Method Article
פרוטוקול זה מדגים את בדיקת תגובת שרשרת פולימראז (RT-PCR) בזמן אמת של pan-lyssavirus LN34 מאיסוף רקמות ועד לפירוש התוצאה, כולל עדכונים לרצפי פריימר ותכשירים לשיפור ביצועי הבדיקה עבור כמה נגיפי ליסה ולגומורפים שאינם כלבת. אנו גם מדגימים את מערך הבדיקה עבור פורמט LN34 מרובב (LN34M) בעל באר אחת.
כלבת היא מחלה זואונוטית קטלנית הנגרמת על ידי כלבת ליסה וירוס (RABV) ונגיפי RNA שליליים קשורים מהסוג Lyssavirus (משפחת Rhabdoviridae). בדיקת LN34 מכוונת לאזור המוביל השמור ביותר ולגן הנוקלאופרוטאין של גנום נגיף הליסה ומשתמשת בפריימרים מנוונים ובבדיקה TaqMan המכילה נוקלאוטידים נעולים כדי לזהות RNA על פני הסוג המגוון של Lyssavirus . יש לקבוע ממצא שלילי לכלבת רק אם בוחנים חתך מלא של גזע המוח ושלוש אונות של המוח הקטן; עם זאת, זיהוי RNA של נגיף הליסה בכל רקמה הוא אבחון של זיהום בכלבת. הרקמה נאספת והומוגנית במגיב TRIzol, שגם מנטרל את הנגיף. מיצוי RNA מתבצע באמצעות ערכת מיצוי מסחרית מבוססת עמוד ספין. תערובות מאסטר מוכנות בחלל נקי ומוכנסות לצלחת של 96 בארות לפני הוספת RNA לדוגמה. במסגרות קליניות, כל דגימה נבדקת על ידי RT-PCR בזמן אמת לנוכחות RNA של נגיף הליסה בשלוש עותקים ובודדים עבור מארח β--actin mRNA. בקרות חיוביות ושליליות כלולות בשלבי החילוץ וה-RT-PCR בזמן אמת של הפרוטוקול. ניתוח נתונים כולל התאמה ידנית של הספים כדי לתקנן ערכי Ct על פני ריצות מכשירים. תוצאות חיוביות נקבעות על ידי נוכחות של הגברה אופיינית בבדיקת הפאן-ליסה (Ct ≤ 35). תוצאות שליליות נקבעות על ידי היעדר הגברה אופיינית בבדיקת הפאן-ליסה וזיהוי mRNA של β-אקטין מארח (Ct ≤ 33). תצפית על ערכים מחוץ לטווחים אלה או כשל בבקרות הבדיקה עלולה לפסול את הריצה או לגרום לתוצאות לא חד משמעיות עבור דגימה. יש לעקוב מקרוב אחר הפרוטוקול כדי להבטיח רגישות וספציפיות גבוהה לבדיקה. שינויים פרוצדורליים יכולים להשפיע על ביצועי הבדיקה ולהוביל לתוצאות חיוביות כוזבות, שליליות כוזבות או בלתי ניתנות לפירוש.
פרוטוקול זה מתאר את ההליך לבדיקת אבחון כלבת באמצעות בדיקת LN34 pan-lyssavirus בזמן אמת תגובת שרשרת פולימראז (RT-PCR) מאיסוף הדגימות ועד לפירוש התוצאות. הנוהל יחולק לשלושה חלקים: איסוף דגימות מוח כרלוונטי לבדיקת LN34 (סעיף 1), מיצוי RNA ידני מבוסס עמודות באמצעות ערכת Direct-zol RNA Miniprep (Zymo Research R2051) (סעיף 2), ובדיקת RT-PCR בזמן אמת LN34 שהוגדרה באמצעות ערכת AgPath-ID One-Step RT-PCR (ThermoFisher Scientific AM1005) (סעיף 3). ניתן לבצע מיצוי RNA ו-RT-PCR באמצעות מוצרים אחרים, אך יש לאמת ערכות לפני השימוש כדי להבטיח ש-RNA של Lyssavirus מופק ומוגבר כראוי.
