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Die DNAzyme-basierten Nanomaschinen können für den hochselektiven und sensitiven Nachweis von Nukleinsäuren eingesetzt werden. Dieser Artikel beschreibt ein detailliertes Protokoll für das Design von DNAzym-basierten Nanomaschinen mit einem 10-23-Kern unter Verwendung freier Software und deren Anwendung am Beispiel der Detektion eines Epstein-Barr-Virusfragments.
DNAzym-basierte Nanomaschinen (DNM) zum Nachweis von DNA- und RNA-Sequenzen (Analyten) sind multifunktionale Strukturen aus Oligonukleotiden. Zu ihren Funktionen gehören eine enge Analytbindung, eine hochselektive Analyterkennung, die Verstärkung des Fluoreszenzsignals durch mehrere katalytische Spaltungen eines fluorogenen Reportersubstrats und die Anziehung fluorogener Substrate für eine Erhöhung der Sensorreaktion. Funktionelle Einheiten werden für ihre kooperative Wirkung an ein gemeinsames DNA-Gerüst gebunden. Die RNA-spaltenden 10-23 DNMs weisen eine verbesserte Sensitivität im Vergleich zu nicht-katalytischen Hybridisierungssonden auf. Die Stabilität des DNM und die erhöhten Chancen auf Substraterkennung werden durch ein doppelsträngiges DNA-Fragment, eine Kachel, gewährleistet. DNM kann zwei Analyten mit einem einzigen Nukleotidunterschied in einer gefalteten RNA und einer doppelsträngigen DNA unterscheiden und Analyten in Konzentrationen nachweisen, die ~1000-mal niedriger sind als bei anderen proteinfreien Hybridisierungssonden. Dieser Artikel stellt das Konzept hinter dem diagnostischen Potenzial der DNA-Nanomaschinen-Aktivität vor und gibt einen Überblick über das Design, die Assemblierung und die Anwendung von DNM in Nukleinsäure-Detektionsassays.
Eine der frühesten Methoden zum Nukleinsäurenachweis ist die komplementäre Bindung von selektiven Oligonukleotiden an die analysierten RNA- oder DNA-Sequenzen. Bei diesem Verfahren werden Nukleinsäurefragmente (Sonden) verwendet, die Watson-Crick-Basenpaare mit einem gezielten DNA- oder RNA-Analyten1 bilden können. Der Komplex wird dann durch eine Vielzahl von Techniken vom Analyten und der ungebundenen Sonde unterschieden. Bestimmte Methoden, wie z.B. Northern Blotting, in situ Hybridisierung oder qPCR, basieren auf dem Phänomen der komplementären Bindung2. Die gebräuchlichsten....
1. DNM-Ausführung
Ziel des ersten Experiments war es, den Aufbau des DNM vor dem synthetischen Fragment des Analyten zu zeigen. Alle DNM-Stränge, aus denen sie bestehen, wurden dem Reaktionspuffer zugesetzt und im Becherglas assembliert. Der assemblierte DNM-Komplex wurde durch natives PAGE auf seine korrekte Größe und Homogenität bewertet. Native PAGE zeigt den assemblierten DNM mit dem Analyten in Spur 1 und zwei DNM-Strängen in den Spuren 2 und 4. Wenn die DNA-Nanomaschine nicht assembliert würde.......
Das Design von DNA-Maschinen ist einfach, erfordert aber etwas Erfahrung in der Entwicklung von Hybridisierungssonden oder funktionellen DNA-Nanostrukturen. Es ist angebracht, das Analytfragment so kurz wie möglich zu halten, um die Anzahl möglicher Sekundärstrukturen zu verringern und die DNM-Invasion in die Sekundärstruktur zu vereinfachen. Der CG-Gehalt sollte vorzugsweise unter 60 % liegen, um stabile intramolekulare Strukturen zu vermeiden. Die erfolgreiche Montage des DNM wird .......
Die Autoren erklären, dass kein Interessenkonflikt besteht.
Die Autoren danken Ekaterina V. Nikitina für die freundliche Bereitstellung von gDNA von EBV. Muhannad Ateiah, Maria Y. Berezovskaya und Maria S. Rubel danken dem Ministerium für Bildung und Wissenschaft der Russischen Föderation (Förderkennzeichen FSER-2022-0009) und dem Programm Priority 2030.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1.5 mL tube | Biofil | CFT011015 | |
100 bp+ DNA Ladder | Evrogen | NL002 | |
100-1000 µL pipette | Kirgen | KG-Pro1000 | |
10-100 µL pipette | Kirgen | KG-Pro100 | |
1-10 µL pipette | Kirgen | KG-Pro10 | |
20-200 µL pipette | Kirgen | KG-Pro200 | |
2-20 µL pipette | Kirgen | KG-Pro20 | |
4x Gel Loading Dye | Evrogen | PB020 | |
Acrylamide 4K | AppliChem | A1090,0500 | |
Ammonium persulfate | Carl Roth | 2809447 | |
Biorender | Biorender | https://www.biorender.com | |
Bisacrylamide | Molekula | 22797959 | |
Boric Acid | TechSnab | H-0202 | |
ChemiDoc imaging system | BioRad | 12003153 | |
Costar 96-Well Black Polystyrene Plate | Corning | COS3915 | |
DinaMelt | RNA Institute | http://www.unafold.org/Dinamelt/applications/two-state-melting-hybridization.php | |
EDTA | Amresco | Am-O105 | |
Ethidium bromide | BioLabMix | EtBr-10 | |
HEPES | Amresco | Am-O485 | |
Magnesium chloride | AppliChem | 131396 | |
Mini Protean Tetra Cell | BioRad | 1658001EDU | |
pipette 10 µL tips | Kirgen | KG1111-L | |
pipette 1000 µL tips | Kirgen | KG1636 | |
pipette 200 µL tips | Kirgen | KG1212-L | |
Pixelmator Pro | Pixelmator Team | https://www.pixelmator.com/pro/ | |
Potassium chloride | Carl Roth | 1782751 | |
PowerPac Basic Power Supply | BioRad | 1645050 | |
RNAse/DNAse free water | Invitrogen | 10977049 | |
Sealing film for PCR plates | Sovtech | P-502 | |
Sodium chloride | Vekton | HCh (0,1) | |
Spark multimode microplate reader | Tecan | Spark- 10M | |
T100 amplificator | BioRad | 10014822 | |
TEMED | Molekula | 68604730 | |
Tris(hydroxymethyl)aminomethane | Amresco | Am-O497 | |
UNAFold | RNA Institute | http://www.unafold.org/mfold/applications/dna-folding-form.php | |
Water bath | LOIP | LB-140 | |
Oligos used | |||
Analyte: | Evrogen | direct order, standard desalting purification | |
GAGCACTTGGTCAGGCACACGG ACAGGGTCAGCGGAGGACGCG TGGCACAGCAGCCCGGGGTAG GTCCCCTGGACCTGCCGCTGG CGGACTACGCCTTCGTTGC | |||
Tile-Arm3: | Evrogen | direct order, standard desalting purification | |
CCG GGCTGCTGTGCCATTTT TTGCTGACTACTGTCACCTCT CTGCTAGTCT | |||
Dzb-Tile: AGACTAGCAGAGAGGTGACAG TAGTCAGCTTTTTTCGCGTCCTC CGCTGACCACAACGAGAGGAA ACCTT | Evrogen | direct order, standard desalting purification | |
Dza: TGCCCAGGGAGGCTAGCTCT GTCCGTGTGCCTGACCA | Evrogen | direct order, standard desalting purification | |
F-sub oligonucleotide: AAGGTT(FAM)TCCTCrGrU CCCTGGGCA-BHQ1 | DNA-Syntez | direct order, HPLC purification |
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