Marco und Florian Seyfried Bueter wurden von der Deutschen Forschungsgemeinschaft (DFG) unterstützt. Thomas Lutz A wurde durch den Schweizerischen Nationalfonds (SNF) unterstützt. Marco Bueter und Thomas Lutz Eine weitere Mittel aus dem National Institute of Health (NIH) und aus dem Zürcher Zentrum für Integrative Humanphysiologie (ZIHP). Carel W le Roux wurde von einem Department of Health Clinician Scientist Award unterstützt. Imperial College London wird unterstützt von der NIHR Biomedical Research Centre Förderprogramm.

1. Präoperative Betreuung <ol><li> Entfernen Sie Lebensmittel aus Ratte über Nacht vor der Operation. </li><li> Induzieren Anästhesie in der Kammer mit 4-5% Isofluran und O2-Flow von 2 l / min. </li><li> Shave Bauch vom Brustbein bis zum Becken mit elektrischen Rasierer. </li><li> Platzieren Sie narkotisierten Ratte in Rückenlage auf isotherme Heizkissen. </li><li> Bewerben Augensalbe (Vitagel), bevor die Ratten &quot;Schnauze in Nasenkonus. </li><li> Aufrechterhaltung der Narkose mit Isofluran-Konzentration von 2-3% und O2-Flow von 2 l / min. </li><li> Desinfizieren Sie die Haut mit Betadine-Lösung. </li><li> Bestätigen Tiefe der Anästhesie mit einer Pinzette Prise zwischen den Zehen der Hinterhand. </li><li> Verwalten 5,7 mg / kg Enrofloxacin intraperitoneal als perioperative Antibiotikaprophylaxe und 1 mg / kg Flunixin zur Analgesie. </li></ol> 2. Mediane Laparotomie <ol><li> Führen Medianschnitt mit Skalpell ab knapp unter Schwertfortsatz (Blade Nr. 10). </li><li> Mobilisieren Haut Umfang von Unterlying Bauchmuskeln mit Metzenbaum-Schere. </li><li> Öffnen Sie Bauchhöhle. </li><li> Installieren Sie Retraktoren auf bestmögliche Belichtung des Operationsfeldes zu erleichtern. </li></ol> 3. Biliopankreatische und Ernährungskultur Limb <ol><li> Identifizieren Sie, wo das Duodenum oder proximalen Jejunum verläuft unter dem Doppelpunkt. </li><li> Transekt Dünndarm etwa 10 cm aboral von hier und Ligieren der beiden Enden des Darms (PDS 5-0). </li><li> Platzieren Sie proximalen Stumpf der beiden Enden im linken oberen Quadranten des Bauches, wie sie später verwendet werden soll, um die biliopankreatischer Schenkel des Roux-en-Y-Rekonstruktion zu bilden. </li><li> Platzieren Sie distalen Stumpf der beiden Enden in im rechten oberen Quadranten des Bauches, wie sie später verwendet werden soll, um die alimentäre Schenkel der Roux-en-Y-Rekonstruktion zu bilden. </li></ol> 4. Jejuno-Jejunostomie <ol><li> Identifizieren Blinddarm mit ileocoecal Ventil und Ileum. </li><li> Folgen Sie Ileum mündlich für ca. 25 cm. Die Jejuno-Jejunostomie wird hier als Ausgangspunkt platziert werdendes gemeinsamen Kanals von Roux-en-Y-Rekonstruktion. </li><li> Abrufen biliopankreatischer Glied vom linken oberen Quadranten des Bauches und positionieren Sie es neben dem gemeinsamen Kanal, wo Sie planen, Jejuno-Jejunostomie durchzuführen. </li><li> Sichere biliopankreatischer Leib und gemeinsamen Kanal mit Retention Stich (PDS 6-0). </li><li> Inzision beide Schleifen über annähernd 10 mm mit Mikro-Schere. </li><li> Erstellen Jejuno-Jejunostomie, indem Sie Seite-an-Seit-Anastomose mit Einzelknopfnähten (PDS 6-0). </li><li> Erste komplette dorsale Seite und dann Ventralseite Anastomose. </li></ol> 5. Magentasche <ol><li> Identifizieren gastroösophagealen Übergangs. </li><li> Mobilisieren Sie diesen Bereich durch Sezieren Magen-Leber-und Magen-Milz-Bänder mit Metzenbaum-Schere. </li><li> Bewegen Sie gastrica sinistra und Vagusfasern von links para-Ösophagus-Bündel seitlich zu starken Blutungen und Vagusnerv Schaden, wenn kleine Magentasche erstellt wird, zu verhindern. </li><li> Expose gastroösophagealer junction indem Wattestäbchen Retro-ösophageal. </li><li> Gerinnen kleinen Gefäßen der frontalen Magen durch Verwendung von handelsüblichen Kauterisierungsvorrichtung - auch, um Blutungen zu verhindern. </li><li> Transekt Magen etwa 5 mm unter gastro-ösophagealen Übergang schaffen Magentasche mit einer Größe von nicht mehr als 2-3% der ursprünglichen Größe Magen mit feinen, gebogenen Schere. </li><li> Schließen Restmagen (PDS 5-0). </li></ol> 6. Gastro-Jejunostomie <ol><li> Abrufen alimentäre Schenkel von rechten oberen Quadranten des Bauches und positionieren Sie es neben Magentasche. </li><li> Erstellen Gastro-Jejunostomie durch Ausführen Ende-zu-Seite-Anastomose (PDS 7-0). </li><li> Erste komplette Rückseite und dann Vorderseite der Anastomose. </li></ol> 7. Bauchdeckenverschluss <ol><li> Reduzieren Sie Anästhesie durch die Reduzierung Isofluran-Konzentration auf 1,5%. </li><li> Schließen Sie Muskelschicht der Bauchwand mit kontinuierlichen Fäden (PDS 4-0). </li><li> Administrieren 100 ul 0,3 mg / mlBuprenorphin-Lösung subkutan zur Analgesie. </li><li> Weitere Reduzierung Isofluran-Konzentration auf 1%. </li><li> Schließen Sie die Haut mit Einzelknopfnähten (Vicryl 4-0). </li></ol> 8. Postoperative Pflege <ol><li> Stoppen Isofluran und fahren Sie mit O2. </li><li> Verwalten 5 ml warmer Kochsalzlösung für Flüssigkeitsersatz in drei subkutanen Depots. </li><li> Position Ratte unter Rotlicht bis zur vollständigen Genesung. </li><li> Liefert die Ratte zu Hause Käfig. </li></ol> 9. Repräsentative Ergebnisse Tiere und Gehäuse Männliche Wistar-Ratten (Harlan Laboratories Inc., Schlehe, UK;. Elevage Janvier, Le Genest-St-Isle, Frankreich) mit einem Gewicht zwischen 350 und 500 g wurden einzeln unter einem 12 h / 12 h Hell-Dunkel-Zyklus bei einer Raumtemperatur untergebracht von 21 ± 2 ° C. Wasser und standardmäßigem Futter waren ad libitum zur Verfügung, sofern nicht anders angegeben. Alle Experimente wurden unter einer Lizenz von der Startseite Offi ausgestellt durchgeführtce, UK (PL70-6669) oder genehmigt durch das Veterinäramt des Kantons Zürich, Schweiz. Alle Ratten wurden eine Woche der Akklimatisation, bevor sie randomisiert, um Magen-Bypass-oder Sham-Operation gegeben. Nach der Operation erhielten die Ratten flüssige Nahrung für 3 Tage vor dem Zugang zum normalen Futter wurde neu installiert. Das Körpergewicht Daten unserer Ratte Magen-Bypass-Modell stehen im Einklang mit früheren Befunden, dass Magenbypass-Operation wirksam, um das Körpergewicht zu reduzieren und vor allem auf den Verlust an Körpergewicht (Abbildung 2) zu halten ist. Durchschnittliche präoperative Körpergewicht der Ratten, die für Magen-Bypass-und Sham-Operationen verwendet wurde, war ähnlich (Sham: 433,4 ± 8,3 g vs Bypass: 420,7 ± 8,4 g, p = 0,28). Fünf Tage nach der Operation scheinoperierten Kontrollen wog deutlich mehr im Vergleich zum Magen-Bypass-Ratten (Sham: 422,2 ± 8,3 g vs Bypass: 374,7 ± 7,6 g, p &lt;0,001). Am ersten postoperativen Tag 60, wurde Unterschied im Körpergewicht fast 170 g (Sham: 533,2 ± 8,1 g vs Bypass: 366,2 ± 10,8 g, p &lt;0,001). Die Nahrungsaufnahme Die Nahrungsaufnahme folgen ähnlichen Mustern wie Körpergewicht und wurde im Magen-Bypass-Ratten reduziert, wenn zu Sham-ad libitum gefütterten Ratten verglichen. Abbildung 3 zeigt die durchschnittliche tägliche Nahrungsaufnahme für beide Gruppen (postoperativen Tag 1-60). Tägliche Nahrungsaufnahme war durchweg niedriger nach Magenbypass (Sham: 29,9 ± 0,2 g vs Bypass: 25,7 ± 0,3 g, p &lt;0,001). Darmhormone Blut aus allen Ratten wurde am Tag der Beendigung Studie 8,16 erhoben. Tiere hatten ad libitum Zugang zu Nahrung in der Nacht vor und wurden zu Beginn des Zyklus Licht am postoperativen Tag 60 enthauptet. Blut wurde von unmittelbar bei 3000 UpM für 10 Minuten bei 4 ° C zentrifugiert und bei -20 ° C, bis die Proben wurden in doppelter Ausführung in einem einzigen Durchlauf getestet. PYY-like Immunreaktivität war meagemessen mit einem spezifischen und sensitiven Radioimmunoassay, die misst sowohl die volle Länge (PYY1-36) und das Fragment (PYY3-36). GLP-1 wurde geschaffen durch in-house Radioimmunoassays 17,18 gemessen. Unterschiede in der Nahrungsaufnahme kann teilweise durch eine erhöhte postprandiale Plasmaspiegel von Peptid YY (PYY) und Glucagon-like Peptide 1 (GLP-1) als Magen-Bypass-Ratten erklären zeigten signifikant höhere Werte für PYY (Sham: 26 ± 2 pmol / l vs . Bypass: 141 ± 14 pmol / l, p &lt;0,001) und GLP-1 (Sham: 40 ± 5 pmol / l vs Bypass: 215 ± 23 pmol / l, p &lt;0,001; Abbildung 4). <img alt="1" src="/files/ftp_upload/3940/3940fig1.jpg" /> Abbildung 1. Magen-Bypass-Anatomie. Schematische Darstellung des Dünndarms vor Anatomie (A) und nach (B) Magen-Bypass-Operation. Die verschiedenen Schattierungen von rot ca. repräsentieren entsprechenden Segmente des Dünndarms mit dem Medium Rot die Vorderdarm(Speiseröhre, Magen und Zwölffingerdarm proximalen Jejunum), das Licht rot, die den Mitteldarm (proximalen und mittleren Jejunum, Ileum proximalen) und die dunkelrote, die den Enddarm (Ileum, Caecum). <img alt="2" src="/files/ftp_upload/3940/3940fig2.jpg" /> Abbildung 2. . Verlust an Körpergewicht nach Magenbypass-Operation bei Ratten Veränderung des Körpergewichts bei einer repräsentativen Gruppe von Ratten nach Magenbypass (-) (n = 52) und Sham-Ratten (-) (n = 52) über einen Beobachtungszeitraum von 60 Tage. Die Daten wurden aus früheren Publikationen 6,8-10 gebündelt und sind als Mittelwerte ± SEM dargestellt (*** = p &lt;0,001). <img alt="Abbildung 3" src="/files/ftp_upload/3940/3940fig3.jpg" /> Abbildung 3. Durchschnittliche Nahrungsaufnahme nach der Magenbypass-Operation bei Ratten. Durchschnittliche tägliche Nahrungsaufnahme von einer repräsentativen Gruppe von Ratten nach Magenbypass (schwarz, n = 52) und Sham-Ratten (weiß, n = 52) über einpostoperativen Zeitraum von 60 Tagen. Die Daten wurden aus früheren Veröffentlichungen 6,8-10 gepoolt und sind als Mittelwerte ± SEM dargestellt. <img alt="Abbildung 3" src="/files/ftp_upload/3940/3940fig3.jpg" /> Abbildung 4. Postprandiale PYY und GLP-1-Serumspiegel nach Magenbypass-Operation bei Ratten. Postprandiale PYY und GLP-1-Serumspiegel für Magen-Bypass-Ratten (schwarz, n = 18) und Sham-Ratten (weiß, n = 22). Die Daten wurden aus bisherigen Veröffentlichungen 8,16 gebündelt und sind als Mittelwerte ± SEM dargestellt.

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J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Five-year+outcome+with+gastric+bypass:+Roux+limb+length+makes+a+difference.">Five-year outcome with gastric bypass: Roux limb length makes a difference.</a> Surg. Obes. Relat. Dis. 5, 242-247 (2009).</li><li>Lee, S., Sahagian, K. G., Schriver, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Relationship+between+varying+Roux+limb+lengths+and+weight+loss+in+gastric+bypass.">Relationship between varying Roux limb lengths and weight loss in gastric bypass.</a> Curr. Surg. 63, 259-263 (2006).</li><li>Hayes, M. R., Kanoski, S. E., De Jonghe, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+common+hepatic+branch+of+the+vagus+is+not+required+to+mediate+the+glycemic+and+food+intake+suppressive+effects+of+glucagon-like-peptide-1.">The common hepatic branch of the vagus is not required to mediate the glycemic and food intake suppressive effects of glucagon-like-peptide-1.</a> Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 301, R1479-R1485 (2011).</li></ol>

Keine Interessenskonflikte erklärt.

Der Roux-en-Y-Magenbypass Verfahren beim Menschen wurde erstmals von Mason im Jahr 1967 beschrieben und modifiziert, um seiner jetzigen Form von Torres im Jahr 1983 19. Derzeit besteht das Verfahren aus einem kleinen Magentasche und den Bypass des proximalen Dünndarms. Eine schematische Darstellung der prä-und postoperativen Anatomie ist in Abbildung 1 wiedergegeben. Magenbypass bei Menschen hervorruft und unterhält Gewichtsverlust von etwa 15-30% 2....

<table border="1"><tbody><tr><td> Generische Bezeichnung </td><td> Markenname </td><td> Firma </td><td> Katalog-Nummer </td></tr><tr><td> Enrofloxacin </td><td> Baytril 2,5% </td><td> Provet AG </td><td> 1036 </td></tr><tr><td> Flunixin </td><td> Finadyne </td><td> Graeub </td><td> 908040 </td></tr><tr><td> Buprenorphin </td><td> Temgesic </td><td> Reckitt Benckiser </td><td> 138976 </td></tr><tr><td> Isofluran </td><td> Isoflo </td><td> Graeub </td><td> 902035 </td></tr><tr><td> Vitamin A </td><td> Vitagel </td><td> Bausch &amp; Lomb </td><td> 690 </td></tr><tr><td> Jod-Lösung </td><td> Betadine </td><td> Mundipharma </td><td> 111141 </td></tr><tr><td> NaCl 0,9% </td><td> NaCl 0,9% </td><td> B. Braun </td><td> 534534 </td></tr></tbody></table> Tabelle 1. Drogen. <table border="1"><tbody><tr><td> Name </td><td> Größe </td><td> Firma </td><td> Katalog-Nummer </td></tr><tr><td> PDS II </td><td> 4-0 </td><td> Ethicon </td><td> Z924H </td></tr><tr><td> PDS II </td><td> 5-0 </td><td> Ethicon </td><td> Z925H </td></tr><tr><td> PDS II </td><td> 6-0 </td><td> Ethicon </td><td> PUU2971E </td></tr><tr><td> PDS II </td><td> 7-0 </td><td> Ethicon </td><td> Z1370E </td></tr><tr><td> Vicryl </td><td> 4-0 </td><td> Ethicon </td><td> V451H </td></tr></tbody></table> Tabelle 2. Nahtmaterial. <table border="1"><tbody><tr><td> Name </td><td> Firma </td><td> Katalog-Nummer </td></tr><tr><td> Skalpellgriff Nr. 3 </td><td> Aesculap </td><td> BB073R </td></tr><tr><td> Skalpellklingen Keine. 10 </td><td> Swann-Morton </td><td> 0301 </td></tr><tr><td> Nadelhalter </td><td> Aesculap </td><td> BM124R </td></tr><tr><td> Chirurgische Pinzette </td><td> Aesculap </td><td> BD555R </td></tr><tr><td> Metzenbaum Schere, gerade </td><td> Aesculap </td><td> BC022R </td></tr><tr><td> Metzenbaum-Schere, gebogen </td><td> Aesculap </td><td> BC023R </td></tr><tr><td> Zarte Schere, gebogen </td><td> Aesculap </td><td> BC061R </td></tr><tr><td> Arterienklemme, gebogen </td><td> Aesculap </td><td> BH109R </td></tr><tr><td> Arterienklemme, gebogen, 1x2 Zähne </td><td> Aesculap </td><td> BH121R </td></tr><tr><td> Probe-, Doppel-ended </td><td> Aesculap </td><td> BN113R </td></tr><tr><td> Micro Nadelhalter </td><td> Aesculap </td><td> FM 541R </td></tr><tr><td> Mikropinzetten </td><td> Aesculap </td><td> FM571R </td></tr><tr><td> Micro Schere </td><td> AescUlap </td><td> FM470R </td></tr><tr><td> Einweg-Augen-Kauter </td><td> John Weiss Internationalen </td><td> 0111122 </td></tr><tr><td> Wattestäbchen </td><td> Hartmann AG </td><td> 9679369 </td></tr></tbody></table> Tabelle 3. Chirurgische Geräte.

