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El método aquí presentado puede evaluar el efecto de los reactivos sobre la angiogénesis o la permeabilidad vascular in vivo sin tinción. El método utiliza la inyección de dextrano-FITC a través de la vena de la cola para visualizar los neovasos o la fuga vascular.
Se han desarrollado varios modelos para investigar la angiogénesis in vivo. Sin embargo, la mayoría de estos modelos son complejos y costosos, requieren equipos especializados o son difíciles de realizar para su posterior análisis cuantitativo. En este trabajo se presenta un ensayo de tapón de gel de matriz modificada para evaluar la angiogénesis in vivo. En este protocolo, las células vasculares se mezclaron con gel de matriz en presencia o ausencia de reactivos proangiogénicos o antiangiogénicos, y luego se inyectaron por vía subcutánea en la espalda de los ratones receptores. Después de 7 días, se inyecta solución salina tampón fosfato que contiene dextrano-FITC a través de la vena de la cola y se hace circular en los vasos durante 30 min. Los tapones de gel de matriz se recogen y se incrustan con gel de inclusión de tejido, luego se cortan secciones de 12 μm para la detección de fluorescencia sin tinción. En este ensayo, el dextrano-FITC con alto peso molecular (~150.000 Da) se puede utilizar para indicar los vasos funcionales para detectar su longitud, mientras que el dextrano-FITC con bajo peso molecular (~4.400 Da) se puede utilizar para indicar la permeabilidad de los neovasos. En conclusión, este protocolo puede proporcionar un método fiable y conveniente para el estudio cuantitativo de la angiogénesis in vivo.
La angiogénesis, el proceso de formación de neovasos a partir de vasos preexistentes, desempeña un papel fundamental en muchos procesos fisiológicos y patológicos, como el desarrollo embrionario, la cicatrización de heridas, la aterosclerosis, el desarrollo tumoral, etc.1,2,3,4,5. Este proceso dinámico involucra varias etapas, incluyendo la degradación de la matriz, la proliferación de células vasculares, la migración y autoorganización para formar estructuras tubulares y la estabilización de los neovasos6. Se ha demostrado que la promoción de la angiogénesis es fundamental en el tratamiento del infarto de miocardio, el accidente cerebrovascular y otros tipos de enfermedades isquémicas7, mientras que la inhibición de la angiogénesis se ha considerado una estrategia prometedora en el tratamiento de cánceres8 y enfermedades reumatoides9. La angiogénesis ha sido considerada como un principio organizador para el descubrimiento de fármacos10. Por lo tanto, la construcción de un método confiable y conveniente para evaluar el alcance de la angiogénesis es fundamental para la investigación mecánica o el descubrimiento de fármacos en enfermedades dependientes de angiogénesis.
Se han desarrollado varios modelos in vitro e in vivo para evaluar la angiogénesis11. Entre estos, los modelos bidimensionales (2-D), como el ensayo de formación de tubos de gelde matriz 12, no pueden formar estructuras tubulares funcionales. Los modelos animales, como el modelo de isquemia de las extremidades posteriores13,14, pueden reproducir el proceso de angiogénesis, pero son complejos y requieren un sistema de imágenes de flujo sanguíneo con manchas láser. Los modelos 3D de morfogénesis vascular, como el ensayo de tapón de gel de matriz, proporcionan una plataforma simple que puede imitar el proceso de angiogénesis in vivo15, pero la detección de angiogénesis requiere inmunohistoquímica o tinción de inmunofluorescencia 16,17,18, que son variables y poco visualizadas.
Aquí, describimos un protocolo para un ensayo de tapón de gel de matriz modificada en el que las células vasculares se mezclaron con gel de matriz y se inyectaron subcutáneamente en la parte posterior de ratones para formar un tapón. En el tapón, las células vasculares necesitan degradar la matriz, proliferar, migrar y autoorganizarse para finalmente formar vasos funcionales con flujo sanguíneo en el entorno interno. A partir de entonces, se inyecta dextrano marcado con fluorescencia a través de la vena de la cola, para fluir a través del tapón, y la etiqueta se visualiza para indicar neovasos. El contenido de angiogénesis puede evaluarse cuantitativamente por la longitud de los vasos. Este método puede formar vasos funcionales que no se pueden producir en modelos de angiogénesis 2D12, y no necesita un proceso de tinción complejo como en el ensayo de tapón de gel de matriz ordinario11. Tampoco requiere instrumentos específicos costosos como el sistema de imágenes de flujo sanguíneo moteado con láser en la isquemia de las extremidades posteriores modelo 13,14,19. Este método es versátil, de bajo costo, cuantificable y fácil de realizar, y puede utilizarse para determinar la capacidad proangiogénica o antiangiogénica de los fármacos o utilizarse en la investigación mecánica implicada en la angiogénesis.