סעיף 1 מתאר את איסוף רקמות המוח המתאימות לשימוש בבדיקת RT-PCR בזמן אמת LN34. תיאור של נתיחת בעלי חיים, עריפת ראשים והסרת מוח אינם כלולים. דגימות עשויות להכיל גורמים זיהומיים. יש לעקוב אחר נהלי בטיחות ביולוגית המפורטים בבטיחות ביולוגית במעבדות מיקרוביולוגיות וביו-רפואיות מהדורה6 1 כדי להפחית את הסיכון. דגימות צריכות להיחשב זיהומיות עד להשלמת ההשבתה. יש לבצע השבתה ויראלית ואימות בדיקה בכל מעבדה בהתאם לסטנדרטים של אותו מוסד. מעבדות צריכות לעקוב אחר נהלי בטיחות ואיכות סטנדרטיים שנקבעו על ידי המוסד שלהן בעת יישום בדיקת אבחון חדשה.
בהתבסס על מה שידוע על התפשטות נגיף הכלבת במהלך הזיהום, גזע המוח והמוח הקטן הם הרקמות הטובות ביותר לאבחון כלבת, ורקמות אלו מומלצות לבדיקת כלבת על ידי ארגון הבריאות העולמי והארגון העולמי לבריאות בעלי חיים 2,3,4,5. מאחר שהתפשטות הנגיף עשויה להיות חד-צדדית (איור 1), במיוחד בחיות גדולות יותר, יש לבחון חתך שלם של גזע המוח ושלוש אונות של המוח הקטן כדי לשלול כלבת. עבור דגימות שאינן עומדות בקריטריונים מינימליים אלה, המעבדה עשויה לדחות את הדגימה כלא מספקת לבדיקה או לבחור בבדיקה למטרות מעקב או כלל. אם הרקמות הנדרשות לא מתקבלות, אך המעבדה בוחרת לבדוק את הדגימה, יש לפרש תוצאת בדיקה שלילית כלא חד משמעית עבור כלבת עבור אותו בעל חיים מכיוון שנוכחות RNA ויראלית ברקמות אחרות יכולה להתעכב, שפע נמוך, לסירוגין או לא קיים. יש צורך באיסוף הדגימות הנדרשות או בדיקות נוספות כדי לשלול כלבת במקרה זה. עם זאת, זיהוי RNA של נגיף הליסה בכל רקמה הוא אבחנה של זיהום כלבת 3,6. דוגמאות לדגימות שעשויות להיבדק ל-RNA של נגיף הכלבת לצורך שליטה או מעקב (אך לא לשלול) זיהום בכלבת הן קליפת המוח, ההיפוקמפוס, חוט השדרה, דגימות מושפלות, עור, רוק וקרנית. יש לבצע הערכה איכותית של מצבה של כל דגימה עם הגעתה למעבדה. קירור יכול לשמר דגימה למשך 72 שעות לפחות, אך אין להשתמש בו לטווח ארוך. מחזורי הקפאה-הפשרה חוזרים ונשנים עלולים להפחית את רגישות הבדיקה, ויש להימנע מיותר מחמישה מחזורי הקפאה-הפשרה. אם מצב הרקמה מונע זיהוי בטוח של מבני מוח, יש לזהות את הדגימה כלא מספקת. במקרה של דגימה לא מספקת, עדיין ניתן לבצע בדיקות כדי לשלול (אך לא לשלול) כלבת. תוצאות בדיקה חיוביות מדווחות ככאלה. יש לדווח על תוצאות שליליות או לא חד משמעיות על רקמה לא מספקת כלא חד משמעיות כדי למנוע פרשנות שגויה כאבחנה שלילית.
פרוטוקול זה פותח על סמך נהלים שפורסמו 7,8,9 וכולל פריימרים מעודכנים המכוונים לאזור מוביל הגנום של נגיף הליסה ורצף קידוד נוקלאופרוטאין. הגשושית מכוונת לרצף קצר ושמור מאוד ומשתמשת בנוקלאוטידים נעולים כדי לאפשר זיהוי רחב. הבדיקה מזהה RNA מנגיפי ליסה מגוונים בריכוזים משתנים8. פרוטוקול זה מדגים את נהלי המעבדה לביצוע בדיקת PCR בזמן אמת LN34, אך זיהוי מדויק ורגיש של RNA של נגיף הליסה תלוי באלמנטים אחרים שאינם מכוסים בהרחבה בפרוטוקול זה, כגון אחסון דגימות, שמירת רשומות, הכשרה/כשירות כוח אדם, מעקב אחר תוצאות, פרשנות תוצאות, אבטחת איכות, אמצעי בטיחות מעבדה ופתרון בעיות. בדיקות מבוססות PCR מועדות לזיהום צולב בשל רגישותן הגבוהה. ניתן למנוע זיהום צולב על ידי הקפדה על נוהלי מעבדה טובים, כגון החלפת כפפות לעתים קרובות, טיפול בדגימה אחת בכל פעם, חיטוי משטחי עבודה עם חומרי טיהור יעילים בין דגימות, ושמירה על צינורות סגורים ודגימות נפרדות מריאגנטים של PCR. ניתן להפריד בקלות ריאגנטים ודגימות PCR על ידי שימוש בזרימת עבודה חד צדדית והפרדת אזורי עבודה לפני הגברה ואחרי הגברה. לדוגמה, הכינו תערובות מאסטר של PCR במיקום נפרד פיזית מהמקום שבו מטפלים בדגימות. החלף כפפות לעתים קרובות כדי למנוע זיהום של ריאגנטים PCR עם דגימות, פסולת או RNA בקרה חיובית. יש להעביר את לוחית ה-PCR או הצינורות לאחר הוספת מאסטרמיקס למיקום שני בו ניתן להוסיף דגימה ו-RNA בקרה. חשוב לציין, אין לבצע מניפולציות על מוצרי PCR באזורים שבהם מכינים דגימות או תערובות מאסטר.
אין תחליף לתרגול מעשי וניסיון בעת ביצוע בדיקות אבחון. יש להכשיר את כל העובדים החדשים, ולהעריך את כשירותם של אנשי הבדיקה לפחות פעם בשנה בהתאם לדרישות מנהל המעבדה הרלוונטי. יש לציין, לחקור ולתקן מיד כל תצפית של תוצאות חריגות או כשל בבדיקה. יש לאמת כל אצווה חדשה של ריאגנטים באמצעות דגימות עם ערכי Ct ידועים (כגון בקרה חיובית או דגימה בארכיון). כל הציוד צריך לעבור תחזוקה שוטפת, כפי שהציע היצרן, ויש לאמת את ביצועי הבדיקה לאחר כל תחזוקה או תיקון. יש לעקוב אחר רמות הטמפרטורה בציוד הרלוונטי כדי להבטיח שמקררים ומקפיאים יישארו בקריטריונים שנקבעו לטווח טמפרטורות מקובל עבור ריאגנטים המשמשים בבדיקות אבחון.
שינויים פרוצדורליים יכולים להשפיע על ביצועי הבדיקה ועלולים להוביל לתוצאות חיוביות כוזבות, שליליות כוזבות או בלתי ניתנות לפרשנות. יש לעקוב מקרוב אחר ההמלצות כדי להבטיח רגישות וספציפיות גבוהה לבדיקה. מעבדה המעוניינת לשלב שינויים בפרוטוקול זה צריכה לאמת ולאשר את השיטות ששונו בהתייעצות עם ה-CDC.
דגימות רקמת מוח לאחר המוות התקבלו באמצעות מעקב שגרתי או פעילויות אבחון של ענף האבעבועות והכלבת (CDC; אטלנטה, ג'ורג'יה, ארה"ב).
1. איסוף רקמת מוח לאבחון כלבת לאחר המוות בבעלי חיים על ידי בדיקת RT-PCR בזמן אמת LN34 pan-lyssavirus
הערה: דגימות עשויות להכיל גורמים זיהומיים. ללבוש ציוד מגן אישי מתאים (PPE) (כפפות גומי כבדות או כפפות אחרות עמידות בפני חיתוך, חלוק מעבדה, סינר עמיד למים, מסכה כירורגית, מגפיים, שרוולי מגן ומגן פנים) ופעל לפי תקנות הבטיחות הנדרשות לשימוש, אחסון וסילוק דגימות. חיסון כלבת לפני חשיפה, בדיקות סרולוגיות קבועות וחיסוני דחף (לפי הצורך) נדרשים לכל מי שעובד עם, בודק, מייצר או מבצע פעילויות מחקר עם נגיפי ליסה, או דגימות ידועות או שעלולות להיות נגועות 2,3,4,6,10.
2. פרוטוקול למיצוי RNA באמצעות ערכת RNA MiniPrep
3. פרוטוקול לבדיקת RT-PCR בזמן אמת של LN34 pan-lyssavirus
4. פרשנות תוצאות
5. שמירה ואחסון של דוגמאות
תמונות מייצגות מבדיקת LN34 מוצלחת על מכשיר PCR בזמן אמת ABI ViiA7 מוצגות באיור 2. צפייה בתוצאות המשורטטות בקנה מידה לוגריתמי מאפשרת צפייה קלה בערך Ct, הנקודה שבה העקומה חוצה את קו הסף (איור 2A,C). כאשר משורטטים בקנה מידה ליניארי, הגברה מוצלחת תופיע כעקומה סיגמואידית (או בצורת "S") (איור 2B,D), בעוד שתוצאות שליליות צריכות להופיע כקו ישר ושטוח. מומלץ להציג תוצאות הן בתצוגות ליניאריות והן בתצוגות בקנה מידה של יומן כדי לזהות חריגות או שגיאות אפשריות. ניתן לראות תוצאות חיוביות ושליליות אופייניות בתצוגת העלילה הרב-רכיבית באיור 2E,F, בהתאמה, שם ניתן לראות את רמת הקרינה של הצבע המסמן את הגשושית (FAM עבור LN34, VIC/HEX עבור βA) ביחס לצבע הפסיבי במאגר התגובה (ROX).
דוגמאות לתוצאות חריגות מוצגות באיור 3. ניתן להשתמש בהשוואות בין גרפים של ריצות מוצלחות (איור 2) וגרפים חריגים (איור 3) כדי לבודד ריצות לא טיפוסיות ובעיות מכשירים. איור 3A מציג אות החוצה את הסף, ומייצר ערך Ct עבור LN34, אך עקומת ההגברה מאוד לא טיפוסית, וגדלה באופן ליניארי. התרשים הרב-רכיבי (איור 3B) מראה גם קו גלי שאינו אופייני לדגימה חיובית. דוגמה זו מדגישה את החשיבות של צפייה בעלילות ההגברה ולא רק העתקת ערכי Ct. ודא תמיד שעקומות ההגברה נראות תקינות עבור כל הדגימות. מומלץ גם לצפות בחלקה מרובת הרכיבים כדי לוודא שאין אי סדרים. לעיתים, אותות בסיס מבולגנים יכולים ליצור ערכי Ct במקרים בהם לא התרחשה הגברה. אם אותות ההגברה נראים ליניאריים, מוצע להתאים את קו הבסיס כדי לראות אם העקומה נעלמת. במקרה של אות יוצא דופן כלשהו, יש לחזור על כל הריצה כולה. מומלץ לנקות ולהפעיל לוחית רקע במכשיר ה-PCR בזמן אמת אם הבעיות נמשכות. אם זמין, ניתן להריץ מוצרי PCR על ג'ל אגרוז ו/או לרצף כדי לפתור בעיות חריגות. לא מומלץ להשתמש בתוצאות של אלקטרופורזה או ריצוף ג'ל כדי לקבוע תוצאות אבחון.
מחקרים קודמים הראו שונות נמוכה בין שכפולים, הפעלת בדיקה, מפעיל ומעבדה עבור בדיקת LN347. אם נצפתה שונות גבוהה (>±הפרש של 1.5 Ct) בין שכפולים של אותה דגימה, יש לבדוק מחדש את ה-RNA. שונות גבוהה יכולה להיגרם מבעיות עם פיפטות, שיטות מעבדה, פיפטינג שגוי או מכונות PCR בזמן אמת. תצפית חוזרת ונשנית על שונות גבוהה על פני מספר דגימות או על פני ריצות בדיקה עשויה להצביע על בעיות מערכתיות. דגימות עם RNA נמוך, המתקרבות לסף הבדיקה עבור דגימה חיובית (Ct 35), עשויות להפגין שונות גבוהה יותר בערכי Ct בין שכפולים. ייתכן שיהיה צורך בהתייעצות עם ה-CDC ופתרון בעיות כדי לטפל בגורם לשונות המתמשכת, לתוצאות לא עקביות או לכשל בבדיקה.
