Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

השיטה המוצגת מתארת את יצירתו של נוקאאוט גנטי בתיווך קריספר בקו תאי גזע עובריים אנושיים (hESC) H9, המבטא ביציבות sgRNA המכוון לגן L2HGDH באמצעות מערכת העברת גנים בתיווך לנטיויראלי יעילה ביותר.

Abstract

מערכת CRISPR-Cas9 לעריכת גנום חוללה מהפכה במחקרי תפקוד גנים בתאי יונקים, כולל תאי גזע. עם זאת, היישום המעשי של טכניקה זו, במיוחד בתאי גזע פלוריפוטנטים, מציב אתגרים מסוימים, כגון היותה עתירת זמן ועבודה ויעילות עריכה נמוכה. במאמר זה אנו מתארים את היצירה של נוקאאוט גנטי בתיווך קריספר בקו תאי גזע עובריים אנושיים (hESC) המבטא ביציבות sgRNA עבור הגן L2HGDH, תוך שימוש במערכת העברת גנים בתיווך לנטיויראלי יעילה ויציבה ביותר. ה-sgRNA המכוון לאקסון 1 של הגן L2HGDH סונתז כימית ושוכפל לווקטור lentiCRISPR v2-puro, המשלב את הביטוי המכונן של sgRNA עם Cas9 במערכת וקטורית יחידה יעילה ביותר להשגת טיטרים לנטי-ויראליים גבוהים יותר עבור זיהום hESC ובחירה יציבה באמצעות פורומיצין. תאים שנבחרו בפורומיצין הורחבו עוד יותר, ושיבוטים חד-תאיים התקבלו בשיטת הדילול המוגבלת. השיבוטים הבודדים הורחבו, והתקבלו מספר שיבוטים הומוזיגוטיים עבור הגן L2HGDH, כפי שאושר על ידי הפחתה של 100% בביטוי L2HGDH באמצעות ניתוח כתמים מערביים. יתר על כן, באמצעות MSBSP-PCR, אתר מוטציית CRISPR מופה במעלה הזרם של רצף זיהוי PAM של Cas9 בשיבוטים הומוזיגוטיים שנבחרו. בוצע ריצוף סנגר לניתוח ההחדרות/מחיקות המדויקות, ובוצע אפיון פונקציונלי של השיבוטים. שיטה זו יצרה אחוז גבוה משמעותית של מחיקות הומוזיגוטיות בהשוואה לשיטות העברת גנים לא נגיפיות שדווחו בעבר. למרות שדו"ח זה מתמקד בגן L2HGDH, גישה חזקה וחסכונית זו יכולה לשמש ליצירת נוקאאוטים הומוזיגוטיים עבור גנים אחרים בתאי גזע פלוריפוטנטיים למחקרי תפקודי גנים.

Introduction

תאי גזע עובריים אנושיים (hESCs) ותאי גזע פלוריפוטנטיים מושרים (iPSCs) הם תאי גזע בעלי פוטנציאל להתמיין לכל סוגי התאים בגוף. תאים אלה משמשים כלים רבי ערך לחקר ההתפתחות האנושית, כמו גם להבנת המנגנונים העומדים בבסיסן של מחלות שונות, ובכך מציעים הבטחה עצומה לרפואה רגנרטיבית, מידול מחלות וגילוי תרופות. מחקרים כאלה כוללים חקירה כיצד גנים מסוימים תורמים להתפתחות, תפקוד וויסות של אורגניזמים 1,2.

טכניקות וגישות שונות משמשות לפענוח תפקוד גנים, כולל מניפולציה גנטית, כגון נוקאאוט גנים או ביטוי יתר, ועריכת גנום. בין אלה, טכנולוגיית CRISPR-Cas9 התגלתה כגישה היעיל

Protocol

פרטי רצפי הגנים, הריאגנטים והציוד ששימשו במחקר זה מפורטים בטבלת החומרים.

1. תכנון RNA מדריך יחיד (sgRNA), שיבוט וייצור וקטורים לנטי-ויראליים

הערה: נעשה שימוש בשני רצפי sgRNA שונים המכוונים לאקסון 1 של הגן L2HGDH , שניהם מותאמים מ-Qiu et al.6עם אתרי PAM של AGG ו-TGG עבור רצפים 1 ו-2, בהתאמה. אורכם של שני ה-sgRNA היה 20 bp, והקצוות שונו כדי להוסיף רצפי קישור עבור אנזים הגבלה Bsmb1 שישוכפל בווקטור המטרה (LentiCRISPRv2) כפי שתואר בדו"ח הקודם6. רצפי לינקר נוספו במהלך תכנון sgRNA למטרות שיבוט.

תוצאות

שיבוט של L2HGDH sgRNA ב-lentiCRISPRv2 puro
וקטור הפורו lentiCRISPRv2 הושג באופן מסחרי (ראו טבלת חומרים) ועוכל עם BsmB1, מה שהביא לשחרור של קטע פוחלץ של 1.8 Kb. כפי שניתן לראות באיור 2A, נצפה עיכול מלא של הווקטור. עבור כל מבנה, שישה שיבוטים נבדקו לנוכחות או היעדר החד...

