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El método aquí presentado puede evaluar el efecto de los reactivos sobre la angiogénesis o la permeabilidad vascular in vivo sin tinción. El método utiliza la inyección de dextrano-FITC a través de la vena de la cola para visualizar los neovasos o la fuga vascular.
Se han desarrollado varios modelos para investigar la angiogénesis in vivo. Sin embargo, la mayoría de estos modelos son complejos y costosos, requieren equipos especializados o son difíciles de realizar para su posterior análisis cuantitativo. En este trabajo se presenta un ensayo de tapón de gel de matriz modificada para evaluar la angiogénesis in vivo. En este protocolo, las células vasculares se mezclaron con gel de matriz en presencia o ausencia de reactivos proangiogénicos o antiangiogénicos, y luego se inyectaron por vía subcutánea en la espalda de los ratones receptores. Después de 7 días, se inyecta solución salina tampón fosfato que contiene dextrano-FITC a través de la vena de la cola y se hace circular en los vasos durante 30 min. Los tapones de gel de matriz se recogen y se incrustan con gel de inclusión de tejido, luego se cortan secciones de 12 μm para la detección de fluorescencia sin tinción. En este ensayo, el dextrano-FITC con alto peso molecular (~150.000 Da) se puede utilizar para indicar los vasos funcionales para detectar su longitud, mientras que el dextrano-FITC con bajo peso molecular (~4.400 Da) se puede utilizar para indicar la permeabilidad de los neovasos. En conclusión, este protocolo puede proporcionar un método fiable y conveniente para el estudio cuantitativo de la angiogénesis in vivo.
La angiogénesis, el proceso de formación de neovasos a partir de vasos preexistentes, desempeña un papel fundamental en muchos procesos fisiológicos y patológicos, como el desarrollo embrionario, la cicatrización de heridas, la aterosclerosis, el desarrollo tumoral, etc.1,2,3,4,5. Este proceso dinámico involucra varias etapas, incluyendo la degradación de la matriz, la proliferación de células vasculares, la migración y autoorganización para formar estructuras tubulares y la estabilización de los neovasos
Todos los procedimientos que involucran animales fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (IACUC) de la Universidad Médica de Wenzhou (XMSQ2021-0057, 19 de julio de 2021). Todos los reactivos y consumibles se enumeran en la Tabla de materiales.
1. Preparación del medio de cultivo
La Figura 1 es el diagrama de flujo que muestra cómo preparar la mezcla de gel de matriz, células vasculares, medio de cultivo y reactivo. A continuación, la mezcla se inyectó por vía subcutánea en la espalda de ratones Nu/Nu y se calentó con una almohadilla térmica para acelerar su coagulación y finalmente formar un tapón de gel.
La Figura 2A es el diagrama de flujo para indicar los vasos con dextrano marcado con fluorescen.......
Presentamos un método fiable y conveniente para la evaluación cuantitativa de la angiogénesis in vivo sin tinción. En este protocolo, las células vasculares se mezclaron con gel de matriz en presencia de reactivos proangiogénicos o antiangiogénicos, y luego se inyectaron por vía subcutánea en la parte posterior de los ratones Nu/Nu para formar un tapón de gel (Figura 1). Después de 7 días de formación del tapón de gel, se inyectó dextran-FITC por vía intravenosa y se.......
Los autores declaran no tener ningún conflicto de intereses.
Este trabajo fue financiado por la Fundación de Ciencias Naturales de la Provincia de Zhejiang (LY22H020005) y la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (81873466).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Adhesion Microscope Slides | CITOTEST | 188105 | |
Anesthesia System | RWD | R640-S1 | |
Cell Counter | Invitrogen | AMQAX1000 | |
Cell Culture Dish | Corning | 430167 | |
Cryoslicer | Thermo Fisher | CryoStar NX50 | |
Dextrans-FITC-150kDa | WEIHUA BIO | WH007N07 | |
Dextrans-FITC-4kDa | WEIHUA BIO | WH007N0705 | |
Embedding Cassettes | CITOTEST | 80203-0007 | |
Endothelial Cell Medium | ScienCell | 35809 | |
Endothelial Growth Supplements | ScienCell | 1025 | |
Fetal Bovine Serum | Gibco | 10100147C | |
Fibroblast Growth Factor 1 | AtaGenix | 9043p-082318-A01 | FGF1 |
Fluorescence Microscope | Nikon | ECLIPSE Ni | |
Heating Pad | Boruida | 30-50-30 | |
Insulin Syringe | BD | 300841 | |
Isoflurane | RWD | R510-22-10 | |
Laboratory Balance | Sartorius | BSA124S-CW | |
Matrigel | Corning | 356234 | Matrix gel |
Medium 199 powder | Gibco | 31100-035 | |
Microtubes | Axygen | MCT-150-C | |
Optimal Cutting Temperature (OCT) Compound | SUKURA | 4583 | Tissue embedding gel |
Palmitate Acid | KunChuang | KC001 | |
Penicillin-Streptomycin Liquid | Solarbio | P1400 | |
Phosphate Buffer Saline | Solarbio | P1022 | |
Surgical Instruments | RWD | RWD | |
Tail Vein Injection Instrument | KEW BASIS | KW-XXY | |
Trypsin-EDTA Solution | Solarbio | T1320 | |
Ultra-Low Temperature Freezer | eppendorf | U410 | |
Vascular Endothelial Growth Factor | CHAMOT | CM058-5HP | VEGF |
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