Todos los procedimientos que involucran animales fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (IACUC) de la Universidad Médica de Wenzhou (XMSQ2021-0057, 19 de julio de 2021). Todos los reactivos y consumibles se enumeran en la Tabla de materiales.
1. Preparación del medio de cultivo
2. Preparación de células vasculares
3. Preparación del gel de matriz
4. Preparación del ratón
5. Inyección de mezcla de gel de matriz
6. Inyección de Dextran-FITC a través de la vena de la cola
7. Colección de tapones de gel Matrix
8. Incrustación del tapón de gel de matriz y preparación de la sección
9. Cuantificación de la angiogénesis (Figura 3)
10. Cuantificación de la permeabilidad vascular (Figura 4)
La Figura 1 es el diagrama de flujo que muestra cómo preparar la mezcla de gel de matriz, células vasculares, medio de cultivo y reactivo. A continuación, la mezcla se inyectó por vía subcutánea en la espalda de ratones Nu/Nu y se calentó con una almohadilla térmica para acelerar su coagulación y finalmente formar un tapón de gel.
La Figura 2A es el diagrama de flujo para indicar los vasos con dextrano marcado con fluorescen...
Presentamos un método fiable y conveniente para la evaluación cuantitativa de la angiogénesis in vivo sin tinción. En este protocolo, las células vasculares se mezclaron con gel de matriz en presencia de reactivos proangiogénicos o antiangiogénicos, y luego se inyectaron por vía subcutánea en la parte posterior de los ratones Nu/Nu para formar un tapón de gel (Figura 1). Después de 7 días de formación del tapón de gel, se inyectó dextran-FITC por vía intravenosa y se...
Los autores declaran no tener ningún conflicto de intereses.
Este trabajo fue financiado por la Fundación de Ciencias Naturales de la Provincia de Zhejiang (LY22H020005) y la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (81873466).
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Adhesion Microscope Slides | CITOTEST | 188105 | |
Anesthesia System | RWD | R640-S1 | |
Cell Counter | Invitrogen | AMQAX1000 | |
Cell Culture Dish | Corning | 430167 | |
Cryoslicer | Thermo Fisher | CryoStar NX50 | |
Dextrans-FITC-150kDa | WEIHUA BIO | WH007N07 | |
Dextrans-FITC-4kDa | WEIHUA BIO | WH007N0705 | |
Embedding Cassettes | CITOTEST | 80203-0007 | |
Endothelial Cell Medium | ScienCell | 35809 | |
Endothelial Growth Supplements | ScienCell | 1025 | |
Fetal Bovine Serum | Gibco | 10100147C | |
Fibroblast Growth Factor 1 | AtaGenix | 9043p-082318-A01 | FGF1 |
Fluorescence Microscope | Nikon | ECLIPSE Ni | |
Heating Pad | Boruida | 30-50-30 | |
Insulin Syringe | BD | 300841 | |
Isoflurane | RWD | R510-22-10 | |
Laboratory Balance | Sartorius | BSA124S-CW | |
Matrigel | Corning | 356234 | Matrix gel |
Medium 199 powder | Gibco | 31100-035 | |
Microtubes | Axygen | MCT-150-C | |
Optimal Cutting Temperature (OCT) Compound | SUKURA | 4583 | Tissue embedding gel |
Palmitate Acid | KunChuang | KC001 | |
Penicillin-Streptomycin Liquid | Solarbio | P1400 | |
Phosphate Buffer Saline | Solarbio | P1022 | |
Surgical Instruments | RWD | RWD | |
Tail Vein Injection Instrument | KEW BASIS | KW-XXY | |
Trypsin-EDTA Solution | Solarbio | T1320 | |
Ultra-Low Temperature Freezer | eppendorf | U410 | |
Vascular Endothelial Growth Factor | CHAMOT | CM058-5HP | VEGF |
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