Discussion

מחקר זה תיקן שיטה המאפשרת מחיקות גנים יעילות וחסכוניות ביותר בתאי גזע עובריים באמצעות טכנולוגיית CRISPR-Cas9. שיטה זו השיגה בהצלחה מחיקה הומוזיגוטית של הגן L2HGDH בתאי גזע עובריים עובריים תוך 3-4 שבועות, החל מזיהום בתאי גזע עובריים עובריים ועד לבחירה והתפשטות של תא בודד (טבל?...

Disclosures

המחברים מצהירים כי אין ניגוד עניינים.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי מענקי מחקר מאוניברסיטת איחוד האמירויות הערביות (UAEU) - #12M105 מענקים, #12R167 מענקים (מרכז זאיד למדעי הבריאות), 21R105 (Zayed Bin Sultan Charitable and Humanitarian Foundation (ZCHF)), ו- ASPIRE, עמוד התווך לניהול תוכניות הטכנולוגיה של מועצת המחקר לטכנולוגיה מתקדמת של אבו דאבי (ATRC), באמצעות מכון המחקר לרפואה מדויקת ASPIRE אבו דאבי (ASPIREPMRIAD) מספר מענק VRI-20-10.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
2-MERCAPTOETHANOL Invitrogen31350010
38.5 mL, Sterile + Certified Free Open-Top
Thinwall Ultra-Clear Tubes
Beckman CoulterC14292
AccutaseStem cell technologies7920
bFGF Recombinant humanInvitrogenPHG0261
Brachyury Rabbit mAbAbclonalA5078
BsmBI-v2NEBR0739S
chir99021Tocris4423/10
Corning Matrigel Basement Membrane Matrix, LDEV-freeCorning354234
CyclopamineStem cell technologies72074
DMEM mediaInvitrogen11995073
DMEM NUTRIENT MIX F12 Invitrogen11320033
DPBS w/o: Ca and MgPAN BiotechP04-36500
Fetal bovie serumInvitrogen10270106
FoxA2/HNF3β CST8186
GAPDH (14C10) Rabbit mAb AntibodyCST2118S
Gentle Cell Dissociation ReagentStem cell technologies7174
HyClone Non Essential Amino Acids (NEAA) 100x SolutionGE healthcareSH30238.01
Ki-67 (D3B5) Rabbit mAbCST9129
KnockOut Serum ReplacementInvitrogen10828028
L GLUTAMINE, 100xInvitrogen2924190090
L2H-BMSBSP-F1MacrogenCGTGCGGGTTCGCGTCTGGG
L2HGDH Polyclonal antibodyProteintech15707-1-AP
L2HGDH-SgRNA1-FMacrogenCACCGCGTGCGG
GTTCGCGTCTGGG
L2HGDH-SgRNA1-RMacrogenAAACCCCAGACGC
GAACCCGCACGC
L2HGDH-SgRNA2-FMacrogenCACCGCCCGCGG
GCTTTTCGCCGG
L2HGDH-SgRNA2-RMacrogenAAACCCGGCGAA
AAGCCCGCGGGC
L2H-SeqF1MacrogenGCTAAAGAGCGC
GGGTCCTCGG
L2H-SeqR1MacrogenGTGGACGGGTTG
TTCAAAGCCAGAG
L2H-UMSBSP-R1MacrogenGTGGACGGGTTG
TTCAAAGCCAGAG
LentiCRISPRv2Addgene52961
mTesR1 complete mediaStem cell technologies85850
Nanog AntibodyCST3580
NEUROBASAL MEDIUM 1x CTSInvitrogenA1371201
Neuropan 2 Supplement 100xPAN BiotechP07-11050
Neuropan 27 Supplement 50xPAN BiotechP07-07200
Oct-4 AntibodyCST2750
Pax6 (D3A9V) XP Rabbit mAbCST60433
PENICILLIN STREPTOMYCIN SOLInvitrogen15140122
pMD2.GAddgene12259
Polybrene infection reagentSigmaTR1003- G
Polyethylenimine, branchedSigma408727
psPAX2.0Addgene12260
PuromycinInvitrogenA1113802
qPCR Lentivirus Titer KitAbmLV900
Rock inhibitor Y-27632
dihydrochloride 
Tocris1254
SB 431542Tocris1614/10
Sox2 AntibodyCST2748
SucroseSigma57-50-1
TRYPSIN .05% EDTA Invitrogen25300062
U6-459FMacrogenGAGGGCCTATT
TCCCATGATTC
Wizard Genomic DNA Purification Kit PromegaA1120
XAV 939Tocris3748/10

References

  1. Jinek, M., et al. A programmable dual-RNA-guided DNA endonuclease in adaptive bacterial immunity. Science. 337 (6096), 816-821 (2012).
  2. Jiang, F., Doudna, J. A. CRISPR-Cas9 structures and mechanisms. An

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

CRISPR Cas9HESCL2HGDHSgRNAsMSBSP PCR

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved