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* Ces auteurs ont contribué à parts égales
Nous fournissons une vue d’ensemble complète et affinons les protocoles existants pour la formation d’organoïdes du carcinome hépatocellulaire (CHC), englobant toutes les étapes de la culture des organoïdes. Ce système sert de modèle précieux pour l’identification de cibles thérapeutiques potentielles et l’évaluation de l’efficacité des candidats-médicaments.
Le carcinome hépatocellulaire (CHC) est une tumeur très répandue et mortelle dans le monde entier et sa découverte tardive et l’absence d’agents thérapeutiques spécifiques efficaces nécessitent des recherches supplémentaires sur sa pathogenèse et son traitement. Les organoïdes, un nouveau modèle qui ressemble beaucoup au tissu tumoral natif et qui peut être cultivé in vitro, ont suscité un intérêt considérable ces dernières années, avec de nombreux rapports sur le développement de modèles organoïdes pour le cancer du foie. Dans cette étude, nous avons réussi à optimiser la procédure et à établir un protocole de culture qui permet la formation d’organoïdes de CHC de plus grande taille avec des conditions de passage et de culture stables. Nous avons décrit de manière exhaustive chaque étape de la procédure, couvrant l’ensemble du processus de dissociation des tissus CHC, de placage d’organoïdes, de culture, de passage, de cryoconservation et de réanimation, et fourni des précautions détaillées dans cet article. Ces organoïdes présentent une similitude génétique avec les tissus CHC d’origine et peuvent être utilisés pour diverses applications, y compris l’identification de cibles thérapeutiques potentielles pour les tumeurs et le développement ultérieur de médicaments.
Le carcinome hépatocellulaire (CHC), une tumeur1 répandue et très diversifiée, a suscité une attention considérable au sein de la communauté médicale. La présence d’une plasticité de lignée et d’une hétérogénéité substantielle dans le CHC suggère que les cellules tumorales provenant de différents patients et même de lésions distinctes chez le même patient peuvent présenter des traits moléculaires et phénotypiques dissemblables, présentant ainsi des obstacles redoutables à l’avancement d’approches thérapeutiques innovantes 2,3,4,5
Des tissus biopsiés chez l’homme ont été prélevés sur le patient concerné à l’hôpital et à l’institut de cancérologie affiliés de l’Université médicale de Guangzhou, et le consentement éclairé des patients a été obtenu. Reportez-vous au tableau des matériaux pour plus de détails sur tous les matériaux, réactifs et instruments utilisés dans ce protocole.
1. Établissement d’organoïdes de CHC dérivés de patients à partir d’échantillons chirurgicaux
REMARQUE : La mise en place d’organoïdes CHC comprend différentes étapes, à savoir la dissociation des tissus, le placage des organoïdes, ....
Lors de la mise en œuvre de la procédure susmentionnée, l’émergence de sphéroïdes organoïdes CHC est généralement observable en l’espace de 3 jours (Figure 1). Les figures 1A et B montrent l’organoïde établi du CHC, qui développe rapidement des sphéroïdes compacts caractérisés par des bords arrondis et un cytosol perméable le premier jour de l’établissement. Au cours de la croissance des organoïdes CHC, l’utilisation.......
L’un des avantages notables des modèles organoïdes dérivés des patients réside dans leur capacité à reproduire fidèlement les caractéristiques biologiques des tumeurs, englobant la structure tissulaire et le paysage génomique. Ces modèles font preuve d’un niveau de précision remarquable et reflètent efficacement l’hétérogénéité et la progression des tumeurs, même sur de longues périodes de culture 6,8,9.......
Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.
Cette recherche a été soutenue par la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (82122048 ; 82003773 ; 82203380) et la Fondation de recherche fondamentale et appliquée du Guangdong (2023A1515011416).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
[Leu15]-gastrin I human | Merck | G9145 | |
1.5 mL Microtubes | Merck | AXYMCT150LC | |
A8301 (TGFβ inhibitor) | Tocris Bioscience | 2939 | |
B27 Supplement (503), minus vitamin A | Thermo Fisher Scientific | 12587010 | |
B-27 Supplement (503), serum-free | Thermo Fisher Scientific | 17504044 | |
BMP7 | Peprotech | 120-03P | |
Cell strainer size 100 μm | Merck | CLS352360 | |
CHIR99021 | Merck | SML1046 | |
Collagenase D | Merck | 11088858001 | |
Corning Costar Ultra-Low | Merck | CLS3473 | |
Costar 24-well Clear Flat Bottom Ultra-Low Attachment Multiple Well Plates, Individually Wrapped, Sterile | Corning | 3473 | |
Costar 6-well Clear Flat Bottom Ultra-Low Attachment Multiple Well Plates, Individually Wrapped, Sterile | Corning | 3471 | |
Cultrex Organoid Harvesting Solution | R&D SYSTEMS | 3700-100-01 | Organoid harvesting solution |
Cultrex Reduced Growth Factor BME, Type 2 PathClear (BME) | Merck | 3533-005-02 | |
DAPT | Merck | D5942 | |
Dexamethasone | Merck | D4902 | |
DMSO | Merck | C6164 | |
DNaseI | Merck | DN25 | |
Dulbecco's Modified Eagle Medium/Ham's F-12 | Thermo Fisher Scientific | 12634028 | Advanced DMEM/F-12 |
Earle’s balanced salt solution (EBSS) | Thermo Fisher Scientific | 24010043 | |
Forceps | N/A | N/A | |
Forskolin | Tocris Bioscience | 1099 | |
GlutaMAX supplement | Thermo Fisher Scientific | 35050061 | |
HEPES, 1 M | Thermo Fisher Scientific | 15630080 | |
Leica DM6 B Fluorescence Motorized Microscope | Leica | N/A | |
N2 supplement (1003) | Thermo Fisher Scientific | 17502048 | |
N-acetylcysteine | Merck | A0737-5MG | |
Nicotinamide | Merck | N0636 | |
Nunc 15 mL Conical Sterile Polypropylene Centrifuge Tubes | Thermo Fisher Scientific | 339651 | |
Nunc 50 mL Conical Sterile Polypropylene Centrifuge Tubes | Thermo Fisher Scientific | 339653 | |
Penicillin/streptomycin (10,000 U/mL) | Thermo Fisher Scientific | 15140122 | |
Recombinant human EGF | Peprotech | AF-100-15 | |
Recombinant human FGF10 | Peprotech | 100-26 | |
Recombinant human FGF19 | Peprotech | 100-32 | |
Recombinant human HGF | Peprotech | 100-39 | |
Recombinant human Noggin | Peprotech | 120-10C | |
Rho kinase inhibitor Y-27632 dihydrochloride | Merck | Y0503 | |
R-spodin1-conditioned medium | (Broutier et al.) | N/A | Secretion of cell lines |
Surgical scissors | N/A | N/A | |
Surgical specimen of tumor removed from HCC patients | Affiliated Cancer Hospital and Institute of Guangzhou Medical University | N/A | |
TNFα | Peprotech | 315-01A | |
TrypLE Express Enzyme (1x), no phenol red | Thermo Fisher Scientific | 12604013 | Trypsin substitute |
Wnt-3a-conditioned medium | (Broutier et al.) | N/A | Secretion of cell lines |
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