Los autores desean agradecer al Dr. Brent Harris para proporcionar la revisión crítica del manuscrito. Estos estudios se realizaron en el Lombardi Comprehensive Cancer Center Histopatología y Tejidos recurso compartido que está apoyado en parte por el NIH / NCI subvención P30-CA051008. El contenido es responsabilidad exclusiva de los autores y no representa necesariamente las opiniones oficiales del Instituto Nacional del Cáncer o los Institutos Nacionales de Salud.

1. Construcción de la mancha <ol><li> Añadir 50 mg de albúmina de suero bovino (BSA) a 1 ml de tejido tinte de marcado en un tubo cónico de 15 ml o 2 ml tubo de microcentrífuga y agitar durante 1 min o hasta que esté completamente disuelto. Nota: Para este protocolo, utilice bioquímica Grado BSA. Mientras que otros grados y purezas no han sido probados, se espera que el grado y la pureza no tendrían un impacto significativo en el éxito de la mancha. </li><li> Heat 9 ml hidroxietil gel de agarosa de procesamiento en un tubo cónico de 15 ml en un microondas a potencia 30% para incrementos de 10 seg hasta que el gel se funde completamente. </li><li> Combinar el gel de procesamiento fundido y solución de colorante-BSA en un solo tubo cónico de 15 ml y mezclar bien con una pipeta. Vortex la solución. </li><li> Colocar el tubo cónico en un refrigerador por algunos hrs o hasta que sólido. </li><li> Utilice un, espátula de metal larga y delgada o sonda para liberar suavemente el tapón de gel de color del tubo cónico. </li><li> Use una hoja de bisturí o una navaja a Cut el gel enchufe transversalmente en 5 mm de espesor secciones. Retire los extremos redondeados y desechar como residuos (Figura 2). </li><li> Coloque las secciones de conexión de gel planas en cassettes de histología y mantenga en etanol al 70% durante 1 hora. Cambie la solución de etanol al 70% cada 2-4 horas durante por lo menos 3 cambios durante un período de 24 hr. </li><li> Procesar manualmente las secciones gel a través de una serie de etanol (1 hr cada uno: etanol al 70%, etanol al 80%, etanol al 95%, etanol al 100% (cambios 3x), y luego despejado en la limpieza de solución de 3x durante 1 hr cada uno (por ejemplo, hidrocarburos alifáticos ( xilenos sustituto)) se utilizaron en este protocolo, xilenos también son aceptables), y se infiltran con parafina fundida (3x durante 1 hora cada uno), ya sea manualmente o en una procesadora de tejidos. Nota: Antes de la completa deshidratación en etanol 100%, el colorante puede gotear de la clavija de gel que podría afectar a otros tejidos y los reactivos líquidos en un procesador automatizado de tejido. Como es muy recomendable por ejemplo, la rehidratación manual, sin embargo procesamiento automatizado es equaliado eficaz. </li><li> Múltiples secciones de gel procesados ​​Integrar utilizando parafina estándar incrustar metodología (Figura 2B). Permitir que los bloques se enfríen y se endurecen y luego vienen a temperatura ambiente. </li><li> Utilice una aguja de perforación cutánea de tamaño deseado para eliminar núcleos punto desde las secciones de gel embebidos hasta que el bloque se agota (Figura 2C). Un solo bloque puede proporcionar hasta 20 x 2 mm 2 núcleos. Almacene los núcleos en un lugar fresco. Utilice punzón dérmico en este protocolo véanse las figuras, un 1,5 mm (figuras 1D, y 2D) o un 2 mm (figuras 1B, 1C y 2C). </li></ol> 2. Uso de lugares para Bloques Orient no dispuestas- <ol><li> Crear un diagrama de orientación del tejido para indicar los lugares deseados y las identidades de todas las piezas de tejido individuales para ser integrados juntos, y la ubicación de la mancha. NOTA: El diagrama de orientación del tejido es un mapa ilustrado que incluye la pubicaciones ÍSICA de todas las piezas de tejido marcados con identificadores y la ubicación de la mancha. Puede ser creado electrónicamente o puede ser dibujado a mano. El diagrama se debe crear utilizando cualquier método que mejor se adapte al técnico e investigador con el producto final. Este mapa servirá como guía para el investigador lo que las muestras pueden ser fácilmente identificados durante el análisis microscópico. El mapa utilizado en este protocolo fue elaborado a mano. Representa a un bloque de tejido y el vidrio portaobjetos de microscopio con cada pieza de tejido y el punto dibujado y etiquetados en la misma posición que el bloque de tejido real y tobogán. </li><li> Procesar los trozos de tejido normalmente, asegurando que queden debidamente identificados a través de los pasos de extrapolación y de procesamiento. Para este protocolo, procesar los tejidos durante 1 hr cada uno en: 70% de etanol, etanol al 80%, etanol al 95%, etanol al 100% (cambios x3), hidrocarburos alifáticos (xilenos) (sustitutos cambios x3), y la infiltración de parafina fundida tejido en 60 ° C (cambios x3). NOTA: Atejidos ll deben procesarse siguiendo procedimientos de laboratorio de histología normal. Esto puede ser variable debido al procedimiento de laboratorio individual, el tamaño y el tipo de tejido, pero esto no afectará a la capacidad de utilizar el lugar como una herramienta de orientación. </li><li> Organizar piezas de tejido en la estación de la incrustación en los lugares asignados correctos de acuerdo con el diagrama de la orientación del tejido. Utilice el diagrama de orientación del tejido como una referencia para guiar el técnico sobre la forma de organizar las piezas Spot y tejidos en cada cuadra. NOTA: En este protocolo el técnico incrustación de poner el mapa de orientación a mano junto a la estación de incrustación y arregló las piezas de tejido en la estación de incrustación exactamente de la misma disposición que dibujada en el diagrama. Esto asegura que todos los trozos de tejido permanecen correctamente identificable en el producto final. Esto es absolutamente fundamental para el uso exitoso de bloques de múltiples tejidos. </li><li> Asegúrese de que el núcleo de SPOT es más alto que todas las piezas de tejido para ser incorporados en el bloque. </li><li> Insertar las piezas de tejido y luego el punto en el extremo (transversal) en los lugares adecuados de acuerdo con el diagrama de orientación de tejido utilizando la metodología estándar de la incrustación. Según sea necesario, mantenga el punto (s) en posición vertical con las pinzas hasta que la parafina se ha solidificado lo suficiente que el punto (s) no se caiga (1-2 min). </li><li> Sección y parafina mancha secciones con el lugar utilizando metodología estándar. <ol><li> Permita que las secciones para flotar en un baño de agua a 40 ° C y se adhirieron a un portaobjetos de vidrio con carga positiva (diapositivas sin carga no se han probado). Secar los portaobjetos en un horno de secado a 60 ° C durante al menos 20 min. </li><li> Colocar los portaobjetos en una stainer automático y procesados ​​a través de los siguientes reactivos: xilenos (xilenos 1-5 min, xilenos 2 y 3-2 min, cada uno), etanol 100% (2 min), etanol 95% (1 min), 80 % de etanol (30 seg), etanol 70% (30 seg), el agua del grifo (2 min), hematoxilina (1,5 min), agua del grifo (3 min), alcohol ácido (1 min), agua del grifo (2 min ), blreactivo uing (1 min), agua corriente (2 min), etanol 80% (30 seg), eosina (1 min), agua corriente (10 seg), etanol 80% (1 min), etanol 100% (3 cambios, 2 min cada uno), xilenos (3 cambios, 30 seg cada uno). </li><li> Cubra los portaobjetos con cubreobjetos de vidrio, montadas con medio de montaje. NOTA: En este protocolo, el histólogo seccionó los bloques de parafina en un micrótomo de 5 micras secciones. Para este protocolo se utilizó un stainer automática, sin embargo igualdad de resultados pueden ser obtenidos a través de tinción manual. </li></ol></li></ol> 3. lugar en TMA (TMA Kit Manual) <ol><li> Crear un diagrama de orientación del tejido, como se describe en 2.1 y asignar la ubicación deseada (s) de la mancha. </li><li> Llenar el molde con parafina derretida TMA en una estación de incrustación. A medida que el molde se está enfriando, incrustar el punto (s) en el extremo en los márgenes del molde TMA en los lugares deseados indicados por el diagrama de orientación del tejido. Según sea necesario, mantenga el punto (s) en posición vertical con las pinzas hasta que la parafina has solidificó suficiente como para que el punto (s) no se caiga (1-2 min). </li><li> Montar los núcleos de TMA de acuerdo a las instrucciones del fabricante y con respecto a la ubicación de la mancha (s) en los márgenes de la matriz (Figura 2D), y seguir los protocolos de seccionamiento y tinción estándar. NOTA: Por favor, consulte el paso 2.6 para ver los métodos de seccionamiento y tinción utilizados en este protocolo. </li></ol>

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Los autores no tienen nada que revelar.

