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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats Représentatifs
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

Les nanomachines basées sur DNAzyme peuvent être utilisées pour la détection hautement sélective et sensible des acides nucléiques. Cet article décrit un protocole détaillé pour la conception de nanomachines basées sur DNAzyme avec un cœur de 10 à 23 à l’aide de logiciels libres et leur application dans la détection d’un fragment de virus d’Epstein-Barr à titre d’exemple.

Résumé

Les nanomachines à base d’ADN (DNM) pour la détection de séquences d’ADN et d’ARN (analytes) sont des structures multifonctionnelles constituées d’oligonucléotides. Leurs fonctions comprennent la liaison serrée de l’analyte, la reconnaissance hautement sélective de l’analyte, l’amplification du signal fluorescent par plusieurs clivages catalytiques d’un substrat rapporteur fluorogène et l’attraction du substrat fluorogène pour une augmentation de la réponse du capteur. Les unités fonctionnelles sont attachées à un échafaudage d’ADN commun pour leur action coopérative. Les DNM 10-23 à clivage de l’ARN présentent une sensibilité améliorée par rapport aux sondes d’hybridation non catalytiques. La stabilité du DNM et les chances accrues de reconnaissance du substrat sont fournies par un fragment d’ADN double brin, une tuile. Le DNM peut différencier deux analytes avec une seule différence nucléotidique dans un ARN replié et un ADN double brin et détecter des analytes à des concentrations ~1000 fois inférieures à celles des autres sondes d’hybridation sans protéines. Cet article présente le concept derrière le potentiel diagnostique de l’activité des nanomachines d’ADN et donne un aperçu de la conception, de l’assemblage et de l’application de DNM dans les tests de détection d’acides nucléiques.

Introduction

L’une des premières méthodes de détection des acides nucléiques est la liaison complémentaire d’oligonucléotides sélectifs aux séquences d’ARN ou d’ADN analysées. Cette méthode utilise des fragments d’acide nucléique (sondes) qui peuvent former des paires de bases Watson-Crick avec unanalyte d’ADN ou d’ARN 1 ciblé. Le complexe est ensuite différencié de l’analyte et de la sonde non liée par diverses techniques. Certaines méthodes, comme le Northern blot, l’hybridation in situ , ou qPCR, sont basées sur le phénomène de liaison complémentaire2. Les sondes d’hybridation les plus co....

Protocole

1. Conception DNM

  1. Sélectionnez une région unique dans le génome d’intérêt.
    REMARQUE : Ce travail utilise une région du génome du virus d’Epstein-Barr (VEB) aux positions 13972-14154 (OR652423.1).
  2. Créez un jeu d’amorces pour l’amplification du fragment sélectionné, par exemple, via l’outil Primer3 intégré à Ugene26.
  3. Ouvrez l’outil Web UNAFold27 (voir la table des matériaux) et insérez la région sélectionnée. Modifiez la température de repliement à 55 °C et les conditions ioniques à 250 mM d’ions monovalents et 200....

Résultats Représentatifs

Le but de la première expérience était de montrer l’assemblage du DNM avant le fragment synthétique de l’analyte. Tous les brins DNM constitutifs ont été ajoutés au tampon de réaction et assemblés dans le bécher. La taille et l’homogénéité du complexe DNM assemblé ont été évaluées par PAGE natif. La PAGE native montre le DNM assemblé avec l’analyte dans la voie 1 et deux brins DNM dans les voies 2 et 4. Si la nanomachine à ADN n’était pas assemblée, 2 ou 3.......

Discussion

La conception de machines à ADN est simple mais nécessite une certaine expérience dans la conception de sondes d’hybridation ou de nanostructures d’ADN fonctionnelles. Il convient de garder le fragment d’analyte aussi court que possible afin de diminuer le nombre de structures secondaires possibles et de simplifier l’invasion de DNM dans la structure secondaire. La teneur en CG doit de préférence être inférieure à 60 % pour éviter des structures intramoléculaires stable.......

Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts.

Remerciements

Les auteurs tiennent à remercier Ekaterina V. Nikitina pour avoir aimablement fourni l’ADNg de l’EBV. Muhannad Ateiah, Maria Y. Berezovskaya et Maria S. Rubel remercient le ministère de l’Éducation et des Sciences de la Fédération de Russie (subvention n° FSER-2022-0009) et le programme Priority 2030.

....

matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
1.5 mL tubeBiofilCFT011015
100 bp+ DNA LadderEvrogenNL002
100-1000 µL pipetteKirgenKG-Pro1000
10-100 µL pipetteKirgenKG-Pro100
1-10 µL pipetteKirgenKG-Pro10
20-200 µL pipetteKirgenKG-Pro200
2-20 µL pipetteKirgenKG-Pro20
4x Gel Loading DyeEvrogenPB020
Acrylamide 4KAppliChemA1090,0500
Ammonium persulfateCarl Roth2809447
BiorenderBiorenderhttps://www.biorender.com
BisacrylamideMolekula22797959
Boric AcidTechSnabH-0202
ChemiDoc imaging systemBioRad12003153
Costar 96-Well Black Polystyrene PlateCorningCOS3915
DinaMeltRNA Institutehttp://www.unafold.org/Dinamelt/applications/two-state-melting-hybridization.php
EDTAAmrescoAm-O105
Ethidium bromideBioLabMixEtBr-10
HEPESAmrescoAm-O485
Magnesium chlorideAppliChem131396
Mini Protean Tetra CellBioRad1658001EDU
pipette 10 µL tipsKirgenKG1111-L
pipette 1000 µL tipsKirgenKG1636
pipette 200 µL tipsKirgenKG1212-L
Pixelmator ProPixelmator Teamhttps://www.pixelmator.com/pro/
Potassium chlorideCarl Roth1782751
PowerPac Basic Power SupplyBioRad1645050
RNAse/DNAse free waterInvitrogen10977049
Sealing film for PCR platesSovtechP-502
Sodium chlorideVektonHCh (0,1)
Spark multimode microplate readerTecanSpark- 10M
T100 amplificatorBioRad10014822
TEMEDMolekula68604730
Tris(hydroxymethyl)aminomethaneAmrescoAm-O497
UNAFoldRNA Institutehttp://www.unafold.org/mfold/applications/dna-folding-form.php
Water bathLOIPLB-140
Oligos used
Analyte:Evrogendirect order, standard desalting purification
GAGCACTTGGTCAGGCACACGG
ACAGGGTCAGCGGAGGACGCG
TGGCACAGCAGCCCGGGGTAG
GTCCCCTGGACCTGCCGCTGG
CGGACTACGCCTTCGTTGC
Tile-Arm3:Evrogendirect order, standard desalting purification
CCG GGCTGCTGTGCCATTTT
TTGCTGACTACTGTCACCTCT
CTGCTAGTCT
Dzb-Tile: AGACTAGCAGAGAGGTGACAG
TAGTCAGCTTTTTTCGCGTCCTC
CGCTGACCACAACGAGAGGAA
ACCTT
Evrogendirect order, standard desalting purification
Dza: TGCCCAGGGAGGCTAGCTCT
GTCCGTGTGCCTGACCA
Evrogendirect order, standard desalting purification
F-sub oligonucleotide: AAGGTT(FAM)TCCTCrGrU
CCCTGGGCA-BHQ1
DNA-Syntezdirect order, HPLC purification

Références

  1. Kolpashchikov, D. M. Evolution of hybridization probes to DNA machines and robots. Acc. Chem Res. 52, 1949-1956 (2019).
  2. Guo, J., Ju, J., Turro, N. J. Fluorescent hybridization probes for nucleic acid detection.

Réimpressions et Autorisations

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