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In diesem Artikel

  • Zusammenfassung
  • Zusammenfassung
  • Einleitung
  • Protokoll
  • Repräsentative Ergebnisse
  • Diskussion
  • Offenlegungen
  • Danksagungen
  • Materialien
  • Referenzen
  • Nachdrucke und Genehmigungen

Zusammenfassung

Dieses Protokoll führt Bioinformatik-Einsteiger durch eine einführende CUT&RUN-Analysepipeline, die es den Benutzern ermöglicht, eine erste Analyse und Validierung von CUT&RUN-Sequenzierungsdaten durchzuführen. Das Abschließen der hier beschriebenen Analyseschritte in Kombination mit der nachgeschalteten Peak-Annotation ermöglicht es den Benutzern, mechanistische Einblicke in die Chromatinregulation zu gewinnen.

Zusammenfassung

Die CUT&RUN-Technik erleichtert den Nachweis von Protein-DNA-Wechselwirkungen im gesamten Genom. Typische Anwendungen von CUT&RUN sind die Profilierung von Änderungen in Histonschwanzmodifikationen oder die Kartierung der Chromatinbelegung des Transkriptionsfaktors. Die weit verbreitete Einführung von CUT&RUN ist zum Teil auf technische Vorteile gegenüber herkömmlichem ChIP-seq zurückzuführen, zu denen geringere Anforderungen an den Zelleinsatz, geringere Anforderungen an die Sequenzierungstiefe und eine erhöhte Empfindlichkeit mit reduziertem Hintergrundsignal gehören, da es an Vernetzungsmitteln mangelt, die sonst Antikörper-Epitope maskieren. Die breite Akzeptanz von CUT&RUN wurde auch durch die großzügige gemeinsame Nutzung von Reagenzien durch das Henikoff-Labor und die Entwicklung kommerzieller Kits erreicht, um die Einführung für Anfänger zu beschleunigen. Mit zunehmender technischer Einführung von CUT&RUN werden die CUT&RUN-Sequenzierungsanalyse und -validierung zu kritischen Engpässen, die überwunden werden müssen, um eine vollständige Einführung durch überwiegend nasse Laborteams zu ermöglichen. Die CUT&RUN-Analyse beginnt in der Regel mit einer Qualitätskontrolle der Rohsequenzierungs-Reads, um die Sequenzierungstiefe, die Read-Qualität und mögliche Verzerrungen zu bewerten. Die Reads werden dann mit einer Referenzgenomsequenz-Assemblierung abgeglichen, und mehrere bioinformatische Werkzeuge werden anschließend eingesetzt, um genomische Regionen der Proteinanreicherung zu annotieren, die Interpretierbarkeit der Daten zu bestätigen und biologische Schlussfolgerungen zu ziehen. Obwohl mehrere In-silico-Analysepipelines entwickelt wurden, um die CUT&RUN-Datenanalyse zu unterstützen, machen ihre komplexe Multi-Modul-Struktur und die Verwendung mehrerer Programmiersprachen die Plattformen für Bioinformatik-Anfänger schwierig, die möglicherweise nicht mit mehreren Programmiersprachen vertraut sind, aber das CUT&RUN-Analyseverfahren verstehen und ihre Analysepipelines anpassen möchten. Hier stellen wir ein einsprachiges Schritt-für-Schritt-Analyse-Pipeline-Protokoll für CUT&RUN zur Verfügung, das für Benutzer mit jeder Erfahrung in der Bioinformatik entwickelt wurde. Dieses Protokoll umfasst die Durchführung kritischer Qualitätsprüfungen, um zu bestätigen, dass die Sequenzierungsdaten für die biologische Interpretation geeignet sind. Wir gehen davon aus, dass das Befolgen des in diesem Artikel vorgestellten Einführungsprotokolls in Kombination mit der Downstream-Peak-Annotation es den Nutzern ermöglicht, biologische Erkenntnisse aus ihren eigenen CUT&RUN-Datensätzen zu gewinnen.

Einleitung

Die Fähigkeit, Wechselwirkungen zwischen Proteinen und genomischer DNA zu messen, ist von grundlegender Bedeutung für das Verständnis der Biologie der Chromatinregulation. Effektive Assays, die die Chromatinbelegung für ein bestimmtes Protein messen, liefern mindestens zwei Schlüsselinformationen: i) die genomische Lokalisierung und ii) die Proteinhäufigkeit in einer bestimmten genomischen Region. Die Verfolgung der Rekrutierungs- und Lokalisierungsänderungen eines Proteins von Interesse im Chromatin kann direkte Zielloci des Proteins aufdecken und mechanistische Rollen dieses Proteins in chromatinbasierten biologischen Prozessen wie ....

Protokoll

HINWEIS: Informationen zu CUT&RUN fastq-Dateien in GSE126612 finden Sie in Tabelle 1. Informationen zu den in dieser Studie verwendeten Softwareanwendungen sind in der Materialtabelle aufgeführt.

1. Herunterladen der Easy-Shells_CUTnRUN-Pipeline von der Github-Seite

  1. Öffnen Sie das Terminal über das Betriebssystem.
    HINWEIS: Wenn der Benutzer nicht sicher ist, wie das Terminal unter macOS und Windows geöffnet werden soll, lesen Sie diese Webseite (https://discovery.cs.illinois.edu/guides/System-Setup/terminal/). Für Linux lesen Sie bitte diese We....

Repräsentative Ergebnisse

Qualität und Adaptertrimmung behalten Lesevorgänge mit hoher Sequenzierungsqualität bei
Hochdurchsatz-Sequenzierungstechniken sind anfällig für Sequenzierungsfehler wie Sequenzierungsmutationen in Reads. Darüber hinaus können Sequenzierungsadapter-Dimere in Sequenzierungsdatensätzen angereichert werden, da der Adapter während der Bibliotheksvorbereitung schlecht entfernt wird. Übermäßige Sequenzierungsfehler, wie z. B. Read-Mutationen, die Generierung von .......

Diskussion

Die Fähigkeit, die Proteinbelegung auf dem Chromatin zu kartieren, ist von grundlegender Bedeutung für die Durchführung mechanistischer Studien auf dem Gebiet der Chromatinbiologie. Da Labore neue Nasslabortechniken zur Profilierung des Chromatins einführen, wird die Fähigkeit, Sequenzierungsdaten aus diesen Nasslaborexperimenten zu analysieren, zu einem häufigen Engpass für Nasslaborwissenschaftler. Daher beschreiben wir ein einführendes Schritt-für-Schritt-Protokoll, das es Bi.......

Offenlegungen

Die Autoren erklären keine Offenlegungen.

Danksagungen

Alle abgebildeten Figuren sind mit BioRender.com entstanden. Das CAI würdigt die Unterstützung durch einen Ovarian Cancer Research Alliance Early Career Investigator Award, einen Forbeck Foundation Accelerator Grant und den Minnestoa Ovarian Cancer Alliance National Early Detection Research Award.

....

Materialien

NameCompanyCatalog NumberComments
bedGraphToBigWigENCODEhttps://hgdownload.soe.ucsc.edu/admin/exe/Software to compress and convert readcounts bedGraph to bigWig
bedtools-2.31.1The Quinlan Lab @ the U. of Utahhttps://bedtools.readthedocs.io/en/latest/index.htmlSoftware to process bam/bed/bedGraph files
bowtie2 2.5.4Johns Hopkins Universityhttps://bowtie-bio.sourceforge.net/bowtie2/index.shtmlSoftware to build bowtie index and perform alignment
CollectInsertSizeMetrics (Picard)Broad institutehttps://github.com/broadinstitute/picardSoftware to perform insert size distribution analysis
CutadaptNBIShttps://cutadapt.readthedocs.io/en/stable/index.htmlSoftware to perform adapter trimming
Deeptoolsv3.5.1Max Planck Institutehttps://deeptools.readthedocs.io/en/develop/index.htmlSoftware to perform Pearson coefficient correlation analysis, Principal component analysis, and Heatmap/average plot analysis
FastQC Version 0.12.0Babraham Bioinformaticshttps://github.com/s-andrews/FastQCSoftware to check quality of fastq file
Intervenev0.6.1Computational Biology & Gene regulation - Mathelier grouphttps://intervene.readthedocs.io/en/latest/index.htmlSoftware to perform venn diagram analysis using peak files
MACSv2.2.9.1Chan Zuckerberg initiativehttps://github.com/macs3-project/MACS/tree/macs_v2Software to call peaks
MACSv3.0.2Chan Zuckerberg initiativehttps://github.com/macs3-project/MACS/tree/masterSoftware to call peaks
Samtools-1.21Wellcome Sanger Institutehttps://github.com/samtools/samtoolsSoftware to process sam/bam files
SEACRv1.3Howard Hughes Medial institutehttps://github.com/FredHutch/SEACRSoftware to call peaks
SRA Toolkit Release 3.1.1NCBIhttps://github.com/ncbi/sra-toolsSoftware to download SRR from GEO
Trim_Galore v0.6.10Babraham Bioinformaticshttps://github.com/FelixKrueger/TrimGaloreSoftware to perform quality and atapter trimming

Referenzen

  1. Hainer, S. J., Fazzio, T. G. High-resolution chromatin profiling using CUT&RUN. Curr Protoc Mol Biol. 126 (1), e85 (2019).
  2. Zhang, Y., et al. Model-based analysis of ChiP-Seq (MACS). Genome Biology. 9 (9), R137 (2008)....

Nachdrucke und Genehmigungen

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