הרגישות הגבוהה של בדיקות מבוססות PCR הופכת אותן מטבען לרגישות לזיהום. הקפדה על שיטות מעבדה טובות היא הדרך הטובה ביותר להפחית זיהום צולב. חשוב לדעת כיצד לזהות זיהום פוטנציאלי. יש לחשוד בזיהום מגיב אם אין בקרת תבנית וחשוד שבארות דגימה שליליות בהפעלת בדיקה מייצרות ערכי Ct דומים. חזור על הבדיקה עם כמויות חדשות של ריאגנטים PCR (בופר, מים, פריימרים ואנזים) ואותו RNA. אם כל הדגימות ובקרת המיצוי מייצרות ערכי CT דומים אך NTC שלילי, יש לחקור זיהום של ריאגנטים למיצוי ולחזור על המיצוי באמצעות ריאגנטים חדשים. מומלץ להכין כמויות קטנות של ריאגנטים על מנת להפחית את הסיכון לזיהום ולמנוע את האפשרות להשליך כמויות גדולות של ריאגנטים יקרים. זיהום צולב של דגימה קשה יותר לזיהוי. אם יש חשד לזיהום דגימה, חזור על איסוף הדגימה החל מהרקמות המקוריות. במקרים מסוימים, ריצוף של ה-RNA הנגיפי יכול לאשר זיהום, במיוחד כאשר ה-RNA המזהם שונה מאוד מהוריאנט הנגיפי הצפוי (כגון וירוס ביקורת המשמש במעבדה). ריצוף של שתי דגימות שעובדו בו זמנית יכול לקבוע אם הרצפים הוויראליים זהים אך עשוי להיות לא אינפורמטיבי אם הרצפים צפויים להיות דומים מאוד (לדוגמה, אותו וריאנט שנאסף באותו מחוז). אם יש חשד לזיהום דגימה ב-RNA בקרה חיובית, ניתן להפעיל את אמפליקוני בדיקת LN34 על ג'ל אגרוז כדי להבדיל בין RNA של וירוס ליסה (165 bp) לבין RNA בקרה חיובית (99 bp). רצף התבנית המשמש ליצירת ה-RNA הבקרה החיובי המסופק על ידי CDC8.
עבור פתוגנים אחרים, ניתן להשתמש במעבדות כדי להגדיר את הסף באופן ידני כדי להיפטר מ"רעש" כמו ההגברה החלשה המוצגת בציאן באיור 4. נוהג זה אינו מומלץ לאבחון כלבת מכיוון שהוא עלול להוביל לתוצאות שליליות כוזבות עם השלכות קשות מכיוון שכלבת היא כמעט 100% קטלנית. אל תשנה ידנית את הסף כדי להפיק תוצאות שליליות עבור חלשות או מאוחרות ampדגימות ampדגימה. יש לחלץ דגימות אלו מחדש ו/או להיבדק מחדש כדי לשלול כלבת.
איור 1: שדה ראייה המראה התפשטות חד צדדית של אנטיגן נגיף הכלבת בחמור נגוע על ידי בדיקת נוגדנים פלואורסצנטית ישירה. אנא לחץ כאן לצפייה בגרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 2: הגברה ותרשימים מרובי רכיבים מריצת בדיקת LN34 מוצלחת. (A-D) נתוני התוצאה משורטטים בסולם לוג (A,C) ובסולם ליניארי (B,D) עבור מבחן LN34 ו-βA. לוחות A ו-B מתארים תוצאות LN34 משתי דגימות (בוורוד ובציאן) בהשוואה לבקרה החיובית (בצהוב). בפאנל B, יש קו ירוק שטוח המתאר דגימה שלילית נוספת בריצה. ב-A, הקווים הירוקים אינם מראים הגברה כלשהי ומתוארים כמקטעים שבורים. הסף לבדיקת LN34 הוגדר ידנית ל-0.2 ומוצג על ידי הקו האופקי האדום. (ג,ד) תוצאות מבדיקת βA עבור שתי דגימות (אדום וציאן). הסף לבדיקת βA נקבע ידנית על 0.05. (ה,ו) עלילות מרובות רכיבים מתארות את הקרינה (RFU) בכל מחזור עבור FAM (LN34), VIC (βA) ו-ROX (צבע פסיבי הקיים במאגר AgPath-ID). רמות ה-ROX צריכות להישאר שטוחות לאורך כל המחזורים. דגימה חיובית טיפוסית מוצגת בפאנל E; הקרינה של FAM עולה כעקומה סיגמואידית החל ממחזור 18 עבור דגימה זו. דגימה שלילית טיפוסית מוצגת בפאנל F, שבו רמת ה-FAM נשארת מקבילה לרמת ה-ROX בכל המחזורים. הנתונים הם ממכשיר PCR בזמן אמת ABI ViiA7. אנא לחץ כאן לצפייה בגרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 3: תמונות מייצגות של האות הנדיר והלא טיפוסי שנצפה בבדיקת LN34 פועל על מכשיר PCR זמן-אמת ViiA7. (א-ו) חלקות הגברה (A,C,E) ומרובות רכיבים (B,D,F) המיוצרות עקב זיהום באר. העלייה הליניארית (A,C) והתנודות הגליות (B,D) בקרינה FAM אינן מייצגות הגברה אמיתית המבוססת על צורת העקומות וגודל שינוי הקרינה. לוחות A עד D מייצגים ככל הנראה דגימות שליליות למרות שערך Ct הופק עבור השכפול המוצג בלוחות A ו-B. לוחות E ו-F מציגים אות גלי מוזר שניתן לראות ביתר קלות בתרשים מרובה הרכיבים. יש לחקור סוג זה של אות ועשוי להצביע על בעיות במכשירים, למרות שכל הפקדים בוצעו כצפוי בריצה זו. אנא לחץ כאן לצפייה בגרסה גדולה יותר של איור זה.
איור 4: עקומות RT-PCR בזמן אמת של LN34 מ-2 דגימות חשודות בכלבת המציגות שתי שיטות לקביעת ערכי סף. (A) סף LN34 נקבע ל-0.2 (מומלץ לכל הריצות). (ב) קביעה ידנית של סף שונה עבור כל ריצה כדי להסוות אות שנקבע כ"רעש" (אות הגברה מאוחר). השיטה המשמשת בפאנל B אינה מומלצת לכלבת בשל ההשלכות החמורות של החמצת תוצאה חיובית אמיתית. הגברה מאוחרת יכולה להצביע על דגימה חיובית חלשה, עיכוב PCR או מיצוי כושל במקרה חיובי. זה יכול גם להצביע על זיהום צולב. דגימת הזהב (המסומנת על ידי חיצים שחורים) מייצרת ערך Ct בחתך הבדיקה ואין להתייחס אליה כשלילית. יש לחלץ מחדש דגימות עם הגברה מאוחרת ולבדוק אותן מחדש. אנא לחץ כאן לצפייה בגרסה גדולה יותר של איור זה.
טבלה 1: רצפים וריכוזים של פריימר ובדיקה המשמשים במבחני RT-PCR בזמן אמת LN34lys (סינגלפלקס LN34), LN34M (LN34 ו-βA מרובבים). בדיקות LN34 מסומנות בצבע FAM פלואורסצנטי בקצה 5 ומרווה חור שחור (BHQ1) בקצה 3'. בדיקת βA מסומנת בצבע ה-HEX הפלואורסצנטי בקצה ה-5 ומרווה החור השחור (BHQ1) בקצה ה-3'. בסיסים נעולים שעברו שינוי נוקלאוטיד מסומנים על ידי פלוס לפני הבסיס ברצף. אנא לחץ כאן להורדת טבלה זו.
טבלה 2: מבחן שהוגדר עבור מבחני LN34lys, Actin3 ו-LN34M. ניתן למצוא שמות פריימר ובדיקה, רצפים וריכוזים בטבלה 1. LN34_F1 תואם ל- ACGCTTAACAACCAGATCAAAGAA7. אנא לחץ כאן להורדת טבלה זו.
טבלה 3: פרמטרי רכיבה על אופניים עבור מכשירי ABI. חשוב: הקפד לפעול במצב רגיל , לא במצב FAST . יש לבחור ROX כצבע הייחוס הפסיבי. אנא לחץ כאן להורדת טבלה זו.
טבלה 4: אלגוריתם לפירוש תוצאות RT-PCR בזמן אמת של LN34 עבור פורמטים של סינגלפלקס (עליון, טבלה כחולה) ומולטיפלקס (למטה, טבלה אדומה). תוצאת LN34 חיובית צריכה להיחשב חיובית, גם אם תוצאת βA שלילית או לא חד משמעית. אם LN34 amplicon אינו מזוהה, יש ≤ את βA Ct מחיתוך ערך ה-Ct הרשום כדי להיחשב שלילי. ערכי βA Ct מציינים את איכות הדגימה הנבדקת ומזהים עיכוב אפשרי. ריכוז נמוך בדגימה הקלינית המקורית עשוי להשפיע על עקומות הצמיחה של βA, מה שלא מוביל להגברה ניכרת. גורמים תורמים נוספים לכישלון באיתור β-אקטין כוללים מיצוי לקוי של RNA עקב אובדן RNA או העברת מעכבי PCR, הגדרה וטכניקה שגויים של בדיקה, סוג דגימה או איכות לא משביעי רצון ותקלה של ריאגנטים או ציוד. אנא לחץ כאן להורדת טבלה זו.
טבלה 5: פעולות ופרשנויות של תוצאות נפוצות עבור בקרות בדיקת LN34. כל שלושת הבקרות (RNA בקרה חיובית לכלבת, בקרת מיצוי שלילית לכלבת ואף בקרת תבנית לא חייבת לייצר תוצאות צפויות כדי שריצת ריצה תעבור. כשל בבקרה החיובית או היעדר בקרת תבנית עשויים להצביע על כשל שגוי, מגיב או כשל בציוד. יש לחזור על כל הריצה, כולל כל דגימות ה-RNA שנבדקו. כשל בבקרת החילוץ עשוי להצביע על בעיה במהלך החילוץ, כגון כשל במגיב , שגיאה או זיהום צולב. יש לחזור על מיצוי כל הדגימות. כשל בבקרות אמור להיות נדיר עבור אנשי מעבדה מנוסים. אנא לחץ כאן להורדת טבלה זו.
ריצת בדיקת LN34 מוצלחת דורשת בקרה חיובית, בקרת חילוץ, ואין תגובות בקרת תבנית מבוצעות כצפוי בכל ריצת בדיקה או שיש לבטל את הריצה ולחזור עליה. כל שלוש תגובות שכפול הבקרה החיוביות של LN34 צריכות לחצות את הסף בטווח שצוין, או לחזור על הריצה. ה-RNA הבקרה החיובי שתואר בפרסומים קודמים 7,8 לא יגבר בבדיקת βA. תגובות הבקרה ללא תבנית לא אמורות להציג עקומות הגברה החוצות את קו הסף עבור מבחן LN34 או βA. בקרת החילוץ לא אמורה להפגין ampעבור LN34. אם נצפתה הגברה בלתי צפויה בבקרת ה-NTC או החילוץ, היא עלולה להצביע על זיהום ולבטל את תוקף הריצה והבדיקה החוזרת עבור כל הדגימות (ראה טבלה 5). משתמשים עשויים לשקול להוסיף בקרות נוספות, כולל בקרת אי-תהליך או בקרת מיצוי ללא דגימה, כדי לנטר זיהום βA מארח של ריאגנטים למיצוי.
ככל שמקרי המוות מכלבת מתקרבים ל-100%, מומלץ לחקור עוד יותר כל הגברה חלשה או חריגה, גם אם היא אינה מייצרת ערך Ct. תגובות שליליות או NTC לא אמורות להראות שום הגברה, והפלואורסצנציה צריכה להופיע כקו שטוח במקביל לפלואורסצנציה של ROX בתצוגה מרובת רכיבים. תצפיות על עקומות, במיוחד במספר שכפולים, עשויות להצביע על זיהום צולב או תוצאה חיובית חלשה. יש להגביר את כל השכפולים עבור דגימה חיובית לקבלת תוצאה חיובית תקפה. אם רק תת-קבוצה של שכפולים מתגברת בכל אחת מהבדיקות, יש לבדוק מחדש את הדגימה. יתר על כן, כל דגימה המניבה תוצאות משתנות מאוד (הבדלי ערכי Ct > ±1.5 בין שכפולים) צריכה להיחשב כלא חוקית, ויש לבדוק מחדש את הדגימה. אם הבעיה נמשכת, יש לחלץ מחדש את הדגימה.
דגימה חיובית לכלבת שחולצה מרקמת גזע המוח והמוח הקטן שנאספו ומאוחסנים כראוי צפויה להיות בעלת ערך Ct של פחות מ-35 מחזורים עבור בדיקת LN34. יש לבדוק מחדש את כל הדגימות הלא חד-משמעיות על ידי RT-PCR בזמן אמת LN34. אם הדגימה אינה חד משמעית בבדיקה חוזרת וכל הבקרות מבוצעות כצפוי, מומלץ חילוץ מחדש של RNA. דגימות עם RNA נגיפי נמוך (LN34 Ct > 35) עשויות להצביע על בעיות פוטנציאליות כגון זיהום, עומס וירוס נמוך, עיכוב PCR או מיצוי כושל. אספו חתיכות טריות של המוח מהרקמה המקורית, בצעו מיצוי רנ"א ובדקו מחדש את הדגימה. כמו כן, ערכי Ct > 33 (סינגלפלקס), 37 (LN34M), או ללא הגברה בבדיקת βA עשויים להצביע על מיצוי RNA כושל. חזור על מיצוי עבור דגימות כאלה, ולאחר מכן חזור על הבדיקה הן עבור LN34 והן עבור אקטין. אם דגימה מייצרת שוב תוצאה לא חד משמעית לאחר בדיקה חוזרת, השתמש בשיטה משנית כגון בדיקת DFA (נקראת גם FAT), DRIT או בידוד וירוסים. אם נצפות תוצאות לא תואמות מתמשכות או תוצאות לא חד משמעיות, אנא התייעץ עם מעבדת ייחוס כלבת לבדיקות אישור.
אם קיימים מעכבים במיצוי RNA, בדיקות PCR עשויות לייצר תוצאה שלילית כוזבת. אם יש חשד לעיכוב או עיכוב של תגובות הבקרה של βA (כגון ערך Ct > 33 או ערך Ct > 37) עבור דגימה מסוימת, יש לבדוק RNA מופק ב-2 דילולים או יותר (למשל, 1:10 ו-1:100 במים נטולי נוקלאז) כדי לדלל מעכבי PCR פוטנציאליים. עבור דגימות קשות, ניתן להגדיל את כניסת ה-RNA ל-8.5 מיקרוליטר בתגובת RT-PCR על ידי אי הוספת מים. זה עשוי לחשוף עיכוב מוגבר (ערך Ct מאוחר יותר בהשוואה ל-RNA קלט של 2 מיקרוליטר) או רמת RNA נמוכה בדגימה המקורית (ערך Ct מוקדם יותר בעת שימוש ב-8.5 מיקרוליטר בהשוואה ל-RNA קלט של 2 מיקרוליטר).
בדיקת LN34 אינה מבדילה בין נגיפי ליסה או קובעת גרסאות של נגיף הכלבת. ניתן לרצף את אמפליקון הבדיקה LN34 עבור סוג וריאנט נגיף הכלבת ברזולוציה נמוכה או זיהוי של מיני נגיף ליסה11.
אף אחד לא לחשוף
אנו מכירים במאמצים ובשיתוף הפעולה של מעבדות רבות לבדיקת אבחון כלבת שתרמו ליישום, אימות ואופטימיזציה של בדיקת LN34 באמצעות שיתוף הנתונים הפתוחים והמשוב שלהן. השימוש בשמות מסחריים ובמקורות מסחריים הוא לזיהוי בלבד ואינו מרמז על תמיכה של המרכזים לבקרת מחלות ומניעתן, משרד הבריאות ושירותי האנוש של ארה"ב או המוסדות המסונפים למחברים. המסקנות, הממצאים והדעות המובעות על ידי המחברים אינם משקפים בהכרח את העמדה הרשמית של משרד הבריאות ושירותי האנוש של ארה"ב, המרכזים לבקרת מחלות ומניעתן או המוסדות המסונפים למחברים.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
7500 Fast | Applied Biosystems | N/A | Do not substitute without validation |
7500 Fast Dx | Applied Biosystems | N/A | Do not substitute without validation |
ABI ViiA 7 | Applied Biosystems | N/A | Do not substitute without validation |
AgPath-ID One-Step RT-PCR Kit | ThermoFisher Scientific | AM1005 | Do not substitute without validation |
Beadbug6 | Benchmark Scientific | D1036 | |
Direct-zol RNA MiniPrep kit | Zymo Research | R2052 | |
MagNA Lyser green beads | Roche | 3358941001 | |
Microcentrifuge | Eppendorf | 5425 R | |
Optical 96-well Reaction Plates | ThermoFisher Scientific | 4346907 | |
Optical Adhesive covers | ThermoFisher Scientific | 4311971 | Alternative: caps |
Polyester fiber-tipped applicator swabs | BD BBL Polyester Fiber Tipped Application Swab | 220690 | |
QuantStudio 6Flex | Applied Biosystems | 4485691 | Do not substitute without validation |
Quaternary ammonium disinfectant (1:256) | LYSOL | WBB56939 | Do not substitute without validation |
RNase AWAY | ThermoFisher Scientific | 7002PK | |
RNaseZap | ThermoFisher Scientific | AM9780 | |
Single-use scalpel, a scalpel with a safety mechanism | Integra Miltex | 4-510 | |
Sterile polyproylene microcentrifuge tubes (1.5 mL), nuclease free | Sarstedt | 72.692.405 | |
Sterile polyproylene microcentrifuge tubes (2 mL), nuclease free | Sarstedt | 72.694.600 | |
TRIzol Reagent | ThermoFisher Scientific | 15596026 | Do not substitute without validation |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved