis 1,69 (Abbildung 1). Basierend auf den von Stepanović et al.......

Diskussion

Mit Hilfe des beschriebenen Protokolls wurde die Biofilmbildung von Acinetobacter-Isolaten in unterschiedlichem Ausmaß gemessen, visualisiert und die lebensfähigen Zellen in den Biofilmen geschätzt (Abbildung 1, Abbildung 2 und Abbildung 3).

In diesem Protokoll wurden zwei verschiedene Temperaturen verwendet, 30 °C für das Wachstum und 25 °C für die Biofilmbildung von Acinetobacter

Offenlegungen

Die Autoren haben nichts zu verraten.

Danksagungen

Diese Forschung wurde durch das Hauptforschungsprogramm (E0210702-03) des Korea Food Research Institute (KFRI) unterstützt, das vom Ministerium für Wissenschaft und IKT finanziert wird.

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Materialien

NameCompanyCatalog NumberComments
96-well cell culture plateSPL30096Polystyrene 96-well plate
BHI (Brain Heart Infusion) brothMerck KGaA1.10493.0500
Blood Agar Base PlateKisanBioMB-B1005-P50Growth media for Acinetobacter
CHROMagar AcinetobacterCHROMagarAC092Selective plate for Acinetobacter
Crystal violet solutionSigma-AldrichV5265
Filmtracer LIVE/DEAD biofilm viability kitInvitrogenL10316SYTO9 and propidium iodide
Microplate readerTecanInfinite M200 PRO NanoQuantBiofilm measurement
RBC Glass Plating BeadsRBCRG001Glass beads
μ-Plate 96 Well Blackibidi89621Microplate intended for CLSM

Referenzen

  1. Wong, D., et al. Clinical and pathophysiological overview of Acinetobacter infections: a century of challenges. Clinical Microbiology Reviews. 30 (1), 409-447 (2017).
  2. Carvalheira, A., Silva, J., Teixeira, P.

Nachdrucke und Genehmigungen

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