Preparación exitosa y la utilización de los lugares requiere una cuidadosa adhesión a unos pasos técnicos. Fusión de la agarosa hidroxietil debe hacerse lentamente y al fuego lento. Melting rápidamente a fuego alto puede dar lugar a alguna ruptura de la agarosa por menos de unos resultados óptimos. Al cortar los tapones en colorantes cargados en trozos para el procesamiento, garantizar que el espesor de cada pieza es mayor que 4,5 mm y no excede de 7 mm. Los extremos redondeados se eliminan como residuos, ya que ...

La capacidad de incrustar muestras de tejido de múltiples individuos en un solo bloque de parafina permite una fácil comparación lado a lado entre los tratamientos y los individuos, elimina la variabilidad entre las diapositivas, y reduce el costo y la carga de trabajo de seccionamiento y tinción de muestras. Estos bloques de múltiples tejidos se producen típicamente ya sea como microarrays de tejidos (TMA) o bloques de parafina que contienen tejido de varias personas en un diseño no-matriz. Mantenimiento de la identidad de la muestra es crítica para el éxito de cualquier análisis multi-tejido. Los investigadores han estado usando TMA desde su desarrollo para mejorar la eficiencia de análisis, reducir la variación entre las diapositivas, conservar los recursos valiosos del tejido, y reducir el tiempo y el costo de los experimentos 1. La orientación correcta de las TMA se puede lograr usando una variedad de métodos, incluyendo los espacios en blanco, filas o columnas entre núcleos de tejido 2-4, disposición asimétrica de los grupos principales 3, 5 (por ejemplo, control vs tratamiento), núcleos &quot;baliza&quot; 6, y núcleos de orientación designados situados fuera de la matriz TMA 3. Aunque estos métodos funcionan bien para TMA, la mayoría consumen valioso espacio central TMA y TMA con huecos y espacios como identificadores pueden llegar a ser confuso como núcleos de tejido se agotan con el tiempo. Además, estos métodos no son apropiados para su uso en bloques multi-tejido sin un formato de matriz porque se basan en anomalías en el patrón fuertemente ordenada de núcleos de microarrays uniformes como identificadores. La mayoría de los bloques no son de arrays de múltiples tejidos deben adaptarse a los tejidos no uniformes y, por definición, no mostrar la cuadrícula matriz estructurado que hace que estas aberraciones se destacan como puntos de referencia. Aunque hay muchas ventajas de utilizar una TMA, una de las desventajas más grandes es el pequeño tamaño de los núcleos que no siempre es representativa de tejido en gran medida heterogénea 1. Bloques multi-tejido no-dispuestas proporcionan muchos de tse beneficia de un TMA, pero contiene muestras de tejido más grandes u órganos enteros a partir de estudios con animales. Microarrays de tejidos utilizando núcleos individuales tienen diferentes concordancia con las secciones de tejidos enteros basados ​​en la proteína de interés y muchos requieren múltiples núcleos para una mayor concordancia 7-11. Debido a la complejidad y heterogeneidad de algunos fenotipos de biomarcadores, TMA utilizando incluso un gran número de núcleos (&gt; 10) todavía puede ser insuficiente y puede requerir métodos distintos de microarrays para el análisis de 8. Además, la construcción TMA es mucho tiempo, técnicamente exigente, y requiere que el costo inicial y la inversión en o acceso a una arrayer tejido. Bloques de múltiples tejidos no son de arrays se pueden hacer en cualquier laboratorio básico con mucho menos tiempo y esfuerzo y es una alternativa válida para los estudios que requieren más tejido que permiten matrices o como un medio para reducir los costos y simplificar el análisis. Bloques no son de arrays de múltiples tejidos de manera similar requieren un fiable oientation marcador para el seguimiento de identificación de la muestra, sin embargo, el desarrollo de estos marcadores ha sido limitado. Gran parte de la literatura que describe la orientación tejido se centra en la orientación fisiológica correcta para incrustar piezas de tejido individuales, tales como el tejido con el tatuaje de tinta 12, los tejidos en agar-gelatina pre-incrustación antes del procesamiento 13, y marcado ciertos tejidos con muescas 14 o suturas 15 . Aunque funcional, estos métodos no son ideales como marcadores en bloques multi-tejido debido a sus limitaciones. Una sutura se seccionó a través rápidamente y puede no ser visible en todas las secciones. Técnicas que utilizan agar-gelatina pueden mantener el tejido en la orientación correcta durante el procesamiento y la incrustación de Pre-incrustación, pero no proporciona una señal visual para diferenciar entre múltiples muestras en el bloque de parafina y se desliza. Las muescas o colorante en el tejido pueden complicar el análisis u ocluir importantes detalles morfológicos. Alternativamente, la identidad de tejidoen un bloque no vistió de múltiples tejidos se puede mantener a través de la incorporación de piezas de tejido en una disposición asimétrica, pero esto requiere de 3 o más piezas de tejido y puede no permitir la disposición óptima de los tejidos para su análisis. La Orientación Tag Espécimen (spot) se ha desarrollado como un método sencillo y de bajo costo para identificar claramente los tejidos en bloques de varios tejidos y ofrece muchas ventajas sobre los métodos de orientación existentes. El lugar es un pequeño colorido, núcleo, compuesto de hidroxietil gel de agarosa y procesamiento de tejidos de tinte marcado, y se infiltró con parafina (Figura 2C). El núcleo Punto está incrustado en el extremo próximo a un único tejido en un bloque de parafina de múltiples tejidos y aparece como un punto de colores brillantes en el bloque y en cada sección (Figura 1 A - D), lo que indica claramente la orientación correcta del bloque y secciones para la identificación de tejido fácil.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>HistogelTM Specimen Processing Gel</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>HG-4000-012</td>
			<td><a href="http://www.thermoscientific.com/en/product/richard-allan-scientific-histogel-specimen-processing-gel.html">http://www.thermoscientific.com/en/product/richard-allan-scientific-histogel-specimen-processing-gel.html&#160;</a></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue Marking Dye</td>
			<td>Triangle Biomedical Sciences, Inc.</td>
			<td>TMD-5</td>
			<td>Any tissue marking dye would most likely be sufficient.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Arraymold Kit A 2 mm (60 core)</td>
			<td>Arraymold</td>
			<td>20015A</td>
			<td>Any manual tissue arrayer would work similarly.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

spot the correct tissue every time in multi-tissue blocks

Los bloques de parafina Multi-tejido proporcionan análisis de alto rendimiento con una mayor eficiencia, la uniformidad experimental, y reducción del tiempo y coste. Microarrays de tejidos constituyen la mayoría de los bloques de parafina de varios tejidos, pero cada vez más, los investigadores están utilizando bloques no son de arrays que contienen los tejidos más grandes de varios individuos que pueden proporcionar muchas de las ventajas de microarrays de tejidos sin una inversión sustancial en la planificación y el equipo. Un componente crítico de cualquier análisis de múltiples tejidos es el método de orientación utilizado para identificar cada tejido. Aunque existen métodos para mantener la orientación adecuada y la identificación de los tejidos en bloques de varios tejidos, la mayoría no son muy adecuados a los bloques no dispuestos, puede consumir el espacio valioso dentro de una matriz y / o son difíciles de producir en el laboratorio de histología normal. La Orientación Tag Espécimen (spot) es una herramienta simple, de bajo costo que la orientación es claramente visible en los bloques de parafina y todas las secciones de tejido FOr identificación de la muestra de confianza en diseños dispuestos y no dispuestos. El SPOT ofrece ventajas sobre los métodos de orientación existentes para bloques no dispuestos, ya que no requiere ninguna modificación directa al tejido y permite flexibilidad en la disposición de piezas de tejido.

El spot aparece como una ronda, punto de colores brillantes en el bloque de parafina (Figura 1A y 2D), en todas las secciones de parafina, y permanece en el portaobjetos de vidrio a través del procedimiento de tinción H &amp; E o IHC (Figuras 1B - 1D y 2D). Este obvias ayudas señal visual tanto la histotechnician e investigador en la identificación de cada pieza de tejido individuo y simplifica la comunicación como el histotechnici...

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SpOT the Correct Tissue Every Time in Multi-tissue Blocks

El propósito de la Orientación Tag Espécimen (spot) es funcionar como una herramienta de orientación para ayudar en la identificación de tejidos individuales en bloques de parafina de múltiples tejidos. Estos protocolos demuestran cómo se construye fácilmente de materiales histológicos comunes de bajo costo y sirve como marcador visual confiable en bloques de parafina y secciones.

Spot de Tejidos correcta cada vez que en los bloques de múltiples tejidos

Multi-tissue paraffin blocks provide high throughput analysis with increased efficiency, experimental uniformity, and reduced time and cost. Tissue ...

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11.6K vistas.  Frederick National Laboratory for Cancer Research.  El propósito de la Orientación Tag Espécimen (spot) es funcionar como una herramienta de orientación para ayudar en la identificación de tejidos individuales en bloques de parafina de múltiples tejidos. Estos protocolos demuestran cómo se construye fácilmente de materiales histológicos comunes de bajo costo y sirve como marcador visual confiable en bloques de parafina y secciones. 