Ce protocole est donc la première description du CDS chez la souris, nous permettant d’imiter la chirurgie réalisée en pratique clinique et de déchiffrer les mécanismes métaboliques cellulaires et moléculaires de manière plus prévisible. Cette procédure nécessite moins d’anastomose que le pontage gastrique, ainsi l’opération est raccourcie et le taux de survie est amélioré avec des avantages métaboliques similaires au pontage gastrique. Commencez par administrer de la buprénorphine, de l’amoxicilline, du métoclopromide et du fer par voie sous-cutanée.
À partir du processus xiphoïde, rasez les deux premiers tiers de l’abdomen de la souris à l’aide d’un rasoir électrique et désinfectez l’abdomen de la souris à l’aide d’une solution de povidone iodée deux fois. Ensuite, placez la souris couchée sur le dos sur un coussin chauffant dédié recouvert d’un sous-coussin propre. Vérifiez la profondeur de l’anesthésie à l’aide du test de pincement des orteils et couvrez la souris d’une pellicule de plastique stérilisée.
Ensuite, hyper étendre l’abdomen de la souris en fixant le noyau inférieur et en plaçant une seringue d’un millilitre ou équivalent derrière le dos de la souris. Découpez une ouverture de la taille d’une fenêtre comme futur site d’incision dans une compresse stérile et utilisez-la comme champ opératoire pour couvrir la souris. Effectuer une laparotomie médiane avec des ciseaux en ouvrant la peau abdominale du processus xiphoïde au milieu de l’abdomen.
Ensuite, utilisez des ciseaux pour ouvrir la paroi abdominale le long de l’alba linéaire entre les muscles abdominaux. À l’aide d’un coton-tige humidifié, mobiliser doucement le duodénum de la cavité abdominale pour voir ses côtés antérieur et postérieur. Puis localisé le canal biliaire principal, qui est immédiatement visible sous le microscope binoculaire sur la face postérieure du petit épiploon et du duodénum.
Au microscope binoculaire, visualisez une zone approximativement à partir du canal biliaire principal entre les artères du duodénum et pénétrez cette zone à l’aide de micro-pinces incurvées d’un côté à l’autre du duodénum. Ensuite, effectuez une négation duodénale entre les artères à l’aide d’une suture non résorbable 6.0. Utilisez un coton-tige humidifié et une pince non traumatique pour mobiliser l’estomac de la cavité abdominale et le séparer des organes environnants à l’aide de micro-ciseaux.
Ensuite, séparez le grand épiploon, coupez les artères gastriques courtes entre l’estomac et la rate et le lipome reliant l’estomac à la partie inférieure de l’œsophage. À l’aide de micro-ciseaux, effectuez une gastrotomie de cinq millimètres en ouvrant le fond d’œil et en retirant la nourriture résiduelle à l’aide d’un coton-tige. Appliquez des clips chirurgicaux le long de la plus grande courbure de l’estomac pour exclure environ 80% de l’estomac et retirez l’estomac exclu en le coupant avec des micro-ciseaux.
Maintenant, ancrez les clips chirurgicaux à une certaine imperméabilité en effectuant une suture en cours d’exécution du début à la fin de la résection de l’estomac. Sous le microscope binoculaire, visualisé la dernière boucle iléale située juste avant le caecum. Mobiliser doucement l’intestin grêle à l’extérieur de la cavité abdominale à partir de la dernière anse iléale et disposer de l’intestin grêle de sorte que la dernière anse iléale soit située du côté gauche.
À l’aide d’un cordon de suture de taille antérieure, mesurez 10 centimètres de la dernière boucle iléale. Pour s’assurer que le futur membre biliaire arrive du côté de l’anastomose à partir de son côté gauche, faites une grande boucle de l’intestin grêle autour du côté de la future anastomose. À ce stade, effectuez une entérotomie de quatre millimètres en ouvrant l’intestin grêle à l’aide de micro-ciseaux.
Effectuer une entérotomie de quatre millimètres sur le duodénum immédiatement après le pylore entre l’estomac et la ligature effectuée plus tôt. Placez ensuite une compresse de collagène hémostatique résorbable pour favoriser l’homéostasie. À l’aide d’une suture 8.0 non résorbable, effectuer une anastomose iléalanale duodénale latérale du côté postérieur vers le côté antérieur et afficher l’intestin grêle dans la cavité abdominale comme décrit dans le manuscrit.
Réhydratez la souris avec 500 microlitres de solution saline à 37 degrés Celsius en la perfusant dans la cavité abdominale à l’aide d’une seringue d’un millilitre. Utilisez maintenant une seule suture de course non résorbable 6.0 pour fermer la couche névrotique musculoaponévrotique et fermez la peau abdominale à l’aide de sutures séparées non résorbables 6.0. Après quatre semaines d’entraînement intensif, une diminution progressive du temps opératoire est observée, atteignant environ 60 minutes.
La survie postopératoire de cinq jours s’est également améliorée avec le temps, atteignant 77% au cours de la pratique régulière. À partir du quatrième jour postopératoire, les souris SADI-S ont connu une perte de poids significative par rapport aux souris Sham. Une augmentation significative de l’apport alimentaire quotidien a été observée chez les souris de l’ISAD-S.
Cependant, après la supplémentation en fer, aucune différence significative n’a été observée dans la concentration d’hémoglobine entre les groupes Simulé et ISAD-S. Lors de l’anastomose, il est crucial de disposer l’intestin de manière à ce que la bile et la nourriture ne s’opposent pas pour éviter un syndrome de l’anse afférente.
