La cible principale de l’intervention chirurgicale est de mesurer les effets métaboliques et la résistance à l’insuline de la gastrectomie de manchon dans un modèle de souris plus évaluable. Ce protocole vise à produire un modèle animal pour la recherche des mécanismes qui soulignent les résultats observés après une chirurgie bariatrique chez l’homme, qui peut fournir un aperçu de la pathogénie de l’obésité et le traitement du diabète de type 2. Pour la gastrectomie de manchon et l’opération simulée, après avoir confirmé la profondeur appropriée de l’anesthésie par stimulation d’oeil, appliquez le gel d’oeil de Carbomer 0.2%sur les yeux de la souris pour empêcher les yeux secs.
La souris est placée et fixée sur la table chirurgicale. Retirer et nettoyer le reste des cheveux avec une crème depilatory. Désinfecter l’abdomen de la souris avec des solutions povidone-iode en alternance avec de l’alcool pour trois applications.
Effectuez la procédure SG à l’aide d’un microscope ou d’une loupe grossissant au besoin pour prévenir tout saignement imprévisible et tout choc hypovolémique. Faire une incision de 1 à 1,5 centimètre de longueur à mi-ligne à l’abdomen supérieur. Utilisez deux micro-forceps courbés et dentelés lisses pour déplacer doucement l’estomac et l’extériuer complètement.
Déplacez l’intestin sur la peau nue sur le côté et couvrez-le d’une gaze hydratée saline chaude pour prévenir la déshydratation. Divisez soigneusement le ligament gastrosplenique reliant l’estomac gauche à la rate à l’aide d’une sonde à bout de coton et d’une électrocauterie au besoin, dissectant ainsi le fundus gastrique de la rate environnante et d’autres organes internes. Étirez le fundus et le pylorus de l’estomac doucement et latéralement avec des forceps, identifiez la ligne médiane de l’estomac et appliquez soigneusement deux clips chirurgicaux utilisant l’applier ligaclip au segment 15% médial de l’estomac de la jonction gastroesophagienne inférieurement et pylorus supérieur.
Serrez et isolez environ 75-80% de l’estomac, créant ainsi la manche latérale entière de l’estomac. Réséquez l’estomac latéral isolé à l’aide d’un microscissors. Utilisez des cotons-tiges pour enlever les aliments résiduels de l’estomac, puis nettoyez le bord coupé de l’estomac avec la solution aqueuse povidone-iode.
Oversew la ligne de clip avec une suture nonabsorbable de monofilament 5-0 pour s’assurer d’aucune fuite. Nouer les extrémités de la suture et de l’ancre aux clips à chaque extrémité. Remettre l’estomac et l’intestin à la bonne position dans la cavité abdominale et fermer l’abdomen avec une suture nonabsorbable en cours d’exécution 5-0 monofilament à la paroi abdominale.
Pour la procédure simulée de SG, exécutez une procédure semblable comme décrit précédemment avec une laparotomie de midline, extériez l’intestin et l’estomac utilisant la couverture chaude humide de gaze saline de 37 degrés Celsius pendant cinq minutes. Retournez l’estomac et l’intestin aux emplacements appropriés de ces organes internes. Administrer du kétoprofène de deux à cinq milligrammes par kilogramme et de la cefazolin 25 milligrammes par kilogramme sous-cutanée ou intraperitoneally après la chirurgie pour le contrôle de la douleur et la prévention des infections.
Arrêtez l’isoflurane et continuez avec un flux d’air de la pièce de trois à cinq litres par minute jusqu’à ce que la souris soit complètement éveillée. Continuez à regarder la souris pendant qu’elle retrouve la mobilité et commence à marcher autour de la cage. Placez la souris dans l’incubateur indépendant autour de 30 degrés Celsius en état de température pendant cinq jours, en vous assurant qu’il n’y a qu’une seule souris par cage.
Dans nos mains expérimentées, le taux réussi de SG était d’environ 90% après la période d’apprentissage. Le poids corporel des souris opérées par feinte et à haute teneur en graisses nourries par les souris a augmenté régulièrement. Mais la gastrectomie de manchon et le régime à haute teneur en graisses alimentés souris diminué en permanence.
La différence du niveau de cholestérol était significative entre le régime à haute teneur en graisses a alimenté des souris avec le gastrectomy faux et de douille. Ceci pourrait indiquer que l’amélioration oxydative de stress après la gastrectomie de manchon. La différence des niveaux d’hémoglobine A1C et d’IPGTT était également significative.
Entre le régime riche en graisses alimenté les souris avec gastrectomie feinte et manche et en indiquant la résistance à l’insuline et l’amélioration du contrôle du sucre après la gastrectomie manche. Ce modèle animal peut nous aider à étudier la pertinence clinique du diabète et de l’obésité dans l’utilisation d’une brève intervention chirurgicale avec gastrectomie à manches. Cette procédure peut raccourcir le temps d’opération et améliorer le taux de survie chirurgicale.
Le principal avantage de cette étude est d’imiter les résultats cliniques de la chirurgie bariatrique chez les patients humains en utilisant un modèle simple de souris chirurgicale.