roux-en-y gastric bypass operation in rats

Derzeit ist die effektivste Therapie für die Behandlung der morbiden Adipositas, die signifikante und gepflegt Verlust an Körpergewicht mit einer bewährten Sterblichkeit Nutzen induzieren Adipositaschirurgie 1,2. Folglich hat es einen stetigen Anstieg der Zahl der bariatrischen Operationen getan in den letzten Jahren weltweit mit der Roux-en-Y-Magenbypass (Magenbypass) die am häufigsten durchgeführte Operation 3. Vor diesem Hintergrund ist es wichtig, die physiologischen Mechanismen, durch die Magen-Bypass induziert und hält den Verlust an Körpergewicht zu verstehen. Diese Mechanismen sind noch nicht vollständig verstanden, kann aber reduziert Hunger und zählen erhöhte Sättigung 4,5, 6,7 erhöhten Energieverbrauch, verändert Vorliebe für Lebensmittel mit hohem Fett-und Zucker 8,9, Salz und Wasser verändert Umgang mit der Niere 10 als sowie Änderungen in Darmmikrobiota 11. Solche Veränderungen nach Magen-Bypass gesehen kann zumindest teilweise aus, wie Stammzellendie Operation verändert die Hormonmilieu weil Magenbypass erhöht die postprandiale Freisetzung von Peptid-YY (PYY) und Glucagon-like-Peptid-1 (GLP-1), Hormone, die durch den Darm in Gegenwart von Nährstoffen freigesetzt werden und zu reduzieren essen 12. In den letzten zwei Jahrzehnten zahlreiche Studien mit Ratten wurden zur weiteren Untersuchung physiologische Veränderungen nach Magen-Bypass durchgeführt. Der Magen-Bypass-Ratten-Modell hat sich als ein wertvolles experimentelles Werkzeug nicht zuletzt sein, wie es ahmt genau den zeitlichen Verlauf und das Ausmaß der menschlichen Gewichtsverlust, sondern auch ermöglicht es den Forschern zu kontrollieren und zu manipulieren kritische anatomische und physiologische Faktoren, einschließlich der Verwendung von geeigneten Kontrollen. Folglich gibt es eine breite Palette von Ratten-Magen-Bypass-Modelle sind in der Literatur, an anderer Stelle ausführlicher 13-15. Die Beschreibung der genauen Operationstechnik dieser Modelle ist sehr unterschiedlich und unterscheidet sich in Bezug auf die Größe zB Beutel, des KörpersLängen, und die Erhaltung der Vagusnerv. Wenn berichtet, scheinen die Sterblichkeitsrate auf 0 bis 35% 15 reichen. Darüber hinaus hat der Operation wurde fast ausschließlich bei männlichen Ratten verschiedener Stämme und Altersstufen durchgeführt. Prä-und postoperative Ernährung ebenfalls variiert erheblich. Technische und experimentellen Variationen veröffentlicht Magen-Bypass-Ratte Modelle erschweren den Vergleich und die Identifizierung von potentiellen physiologischen Mechanismen im Magen-Bypass beteiligt. Es gibt keine eindeutigen Beweise dafür, dass jedes dieser Modelle überlegen ist, aber es ist ein aufstrebendes Notwendigkeit zur Standardisierung des Verfahrens, um einheitliche und vergleichbare Daten zu erzielen. Dieser Artikel soll daher darzulegen und zu diskutieren technische und experimentelle Details unserer zuvor validiert und veröffentlicht Magen-Bypass-Ratten-Modell.

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Roux-en-Y Gastric Bypass Operation in Rats

Zahlreiche Studien über Magen-Bypass-Ratte Modelle wurden erst kürzlich durchgeführt, um die zugrunde liegenden physiologischen Mechanismen der Roux-en-Y-Magenbypass-Operationen aufzudecken. Dieser Artikel soll zeigen, und diskutieren die technische und experimentelle Details unserer veröffentlichten Magen-Bypass-Ratten-Modell, um Vorteile und Grenzen dieser experimentelles Werkzeug zu verstehen.

Roux-en-Y-Magenbypass Operation in Ratten

Currently, the most effective therapy for the treatment of morbid obesity to induce significant and maintained body weight loss with a proven mortality ...

roux-en-y-gastric-bypass-operation-in-rats

Research

JoVE Journal

Medicine

23.4K Aufrufe.  University Hospital Zürich. Zahlreiche Studien über Magen-Bypass-Ratte Modelle wurden erst kürzlich durchgeführt, um die zugrunde liegenden physiologischen Mechanismen der Roux-en-Y-Magenbypass-Operationen aufzudecken. Dieser Artikel soll zeigen, und diskutieren die technische und experimentelle Details unserer veröffentlichten Magen-Bypass-Ratten-Modell, um Vorteile und Grenzen dieser experimentelles Werkzeug zu verstehen.

Serie: Roux-en-Y Gastric Bypass Operation in Rats

Techniques of Sleeve Gastrectomy and Modified Roux-en-Y Gastric Bypass in Mice

Obesity is a major public health issue, with a prevalence of 4 to 28% for men and 6.2 to 36.5% for women in Europe (from 2003 to 2008). Morbid obesity is frequently associated with metabolic complications, such as type 2 diabetes, hypertension, and dyslipidemia, reducing life expectancy and quality. In the absence of any effective noninvasive treatments, bariatric surgery is a valuable therapeutic option for patients with morbid obesity (body mass index (BMI) &#62;40 kg/m2), leading to long-term, sustained weight loss and improvements in metabolic complications. However, the underlying cellular and molecular mechanisms sustaining the beneficial effects of bariatric surgery are not yet fully understood. Due to the numerous genetically-modified strains available, the mouse model is the most convenient animal model to explore the molecular mechanisms behind the pleiotropic beneficial effects of bariatric surgeries. Here, we detailed the optimized healthcare methods and surgical protocols in mice for the two most widely-used bariatric surgeries: the sleeve gastrectomy and the modified Roux-en-Y gastric bypass. Deciphering the molecular mechanisms underlying the therapeutic effects of bariatric surgeries offers the promise of identifying new therapeutics targets.

Bariatric surgery is the most efficient way to reduce body weight and the deadly metabolic complications (diabetes, obesity, and dyslipidemia) frequently associated with morbid obesity. Mouse models of bariatric surgery represent a unique asset for deciphering molecular mechanisms behind the beneficial effects of these surgeries on diabetes, hypertension, and dyslipidemia.

Techniken der Schlauchmagen-Operation und Modified Roux-en-Y-Magenbypass bei Mäusen

Obesity is a major public health issue, with a prevalence of 4 to 28% for men and 6.2 to 36.5% for women in Europe (from 2003 to 2008). Morbid obesity is ...

Forschung

Medizin

Cardiopulmonary Bypass in a Mouse Model: A Novel Approach

As prolonged cardiopulmonary bypass becomes more essential during cardiac interventions, an increasing clinical demand arises for procedure optimization and for minimizing organ damage resulting from prolonged extracorporal circulation. The goal of this paper was to demonstrate a fully functional and clinically relevant model of cardiopulmonary bypass in a mouse. We report on the device design, perfusion circuit optimization, and microsurgical techniques. This model is an acute model, which is not compatible with survival due to the need for multiple blood drawings. Because of the range of tools available for mice (e.g., markers, knockouts, etc.), this model will facilitate investigation into the molecular mechanisms of organ damage and the effect of cardiopulmonary bypass in relation to other comorbidities.

This paper describes how to perform cardiopulmonary bypass in mice. This novel model will facilitate the investigation of the molecular mechanisms involved in organ damage.

Kardiopulmonalen Bypass in einem Mausmodell: ein neuer Ansatz

As prolonged cardiopulmonary bypass becomes more essential during cardiac interventions, an increasing clinical demand arises for procedure optimization ...

One-anastomosis Gastric Bypass (OAGB) in Rats

The goal of this protocol is to set up a preclinical model of bariatric surgery and, more specifically, OAGB in obese rats. Based on this preclinical model, longitudinal studies can be carried out to provide an improved understanding of the mechanisms underlying the outcomes seen after bariatric surgery in humans. For this purpose, rats are operated on through a laparotomy under general anesthesia with isoflurane. First, the surgeon creates a long and tubular gastric pouch: after greater curve and hiatal dissection, the nonglandular stomach is stapled and removed. Then, the remaining stomach is also stapled in order to create a gastric tube and exclude the antrum of the stomach. After that, the surgeon performs a single end-to-side gastrojejunostomy 35 cm from the duodenojejunal angle. This limb length has been chosen in order to reproduce the same ratio between the biliopancreatic limb (BPL) and common limb (CL) length as in human bariatric surgery. The operation ends by aponeurotic and cutaneous closure. The early postoperative management consists of subcutaneous hydration, an intramuscular prophylactic antibiotic injection, a parietal injection of xylocaine, the administration of painkillers, and a progressive reintroduction of diet.

One-anastomosis Gastric Bypass OAGB in Rats

This protocol is for the performance of one-anastomosis gastric bypass (OAGB) on rat. The operator performs a long and tubular-stapled gastric pouch followed by hand-sewn anastomosis. For this model, the operator reproduces the same ratio between biliopancreatic and common limb in humans; therefore, the biliopancreatic limb measures 35 cm.

Eine Anastomose Magenbypass (OAGB) bei Ratten

The goal of this protocol is to set up a preclinical model of bariatric surgery and, more specifically, OAGB in obese rats. Based on this preclinical ...

A Protocol for Roux-en-Y Gastric Bypass in Rats using Linear Staplers

Roux-en-Y gastric bypass (RYGB) is commonly performed for the treatment of severe obesity and type 2 diabetes. However, the mechanism of weight loss and metabolic changes are not well understood. Multiple factors are thought to play a role, including reduced caloric intake, decreased nutrient absorption, increased satiety, the release of satiety-promoting hormones, shifts in bile acid metabolism, and alterations in the gut microbiota.
The rat RYGB model presents an ideal framework to study these mechanisms. Prior work on mouse models have had high mortality rates, ranging from 17 to 52%, limiting their adoption. Rat models demonstrate more physiologic reserve to surgical stimulus and are technically easier to adopt as they allow for the use of surgical staplers. One challenge with surgical staplers, however, is that they often leave a large gastric pouch which is not representative of RYGB in humans. 
In this protocol, we present a RYGB protocol in rats that result in a small gastric pouch using surgical staplers. Utilizing two stapler fires which remove the forestomach of the rat, we obtain a smaller gastric pouch similar to that following a typical human RYGB. Surgical stapling also results in better hemostasis than sharp division. Additionally, the forestomach of the rat does not contain any glands and its removal should not alter the physiology of RYGB.
Weight loss and metabolic changes in the RYGB cohort were significant compared to the sham cohort, with significantly lower glucose tolerance at 14 weeks. Furthermore, this protocol has an excellent survival of 88.9% after RYGB. The skills described in this protocol can be acquired without previous microsurgical experience. Once mastered, this procedure will provide a reproducible tool for studying the mechanisms and effects of RYGB.

Roux-en-Y gastric bypass (RYGB) is performed to treat obesity and diabetes. However, the mechanisms underlying RYGB's efficacy are not fully understood, and studies are limited by technical difficulty leading to high mortality in animal models. This article provides instructions on how to perform RYGB in rats with high success rates.

Ein Protokoll für Roux-en-Y Magenbypass bei Ratten mit linearen Heftern

Roux-en-Y gastric bypass (RYGB) is commonly performed for the treatment of severe obesity and type 2 diabetes. However, the mechanism of weight loss and ...

Robotic Central Pancreatectomy with Roux-en-Y Pancreaticojejunostomy

Central pancreatectomy is a parenchyma-sparing alternative to distal pancreatectomy in patients with a benign or low-grade malignant tumor in the body of the pancreas. The aim of central pancreatectomy is to prevent postoperative life-long endocrine and exocrine insufficiency. The downside of central pancreatectomy is the high rate of postoperative pancreatic fistula, which is the main reason that many surgeons do not routinely use central pancreatectomy in eligible patients. Most studies report open or laparoscopic central pancreatectomy with a pancreatico-gastrostomy anastomosis in adults. This is the first description of a standardized approach to robotic central pancreatectomy with Roux-en-Y pancreaticojejunostomy reconstruction in an adolescent (16-year-old boy) with a pseudopapillary tumor in the body of the pancreas. The operation time was 248 min with 20 mL of blood loss. The postoperative course was uneventful except for the short-term medical treatment for a grade B pancreatic fistula. Robotic central pancreatectomy can be safely applied in selected patients in experienced centers.

Robotic central pancreatectomy may be used in selected patients in experienced centers. This protocol presents all steps and the feasibility of a robotic central pancreatectomy with Roux-en-Y pancreaticojejunostomy in a 16-year-old adolescent patient.

Robotische zentrale Pankreatektomie mit Roux-en-Y Pankreaticojejunostomie

Central pancreatectomy is a parenchyma-sparing alternative to distal pancreatectomy in patients with a benign or low-grade malignant tumor in the body of ...

Single-Anastomosis Duodeno-Ileal Bypass with Sleeve Gastrectomy Model in Mice

Obesity is a major health issue worldwide. As a response, bariatric surgeries have emerged to treat obesity and its related comorbidities (e.g., diabetes mellitus, dyslipidemia, non-alcoholic steatohepatitis, cardiovascular events, and cancers) through restrictive and malabsorptive mechanisms. Understanding the mechanisms by which these procedures allow such improvements often require their transposition into animals, especially in mice, because of the ease of generating genetically modified animals. Recently, the single-anastomosis duodeno-ileal bypass with sleeve gastrectomy (SADI-S) has emerged as a procedure that uses both restrictive and malabsorptive effects, which is being used as an alternative to gastric bypass in case of major obesity. Thus far, this procedure has been associated with strong metabolic improvements, which has led to a marked increase in its use in daily clinical practice. However, the mechanisms underlying these metabolic effects have been poorly studied as a result of a lack of animal models. In this article, we present a reliable and reproducible model of SADI-S in mice, with a special focus on perioperative management. The description and use of this new rodent model will be helpful for the scientific community to better understand the molecular, metabolic, and structural changes induced by the SADI-S and to better define the surgical indications for clinical practice.

Single-anastomosis duodeno-ileal bypass (SADI-S) is an emerging bariatric procedure with important metabolic effects. In this article, we present a reliable and reproducible model of SADI-S in mice.

Duodeno-ilealer Bypass mit Sleeve-Gastrektomie-Modell bei Mäusen

Obesity is a major health issue worldwide. As a response, bariatric surgeries have emerged to treat obesity and its related comorbidities (e.g., diabetes ...

Magenultraschalltechnik zur Minderung des periprozeduralen Aspirationsrisikos

Gastric Point of Care Ultrasound in Adults: Image Acquisition and Interpretation

Over the past two decades, diagnostic point-of-care ultrasound (POCUS) has emerged as a rapid and non-invasive bedside tool for addressing clinical inquiries related to gastric content. One emerging concern pertains to patients about to undergo sedation and/or endotracheal intubation: the elevated risk of aspiration from the patient&#39;s stomach contents. Aspiration of gastric contents into the lungs poses a serious and potentially life-threatening complication. This occurs more frequently when the stomach is considered &#34;full&#34; and can be affected by the techniques employed for airway management, making it potentially preventable. To mitigate the risk of peri-procedural aspiration, two distinct medical specialties (anesthesiology and critical care medicine) have independently developed techniques to utilize ultrasonography for identifying patients requiring &#34;full stomach&#34; precautions. Due to these separate specialties, the work of each group remains relatively unfamiliar outside its respective field. This article presents descriptions of both techniques for gastric ultrasound. Furthermore, it explains how these approaches can complement each other when one of them falls short. Regarding image acquisition, the article covers the following topics: indications and contraindications, selection of the appropriate probe, patient positioning, and troubleshooting. The article also delves into image interpretation, complete with example images. Additionally, it demonstrates how one of the two techniques can be employed to estimate gastric fluid volume. Lastly, the article briefly discusses medical decision-making based on the findings of this examination.

Autor im Rampenlicht: Point-of-Care-Ultraschall zur Beurteilung des Mageninhalts und zur Risikostratifizierung in der perioperativen Versorgung 

This protocol introduces two methods for image acquisition in gastric ultrasonography. Additionally, tips are provided for interpreting this information to assist in medical decision-making.

Magen-Point-of-Care-Ultraschall bei Erwachsenen: Bildaufnahme und -interpretation

Over the past two decades, diagnostic point-of-care ultrasound (POCUS) has emerged as a rapid and non-invasive bedside tool for addressing clinical ...