JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Protocol
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

מאמר זה מתאר השתלת רקמות טכניקה שנועדה לבדוק את איתות ותכונות של דפוסים האאקטודרם משטח cephalic במהלך הפיתוח craniofacial.

Abstract

הנגישות של עוברי העופות סייע embryologists ניסיוני להבין את גורלם של תאים במהלך ההתפתחות ואת תפקידו של אינטראקציות רקמות המווסתים דפוסים המורפוגנזה של בעלי חוליות (לדוגמה: 1, 2, 3, 4). כאן, אנו ממחישים שיטה זו מנצלת את הנגישות כדי לבדוק את איתות ותכונות דפוסים של רקמות ectodermal במהלך התפתחות הפנים. בניסויים אלו, אנו יוצרים שליו, חומוס 5 או עכבר חומוס 6 מפלצות ידי השתלת האאקטודרם משטח cephalic המכסה את הלסת העליונה של שליו או בעכבר על אזור או באותו אזור או מחוץ לרחם של עוברים חומוס. השימוש שליו כמו רקמות התורם להשתלה לתוך אפרוחים פותחה על מנת לנצל את הסמן nucleolar נוכח שליו אך לא תאים חומוס, ובכך מאפשר לחוקרים להבחין מארח ורקמות תורם 7. בדומה לכך, מרכיב חוזרות נמצא גנום העכבר, והוא הביע בכל מקום בגוף, אשר מאפשר לנו להבחין המארח רקמות התורם אפרוח ועכבר מפלצות 8. השימוש האאקטודרם עכבר כמו רקמות התורם יהיה מאוד להרחיב את ההבנה שלנו של האינטראקציות הללו רקמות, כי זה יאפשר לנו לבחון את המאפיינים של איתות האאקטודרם שמקורם בעוברים מוטנטיים שונים.

Protocol

1. הכנת רקמות התורם

  1. הכן התקשורת לתרבות, לחדד סיכות זכוכית, לחדד מחטים טונגסטן.
  2. איסוף העובר מן המעטפת, להתרחץ קר כקרח PBS.
    1. בעזרת מזרק 10 מ"ל ו - 18 מחט מד להסיר 1.0 מ"ל של אלבומין מהקצה המחודד של מעטפת הביצית.
    2. עושים חור קטן בחלק העליון של הקליפה באמצעות נקודת מספריים, ולאחר מכן לחתוך פתח עגול לחשוף את העובר
  3. הסר את הראש אל המקום DMEM (נסיוב בחינם, בטמפרטורת החדר)
  4. לנתח תהליכים Frontonasal מעובר (או לאתר תורם אחרים, כגון תהליך לסתי או mandibular)
  5. תקציר ב 2.4U / mL dispase ב PBS על הקרח עבור 20mins
  6. כיסוי רקמות עם DMEM עם BSA 1% כדי לעצור העיכול
  7. שימוש במחט טונגסטן חידד את האאקטודרם mesenchyme נפרד, ו neuroectoderm
  8. חנות רקמת שתל ב BSA DMEM 1% על הקרח עד מארח מוכן להשתלה

2. הכנת מארח

  1. לחשוף את העובר
    1. בעזרת מזרק 10 מ"ל ו - 18 מחט מד להסיר 1.0 מ"ל של אלבומין מהקצה המחודד של מעטפת הביצית.
    2. עושים חור קטן בחלק העליון של הקליפה באמצעות נקודת מספריים. מניחים נייר דבק על החור, ולאחר מכן לחתוך פתח עגול לחשוף את העובר.
  2. שימוש 2 זוגות מלקחיים, לתפוס את amnion בעדינות דמעה לעשות חור.
  3. סובב את ראשו על ידי הנחת זוג מלקחיים על עין ימין ועל הפעלת לחץ. בעוד מחזיק את הראש יציב, להשתמש במחט טונגסטן להסיר את האאקטודרם לארח כדי להתאים את השתל.
  4. מעבירים את השתל לארח בעזרת פיפטה מזכוכית.
  5. מיקום השתל להחליף את האאקטודרם הוסרו. הכנס סיכה זכוכית בכל פינה של הרקמה מורכבים להצמיד את השתל במקום. כדי להפוך את סיכות זכוכית, למשוך צינור microcapillary לנקודה קנס על אש אלכוהול.
  6. מקום קלטת בחוזקה מעל החור ולהחזיר העובר אל האינקובטור לאורך זמן מתאים לניתוח.
  7. ראה גם: 9

3. נציג תוצאות:

כדי להעריך מפלצות, עוברים יש לאסוף ולעבד לניתוח ההתפלגות של המארח רקמות התורם. עבור זיהוי של תאים שליו, אימונוהיסטוכימיה באמצעות נוגדן QcPN (המתואר: 3) הוא מועסק, וכן עבור זיהוי של תאים בעכבר, ב הכלאה באתרו על סעיפים פרפין משמש 6. תאים התורם צריך להיות מוגבל האפיתל, ולא צריך להיות שום עדות של רקמות התורם mesenchymal (איור 1). נוכחות של תאים מתורם בודד mesenchyme מצביע על נוכחות של תאים עצביים לפסגה זיהום אשר לבלבל כל פרשנות מורפולוגיים בשל השפעתם של תאים אלה על היבטים רבים של פיתוח פנים (למשל, 10). לאחר משוכנע כי הטכניקה שתל ללא זיהום mesenchyme, מדדי התוצאה מורפולוגי נוסף או מולקולרית ניתן להשתמש כדי להעריך את מפלצות. לענייננו, זיהינו את נוכחותו של סחוסים ועצמות מחוץ לרחם כי תאמו כפילויות של הלסת העליונה שהיו המושרה על ידי רקמות להשתלה (איור 2), ואת השינויים המולקולריים ברקמות mesenchymal בתגובה האאקטודרם מורכבים (איור 3) 5,6.

