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Method Article
제시된 방법은 고효율 렌티바이러스 매개 유전자 전달 시스템을 사용하여 L2HGDH 유전자를 표적으로 하는 sgRNA를 안정적으로 발현하는 인간 배아 줄기 세포(hESC) 계통 H9에서 CRISPR 매개 유전자 knockout의 생성을 설명합니다.
게놈 편집을 위한 CRISPR-Cas9 시스템은 줄기세포를 포함한 포유류 세포의 유전자 기능 연구에 혁명을 일으켰습니다. 그러나 이 기술의 실제 적용, 특히 만능 줄기 세포에서 시간 및 노동 집약적이고 편집 효율성이 낮은 것과 같은 특정 문제가 있습니다. 여기에서는 매우 효율적이고 안정적인 렌티바이러스 매개 유전자 전달 시스템을 사용하여 L2HGDH 유전자에 대한 sgRNA를 안정적으로 발현하는 인간 배아 줄기 세포(hESC) 계열에서 CRISPR 매개 유전자 knockout을 생성하는 방법에 대해 설명합니다. L2HGDH 유전자의 엑손 1을 표적으로 하는 sgRNA를 화학적으로 합성하여 렌tiCRISPR v2-puro 벡터로 클로닝했으며, 이 벡터는 고효율 단일 벡터 시스템에서 sgRNA와 Cas9의 구성적 발현을 결합하여 hESC 감염에 대한 더 높은 렌티바이러스 역가를 달성하고 퓨로마이신을 사용하여 안정적인 선택을 가능하게 했습니다. Puromycin-선택된 세포를 더욱 증식시키고, 제한된 희석 방법을 사용하여 단일-세포 클론을 수득하였다. 단일 클론을 확장하고, 웨스턴 블롯 분석을 사용하여 L2HGDH 발현의 100% 감소로 확인된 바와 같이 L2HGDH 유전자에 대한 여러 동형접합 녹아웃 클론을 수득하였다. 또한 MSBSP-PCR을 사용하여 CRISPR 돌연변이 부위를 선택된 동형접합 클론에서 Cas9의 PAM 인식 서열의 업스트림으로 매핑했습니다. 정확한 삽입/결실을 분석하기 위해 Sanger 염기서열분석을 수행하고, 클론의 기능적 특성 분석을 수행했습니다. 이 방법은 이전에 보고된 비바이러스성 유전자 전달 방법에 비해 훨씬 더 높은 동형접합 결실 비율을 생성했습니다. 이 보고서는 L2HGDH 유전자에 초점을 맞추고 있지만, 이 강력하고 비용 효율적인 접근 방식은 유전자 기능 연구를 위해 만능줄기세포의 다른 유전자에 대한 동형접합 knockout을 생성하는 데 사용할 수 있습니다.
인간 배아 줄기 세포(hESC) 및 유도 만능 줄기 세포(iPSC)는 신체의 모든 세포 유형으로 분화할 수 있는 잠재력을 가진 줄기 세포입니다. 이러한 세포는 인간 발달을 연구하고 다양한 질병의 기본 메커니즘을 이해하는 데 유용한 도구 역할을 하므로 재생 의학, 질병 모델링 및 약물 발견에 대한 엄청난 가능성을 제공합니다. 이러한 연구에는 특정 유전자가 유기체의 발달, 기능 및 조절에 어떻게 기여하는지 조사하는 것이 포함됩니다 1,2.
유전자 knockout 또는 과발현과 같은 유전자 조작, 게놈 편집을 포함하여 유전자 기능을 해독하기 위해 다양한 기술과 접근 방식이 사용됩니다. 이 중 CRISPR-Cas9 기술은 유전자 knockout 및 유전자 편집 연구를 위한 가장 효율적인 접근법으로 부상하고있습니다 1,2,3. CRISPR-Cas9 시스템은 특정 관심 DNA 염기서열을 식별하고 결합하도록 특별히 설계된 단일 가이드 RNA(sgRNA) 분자를 활용하여 작동합니다. 분자 가이드 역할을 하는 sgRNA는 Cas9 효소를 수정이 필요한 게놈의 정확한 위치로 유도합니다. 일단 결합되면, Cas9는 지정된 부위의 DNA에서 이중 가닥 절단을 시작합니다. DNA가 절단되면 세포의 고유한 복구 메커니즘이 활성화됩니다. 여기에는 NHEJ(Non-Homologous End Joining)와 HDR(Homology-Directed Repair)의 두 가지 주요 복구 경로가 포함됩니다. NHEJ는 종종 절단 부위에 삽입 또는 결실(indels)을 초래하여 유전자 파괴 또는 불활성화를 초래합니다. 반대로, HDR은 절단 부위에 새로운 DNA 염기서열을 삽입할 수 있게 하여 표적 유전자 변형의 도입을 용이하게 합니다4.
만능줄기세포에서 유전자 결실의 중요성을 감안할 때, hESCs/iPSCs에서 CRISPR-Cas9 매개 유전자 knockouts에 대한 여러 프로토콜이 발표되었습니다. 그러나 이러한 프로토콜 중 다수는 시간이 많이 걸리고 노동 집약적이며 비바이러스 유전자 전달 방법을 사용하기 때문에 효율성이 낮다는 등의 심각한 한계에 직면해 있습니다5. 이러한 문제는 hESC/iPSC에서 더욱 두드러지는데, 이러한 세포는 다른 세포 유형에 비해 편집 효율이 낮은 것으로 알려져 있기 때문입니다5. 이러한 한계 중 일부는 Cas9 및 sgRNA를 포함하는 플라스미드 전달의 효율성을 높임으로써 해결할 수 있습니다. 이는 유전자 편집 결과를 크게 개선할 수 있는 렌티바이러스 벡터 시스템을 사용하여 성공적으로 달성할 수 있습니다. 렌티바이러스 패키징 프로토콜은 잘 정립되어 있고 간단하여 경험이 부족한 연구자도 실험실에서 쉽게 채택할 수 있습니다. 렌티바이러스는 hESC 및 iPSC를 포함한 다양한 세포 유형에서 높은 감염 효율을 보입니다. 따라서 Cas9-sgRNA 발현을 위해 렌티바이러스 시스템을 활용하는 것은 유전자 기능 연구를 위한 hESC/iPSC의 일상적인 유전자 편집 실험에 이상적입니다.
여기에서는 기존 프로토콜보다 비교적 짧은 시간 내에 hESC에서 매우 효율적인 CRISPR-Cas9 기반 유전자 결실을 위한 간단하고 간단한 방법을 제공합니다(그림 1). Cas9 및 sgRNA의 구성적 발현을 가진 렌티바이러스 벡터가 사용되었지만, 제어 가능한 Cas9 발현을 위해 약물 유도 Cas9 발현으로 쉽게 대체될 수 있습니다.
이 연구에 사용된 유전자 염기서열, 시약 및 장비의 세부 사항은 재료 표에 나열되어 있습니다.
1. Single guide RNA(sgRNA) 디자인, 클로닝 및 렌티바이러스 벡터 생산
참고: L2HGDH 유전자의 엑손 1을 표적으로 하는 두 가지 다른 sgRNA 염기서열이 사용되며, 둘 다 Qiu et al.6에서 채택된 AGG 및 TGG의 PAM 부위와 염기서열 1 및 2에 대해 사용됩니다. 두 sgRNA의 길이는 20 bp였고, 이전 보고서6에서 설명한 바와 같이 표적 벡터(LentiCRISPRv2)에서 클로닝할 제한효소 Bsmb1에 대한 링커 서열을 추가하도록 말단을 수정하였다. 링커 염기서열은 클로닝 목적으로 sgRNA를 설계하는 동안 추가되었습니다.
2. 렌티바이러스 감염 및 단세포 클론 증식
3. gDNA 추출, MS-BSP PCR 및 Sanger 염기서열분석
4. hESC-분화 및 배아체(EB) 형성 분석
5. 웨스턴 블롯 분석
6. 면역염색
lentiCRISPRv2 puro에서 L2HGDH sgRNAs 클로닝
lentiCRISPRv2 puro 벡터를 상업적으로 획득하고( 재료 표 참조) BsmB1로 절단한 결과, 1.8Kb 스터퍼 단편이 방출되었습니다. 그림 2A에서 볼 수 있듯이, 벡터의 완전한 분해가 관찰되었습니다. 각 구조체에 대해 벡터 서열 내에서 역 sgRNA 서열을 프라이머로, 전방 프라이머(U6-459F)를 사용하여 삽?...
본 연구는 CRISPR-Cas9 기술을 통해 hESC에서 매우 효율적이고 비용 효율적인 유전자 결실을 가능하게 하는 방법을 표준화하였습니다. 이 방법은 hESC 감염부터 단세포 클론 선택 및 증식에 이르기까지 3-4주 이내에 hESC에서 L2HGDH 유전자의 동형접합 결실을 성공적으로 달성했습니다(표 1). CRISPR-Cas9 매개 유전자 조작은 대부분의 세포에서 일시적인 transfection으로 달?...
저자는 이해 상충이 없다고 선언합니다.
이 연구는 아랍에미리트대학교(UAEU)의 연구 보조금으로 지원되었으며, #12M105 지원금, 보조금 #12R167(Zayed Center for Health Sciences), 21R105(Zayed Bin Sultan Charitable and Humanitarian Foundation(ZCHF)) 및 아부다비 첨단기술연구위원회(ATRC)의 기술 프로그램 관리 기둥인 ASPIRE가 ASPIRE Precision Medicine Research Institute Abu Dhabi(ASPIREPMRIAD) 수여 번호 VRI-20-10을 통해 지원했습니다.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
2-MERCAPTOETHANOL | Invitrogen | 31350010 | |
38.5 mL, Sterile + Certified Free Open-Top Thinwall Ultra-Clear Tubes | Beckman Coulter | C14292 | |
Accutase | Stem cell technologies | 7920 | |
bFGF Recombinant human | Invitrogen | PHG0261 | |
Brachyury Rabbit mAb | Abclonal | A5078 | |
BsmBI-v2 | NEB | R0739S | |
chir99021 | Tocris | 4423/10 | |
Corning Matrigel Basement Membrane Matrix, LDEV-free | Corning | 354234 | |
Cyclopamine | Stem cell technologies | 72074 | |
DMEM media | Invitrogen | 11995073 | |
DMEM NUTRIENT MIX F12 | Invitrogen | 11320033 | |
DPBS w/o: Ca and Mg | PAN Biotech | P04-36500 | |
Fetal bovie serum | Invitrogen | 10270106 | |
FoxA2/HNF3β | CST | 8186 | |
GAPDH (14C10) Rabbit mAb Antibody | CST | 2118S | |
Gentle Cell Dissociation Reagent | Stem cell technologies | 7174 | |
HyClone Non Essential Amino Acids (NEAA) 100x Solution | GE healthcare | SH30238.01 | |
Ki-67 (D3B5) Rabbit mAb | CST | 9129 | |
KnockOut Serum Replacement | Invitrogen | 10828028 | |
L GLUTAMINE, 100x | Invitrogen | 2924190090 | |
L2H-BMSBSP-F1 | Macrogen | CGTGCGGGTTCGCGTCTGGG | |
L2HGDH Polyclonal antibody | Proteintech | 15707-1-AP | |
L2HGDH-SgRNA1-F | Macrogen | CACCGCGTGCGG GTTCGCGTCTGGG | |
L2HGDH-SgRNA1-R | Macrogen | AAACCCCAGACGC GAACCCGCACGC | |
L2HGDH-SgRNA2-F | Macrogen | CACCGCCCGCGG GCTTTTCGCCGG | |
L2HGDH-SgRNA2-R | Macrogen | AAACCCGGCGAA AAGCCCGCGGGC | |
L2H-SeqF1 | Macrogen | GCTAAAGAGCGC GGGTCCTCGG | |
L2H-SeqR1 | Macrogen | GTGGACGGGTTG TTCAAAGCCAGAG | |
L2H-UMSBSP-R1 | Macrogen | GTGGACGGGTTG TTCAAAGCCAGAG | |
LentiCRISPRv2 | Addgene | 52961 | |
mTesR1 complete media | Stem cell technologies | 85850 | |
Nanog Antibody | CST | 3580 | |
NEUROBASAL MEDIUM 1x CTS | Invitrogen | A1371201 | |
Neuropan 2 Supplement 100x | PAN Biotech | P07-11050 | |
Neuropan 27 Supplement 50x | PAN Biotech | P07-07200 | |
Oct-4 Antibody | CST | 2750 | |
Pax6 (D3A9V) XP Rabbit mAb | CST | 60433 | |
PENICILLIN STREPTOMYCIN SOL | Invitrogen | 15140122 | |
pMD2.G | Addgene | 12259 | |
Polybrene infection reagent | Sigma | TR1003- G | |
Polyethylenimine, branched | Sigma | 408727 | |
psPAX2.0 | Addgene | 12260 | |
Puromycin | Invitrogen | A1113802 | |
qPCR Lentivirus Titer Kit | Abm | LV900 | |
Rock inhibitor Y-27632 dihydrochloride | Tocris | 1254 | |
SB 431542 | Tocris | 1614/10 | |
Sox2 Antibody | CST | 2748 | |
Sucrose | Sigma | 57-50-1 | |
TRYPSIN .05% EDTA | Invitrogen | 25300062 | |
U6-459F | Macrogen | GAGGGCCTATT TCCCATGATTC | |
Wizard Genomic DNA Purification Kit | Promega | A1120 | |
XAV 939 | Tocris | 3748/10 |
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