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In diesem Artikel

  • Zusammenfassung
  • Zusammenfassung
  • Einleitung
  • Protokoll
  • Repräsentative Ergebnisse
  • Diskussion
  • Offenlegungen
  • Danksagungen
  • Materialien
  • Referenzen
  • Nachdrucke und Genehmigungen

Zusammenfassung

Die DNAzyme-basierten Nanomaschinen können für den hochselektiven und sensitiven Nachweis von Nukleinsäuren eingesetzt werden. Dieser Artikel beschreibt ein detailliertes Protokoll für das Design von DNAzym-basierten Nanomaschinen mit einem 10-23-Kern unter Verwendung freier Software und deren Anwendung am Beispiel der Detektion eines Epstein-Barr-Virusfragments.

Zusammenfassung

DNAzym-basierte Nanomaschinen (DNM) zum Nachweis von DNA- und RNA-Sequenzen (Analyten) sind multifunktionale Strukturen aus Oligonukleotiden. Zu ihren Funktionen gehören eine enge Analytbindung, eine hochselektive Analyterkennung, die Verstärkung des Fluoreszenzsignals durch mehrere katalytische Spaltungen eines fluorogenen Reportersubstrats und die Anziehung fluorogener Substrate für eine Erhöhung der Sensorreaktion. Funktionelle Einheiten werden für ihre kooperative Wirkung an ein gemeinsames DNA-Gerüst gebunden. Die RNA-spaltenden 10-23 DNMs weisen eine verbesserte Sensitivität im Vergleich zu nicht-katalytischen Hybridisierungssonden auf. Die Stabilität des DNM und die erhöhten Chancen auf Substraterkennung werden durch ein doppelsträngiges DNA-Fragment, eine Kachel, gewährleistet. DNM kann zwei Analyten mit einem einzigen Nukleotidunterschied in einer gefalteten RNA und einer doppelsträngigen DNA unterscheiden und Analyten in Konzentrationen nachweisen, die ~1000-mal niedriger sind als bei anderen proteinfreien Hybridisierungssonden. Dieser Artikel stellt das Konzept hinter dem diagnostischen Potenzial der DNA-Nanomaschinen-Aktivität vor und gibt einen Überblick über das Design, die Assemblierung und die Anwendung von DNM in Nukleinsäure-Detektionsassays.

Einleitung

Eine der frühesten Methoden zum Nukleinsäurenachweis ist die komplementäre Bindung von selektiven Oligonukleotiden an die analysierten RNA- oder DNA-Sequenzen. Bei diesem Verfahren werden Nukleinsäurefragmente (Sonden) verwendet, die Watson-Crick-Basenpaare mit einem gezielten DNA- oder RNA-Analyten1 bilden können. Der Komplex wird dann durch eine Vielzahl von Techniken vom Analyten und der ungebundenen Sonde unterschieden. Bestimmte Methoden, wie z.B. Northern Blotting, in situ Hybridisierung oder qPCR, basieren auf dem Phänomen der komplementären Bindung2. Die gebräuchlichsten....

Protokoll

1. DNM-Ausführung

  1. Wählen Sie eine einzigartige Region innerhalb des Genoms von Interesse aus.
    HINWEIS: In dieser Arbeit wird eine Region des Epstein-Barr-Virus (EBV)-Genoms an den Positionen 13972-14154 (OR652423.1) verwendet.
  2. Erstellen Sie ein Primer-Set für die Amplifikation des ausgewählten Fragments, z. B. über das in Ugene26 eingebettete Primer3-Tool.
  3. Öffnen Sie das UNAFold Web Tool27 (siehe Materialtabelle) und fügen Sie den ausgewählten Bereich ein. Ändern Sie die Falttemperatur auf 55 °C und die Ionenbedi....

Repräsentative Ergebnisse

Ziel des ersten Experiments war es, den Aufbau des DNM vor dem synthetischen Fragment des Analyten zu zeigen. Alle DNM-Stränge, aus denen sie bestehen, wurden dem Reaktionspuffer zugesetzt und im Becherglas assembliert. Der assemblierte DNM-Komplex wurde durch natives PAGE auf seine korrekte Größe und Homogenität bewertet. Native PAGE zeigt den assemblierten DNM mit dem Analyten in Spur 1 und zwei DNM-Strängen in den Spuren 2 und 4. Wenn die DNA-Nanomaschine nicht assembliert würde.......

Diskussion

Das Design von DNA-Maschinen ist einfach, erfordert aber etwas Erfahrung in der Entwicklung von Hybridisierungssonden oder funktionellen DNA-Nanostrukturen. Es ist angebracht, das Analytfragment so kurz wie möglich zu halten, um die Anzahl möglicher Sekundärstrukturen zu verringern und die DNM-Invasion in die Sekundärstruktur zu vereinfachen. Der CG-Gehalt sollte vorzugsweise unter 60 % liegen, um stabile intramolekulare Strukturen zu vermeiden. Die erfolgreiche Montage des DNM wird .......

Offenlegungen

Die Autoren erklären, dass kein Interessenkonflikt besteht.

Danksagungen

Die Autoren danken Ekaterina V. Nikitina für die freundliche Bereitstellung von gDNA von EBV. Muhannad Ateiah, Maria Y. Berezovskaya und Maria S. Rubel danken dem Ministerium für Bildung und Wissenschaft der Russischen Föderation (Förderkennzeichen FSER-2022-0009) und dem Programm Priority 2030.

....

Materialien

NameCompanyCatalog NumberComments
1.5 mL tubeBiofilCFT011015
100 bp+ DNA LadderEvrogenNL002
100-1000 µL pipetteKirgenKG-Pro1000
10-100 µL pipetteKirgenKG-Pro100
1-10 µL pipetteKirgenKG-Pro10
20-200 µL pipetteKirgenKG-Pro200
2-20 µL pipetteKirgenKG-Pro20
4x Gel Loading DyeEvrogenPB020
Acrylamide 4KAppliChemA1090,0500
Ammonium persulfateCarl Roth2809447
BiorenderBiorenderhttps://www.biorender.com
BisacrylamideMolekula22797959
Boric AcidTechSnabH-0202
ChemiDoc imaging systemBioRad12003153
Costar 96-Well Black Polystyrene PlateCorningCOS3915
DinaMeltRNA Institutehttp://www.unafold.org/Dinamelt/applications/two-state-melting-hybridization.php
EDTAAmrescoAm-O105
Ethidium bromideBioLabMixEtBr-10
HEPESAmrescoAm-O485
Magnesium chlorideAppliChem131396
Mini Protean Tetra CellBioRad1658001EDU
pipette 10 µL tipsKirgenKG1111-L
pipette 1000 µL tipsKirgenKG1636
pipette 200 µL tipsKirgenKG1212-L
Pixelmator ProPixelmator Teamhttps://www.pixelmator.com/pro/
Potassium chlorideCarl Roth1782751
PowerPac Basic Power SupplyBioRad1645050
RNAse/DNAse free waterInvitrogen10977049
Sealing film for PCR platesSovtechP-502
Sodium chlorideVektonHCh (0,1)
Spark multimode microplate readerTecanSpark- 10M
T100 amplificatorBioRad10014822
TEMEDMolekula68604730
Tris(hydroxymethyl)aminomethaneAmrescoAm-O497
UNAFoldRNA Institutehttp://www.unafold.org/mfold/applications/dna-folding-form.php
Water bathLOIPLB-140
Oligos used
Analyte:Evrogendirect order, standard desalting purification
GAGCACTTGGTCAGGCACACGG
ACAGGGTCAGCGGAGGACGCG
TGGCACAGCAGCCCGGGGTAG
GTCCCCTGGACCTGCCGCTGG
CGGACTACGCCTTCGTTGC
Tile-Arm3:Evrogendirect order, standard desalting purification
CCG GGCTGCTGTGCCATTTT
TTGCTGACTACTGTCACCTCT
CTGCTAGTCT
Dzb-Tile: AGACTAGCAGAGAGGTGACAG
TAGTCAGCTTTTTTCGCGTCCTC
CGCTGACCACAACGAGAGGAA
ACCTT
Evrogendirect order, standard desalting purification
Dza: TGCCCAGGGAGGCTAGCTCT
GTCCGTGTGCCTGACCA
Evrogendirect order, standard desalting purification
F-sub oligonucleotide: AAGGTT(FAM)TCCTCrGrU
CCCTGGGCA-BHQ1
DNA-Syntezdirect order, HPLC purification

Referenzen

  1. Kolpashchikov, D. M. Evolution of hybridization probes to DNA machines and robots. Acc. Chem Res. 52, 1949-1956 (2019).
  2. Guo, J., Ju, J., Turro, N. J. Fluorescent hybridization probes for nucleic acid detection.

Nachdrucke und Genehmigungen

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