figure-protocol-3881
באיור 1. הערכת chimerism (א) נגד QcPN מכתים משמש כדי לזהות תאים שלווים שלווים, חומוס מפלצות. אין ראיות של מכתים ב mesenchyme. (ב) הכלאה באתרו משמש כדי לזהות את הביטוי של תעתיקים B2 סינוס ב עכבר חומוס מפלצות. הביטוי מוגבל האאקטודרם המרכיבים את השתל.

figure-protocol-4302
איור 2. מכתים Trichrome מראה שכפול של השלד הלסת העליונה הכימרה (א) שליו, חומוס, ו (ב) עכבר חומוס מפלצות.

figure-protocol-4561
איור 3. האאקטודרם regultes ביטוי גנים mesenchyme. (א) הביטוי רגיל Bmp7 ב mesenchyme של עובר אפרוח (רדיואקטיביים הכלאה באתרו עם אדום אות חיובי פסאודו בצבע ב Adobe Photoshop). (ב) הוא ביטוי Bmp7 המושרה mesenchyme הסמוך השתל (חץ) בעוברים chimeric.

Discussion

באמצעות שיטה זו השתלת אפשרה לנו לקבוע כי האאקטודרם מכיל מידע איתות המווסת את הקוטביות dorsoventral והסיומת proximodistal של הלסת העליונה. הדמיון של תוצאות בעת שימוש שליו או האאקטודרם העכבר השימור של אותות מולקולריים ברקמה זו בקרב מינים רבים 6,11 מציין כי מדובר במרכז איתות ש?...

Disclosures

אין ניגודי אינטרסים הכריז.

Acknowledgements

עבודה זו מומנה על ידי R01-R01 DE018234 ו-DE019638.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
1x PBSTektronix, Inc.TEKZR114
DMEMUniversity of California - San FranciscoCCFDA003
BSASigma-AldrichA7906
DispaseGIBCO, by Life Technologies17105-041
35x10 mm Petri dishFalcon BD1008
No. 5 Dumont forcepsFine Science Tools11252-20
ScissorsFine Science Tools14058-11
Spring ScissorsFine Science Tools15010-11
Needle holderFine Science Tools26016-12
Tungsten NeedleFine Science Tools26000
Microcapillary tube Drummond Scientific3-000-225-G
Pasteur PipetsFisher Scientific13-678-6B
Spring scissorsFine Science Tools15010-11
Blade holderFine Science Tools10052-11
Razor bladeFine Science Tools10050-00

References

  1. Noden, D. M. The Role of the Neural Crest in Patterning of Avian Cranial Skeletal, Connective, and Muscle Tissues. Developmental Biology. 96, 144-144 (1983).
  2. Bronner-Fraser, M., Stern, C. Effects of Mesodermal Tissues on Avian Neural Crest Cell Migration. Developmental Biology. 143, 213-213 (1991).
  3. Schneider, R. A. Neural crest can form cartilages normally derived from mesoderm during development of the avian head skeleton. Developmental Biology. 208, 441-441 (1999).
  4. Couly, G. Interactions between Hox-negative cephalic neural crest cells and the foregut endoderm in patterning the facial skeleton in the vertebrate head. Development. 129, 1061-1061 (2002).
  5. Evans, D. J., Noden, D. M. Spatial relations between avian craniofacial neural crest and paraxial mesoderm cells. Dev Dyn. , (2006).
  6. Hu, D., Marcucio, R., Helms, J. A. A zone of frontonasal ectoderm regulates patterning and growth in the face. Development. 130, 1749-1749 (2003).
  7. Hu, D., Marcucio, R. S. Unique organization of the frontonasal ectodermal zone in birds and mammals. Dev Biol. 325, 200-200 (2009).
  8. Le Lièvre, C. S., Le Douarin, N. M. Mesenchymal derivatives of the neural crest: analysis of chimaeric quail and chick embryos. Journal of Embryology and Experimental Morphology. 34, 125-125 (1975).
  9. Bollag, R. J. Use of a repetitive mouse B2 element to identify transplanted mouse cells in mouse-chick chimeras. Exp Cell Res. 248, 75-75 (1999).
  10. Korn, M. J., Cramer, K. S. Windowing chicken eggs for developmental studies. J Vis Exp. , (2007).
  11. Eames, B. F., Schneider, R. A. Quail-duck chimeras reveal spatiotemporal plasticity in molecular and histogenic programs of cranial feather development. Development. 132, 1499-1499 (2005).
  12. Odent, S. Expression of the Sonic hedgehog (SHH ) gene during early human development and phenotypic expression of new mutations causing holoprosencephaly. Hum Mol Genet. 8, 1683-1683 (1999).
  13. Szabo-Rogers, H. L. Novel skeletogenic patterning roles for the olfactory pit. Development. 136, 219-219 (2009).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

49

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved