Un abonnement à JoVE est nécessaire pour voir ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre essai gratuit.
La méthode présentée ici permet d’évaluer l’effet des réactifs sur l’angiogenèse ou la perméabilité vasculaire in vivo sans coloration. La méthode utilise l’injection de dextran-FITC via la veine de la queue pour visualiser les néo-vaisseaux ou les fuites vasculaires.
Plusieurs modèles ont été développés pour étudier l’angiogenèse in vivo. Cependant, la plupart de ces modèles sont complexes et coûteux, nécessitent un équipement spécialisé ou sont difficiles à réaliser pour une analyse quantitative ultérieure. Nous présentons ici un test de bouchon de gel matriciel modifié pour évaluer l’angiogenèse in vivo. Dans ce protocole, les cellules vasculaires ont été mélangées à du gel matriciel en présence ou en l’absence de réactifs pro-angiogéniques ou anti-angiogéniques, puis injectées par voie sous-cutanée dans le dos de souris receveuses. Après 7 jours, une solution saline tampon phosphate contenant du dextran-FITC est injectée par la veine de la queue et circule dans des vaisseaux pendant 30 min. Des bouchons de gel matriciel sont collectés et intégrés dans du gel d’enrobage tissulaire, puis des sections de 12 μm sont découpées pour la détection par fluorescence sans coloration. Dans ce test, le dextran-FITC de haut poids moléculaire (~150 000 Da) peut être utilisé pour indiquer les vaisseaux fonctionnels pour détecter leur longueur, tandis que le dextran-FITC de faible poids moléculaire (~4 400 Da) peut être utilisé pour indiquer la perméabilité des néo-vaisseaux. En conclusion, ce protocole peut fournir une méthode fiable et pratique pour l’étude quantitative de l’angiogenèse in vivo.
L’angiogenèse, le processus de formation de néo-vaisseaux à partir de vaisseaux préexistants, joue un rôle essentiel dans de nombreux processus physiologiques et pathologiques, tels que le développement embryonnaire, la cicatrisation des plaies, l’athérosclérose, le développement tumoral, etc.1,2,3,4,5. Ce processus dynamique implique plusieurs étapes, dont la dégradation de la matrice, la prolifération des cellules vasculaires, la migration et l’auto-organisation pour former des structures tubulaires et la....
Toutes les procédures impliquant des sujets animaux ont été approuvées par le Comité institutionnel de soin et d’utilisation des animaux (IACUC) de l’Université médicale de Wenzhou (XMSQ2021-0057, 19juillet 2021). Tous les réactifs et consommables sont répertoriés dans la table des matériaux.
1. Préparation du milieu de culture
La figure 1 est l’organigramme illustrant comment préparer le mélange de gel matriciel, de cellules vasculaires, de milieu de culture et de réactif. Le mélange a ensuite été injecté par voie sous-cutanée dans le dos de souris Nu/Nu et chauffé à l’aide d’un coussin chauffant pour accélérer sa coagulation et finalement former un bouchon de gel.
La figure 2A est l’organigramme permettant d’indiquer les récipients c.......
Nous présentons une méthode fiable et pratique pour l’évaluation quantitative de l’angiogenèse in vivo sans coloration. Dans ce protocole, les cellules vasculaires ont été mélangées à du gel matriciel en présence de réactifs pro-angiogéniques ou anti-angiogéniques, puis injectées par voie sous-cutanée dans le dos de souris Nu/Nu pour former un bouchon de gel (Figure 1). Après 7 jours de formation d’un bouchon de gel, le dextran-FITC a été injecté par voie in.......
Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts.
Ce travail a été financé par la Fondation des sciences naturelles de la province du Zhejiang (LY22H020005) et la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (81873466).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Adhesion Microscope Slides | CITOTEST | 188105 | |
Anesthesia System | RWD | R640-S1 | |
Cell Counter | Invitrogen | AMQAX1000 | |
Cell Culture Dish | Corning | 430167 | |
Cryoslicer | Thermo Fisher | CryoStar NX50 | |
Dextrans-FITC-150kDa | WEIHUA BIO | WH007N07 | |
Dextrans-FITC-4kDa | WEIHUA BIO | WH007N0705 | |
Embedding Cassettes | CITOTEST | 80203-0007 | |
Endothelial Cell Medium | ScienCell | 35809 | |
Endothelial Growth Supplements | ScienCell | 1025 | |
Fetal Bovine Serum | Gibco | 10100147C | |
Fibroblast Growth Factor 1 | AtaGenix | 9043p-082318-A01 | FGF1 |
Fluorescence Microscope | Nikon | ECLIPSE Ni | |
Heating Pad | Boruida | 30-50-30 | |
Insulin Syringe | BD | 300841 | |
Isoflurane | RWD | R510-22-10 | |
Laboratory Balance | Sartorius | BSA124S-CW | |
Matrigel | Corning | 356234 | Matrix gel |
Medium 199 powder | Gibco | 31100-035 | |
Microtubes | Axygen | MCT-150-C | |
Optimal Cutting Temperature (OCT) Compound | SUKURA | 4583 | Tissue embedding gel |
Palmitate Acid | KunChuang | KC001 | |
Penicillin-Streptomycin Liquid | Solarbio | P1400 | |
Phosphate Buffer Saline | Solarbio | P1022 | |
Surgical Instruments | RWD | RWD | |
Tail Vein Injection Instrument | KEW BASIS | KW-XXY | |
Trypsin-EDTA Solution | Solarbio | T1320 | |
Ultra-Low Temperature Freezer | eppendorf | U410 | |
Vascular Endothelial Growth Factor | CHAMOT | CM058-5HP | VEGF |
Demande d’autorisation pour utiliser le texte ou les figures de cet article JoVE
Demande d’autorisationThis article has been published
Video Coming Soon