We thank Kwon laboratory members for helpful discussions. This work was supported by grants from NHLBI/NIH (R01HL111198) and Maryland Stem Cell Research Fund (MSCRF).

כל העכברים נשמרו באגודה אמריקנית להסמכה של מעבדה טיפול בבעלי חיים (AAALAC) -accredited מתקן בעלי חיים באוניברסיטת ג&#39;ונס הופקינס ושוכנו בבהתאם לנהלים המפורטים במדריך לטיפול והשימוש בחי מעבדה. הוועדה לטיפול ושימוש בבעלי החיים המוסדית (IACUC) אישרה את כל פרוטוקולי הניסוי. 1. ניסיוני הכנה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צלחת 12 גם מעיל עם 10% בסרום שור עוברי (FBS) בפוספט שנאגרו פתרון (PBS) במשך 60 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר פתרון ציפוי ולהוסיף 200 μl של מדיה סרום חינם (SFM). לסובב צלחת לוודא כי סרט של תקשורת מכסה את פני השטח כולו. </li></ol> 2. ניתוחים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים עכברים בהריון באמצעות הפרוטוקול שאושר על-הוועדה של מוסד טיפול בבעלי החיים ואחריו נקע בצוואר הרחם על מנת להבטיח המתת חסד מוחלטת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ריסוס ולנקות את אזור הבטן של העכבר עם 70%אתנול. לשמור על טכניקות סטרילי קפדניות, כדי למנוע זיהום. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מלקחיים שימוש ומספריים לעשות חתך 0.5 סנטימטר 2 באזור הטבור. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש באצבעות לצבוט / לתפוס את העור מעל ומתחת לחתך ומשוך בעדינות את העור בכיוונים מנוגדים (ראש וזנב). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש במלקחיים ומספריים כדי להפוך את חתך ראשוני בקרום באזור הטבור. בעדינות לחתוך את הקרום בצורת V-מהטבור לשחלות בכל צד (2 x 1.5 סנטימטר 2), ובכך חושף את הרחם. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש במלקחיים כדי לצבוט את oviduct חיבור הרחם לשחלה והמספריים לצבוט oviduct בצד השחלה, ובכך לשחרר את הרחם מהשחלה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> משוך בעדינות את הרחם על ידי oviduct עם המלקחיים ולחתוך את הרחם חופשי מאזור שלפוחית ​​השתן במספריים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> משוך את הרחם נוסף על ידי oviduct עם המלקחיים, וחתכתי את צינור השחלה עם מספריים בצד השני, ובכך לשחרר את הרחם ממ &#39;ouse. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> העבר את הרחם לצינור 50 מ&quot;ל ולהוסיף 20 מיליליטר של PBS הקר סטרילי עם Ca 2 + וMg 2 +. PBS חייב לכלול Ca 2 + וMg 2 + במהלך נתיחת עובר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> נער בעדינות את הצינור במשך 10 שניות לשטוף את הרחם לדם. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> העבר את הרחם מהצינור עם מלקחיים ומניח אותו בצלחת 10 מיליליטר ולהוסיף 5 מיליליטר של PBS הקר על גבי הרחם. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את הצלחת עם הרחם תחת סטראו. הערה: שלבי 2.13-2.19 דורש סטראו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש בשני זוגות מלקחיים בעדינות כדי לפתוח את הרחם ולנתח את שקים מי שפיר עם עוברים מהרחם אחד אחד. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש בשני זוגות מלקחיים כדי לפתוח את השק מי השפיר המקיף את העובר בזהירות, לצבוט את השק עם מלקחיים ובעדינות מסיר אותו מהעובר, להשתמש במלקחיים האחרים לחתוך ולשחרר את השק מי השפיר מהעובר. אם גנוטיפ ספציפי דרוש, לשמור על שק מי שפיר לgenotyping. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את העובר בצד ולהשתמש במלקחיים כדי לחתוך את רח &#39;1 ו -2 nd קשת בדיעבד ללב בין הקשת ונרתיק בלוע (איור 1 א&#39; &#39;). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעדינות להעיף את העובר לצד השני ולהשתמש במלקחיים כדי לחתוך את 1 ו 2 קשת בדיעבד ללב בין הקשת ונרתיק בלוע. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש במלקחיים כדי לחתוך את דרכי יצוא לב שעדיין מחברים את רח &#39;1 ו -2 nd בלוע קשתות לעובר. הסר את הקשתות, שעדיין מחוברים יחד בצורת פרפר (איור 1), מן העובר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש במלקחיים לצבוט ולשחרר את קשתות בלוע -1 מהאנדודרם דרכי יצוא לב ומעי קדמי שנותר (איור 1 ב &#39;&#39; הצביע עם קו מקווקו ו*). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש במלקחיים לצבוט ולשחרר את קשתות בלוע 2 nd ממערכת יצוא לב שנותרהוהאנדודרם המעי הקדמי (איור 1 ב &#39;&#39; הצביע עם קו מקווקו ו**). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> העבר כל זוג קשתות בנפרד באמצעות מלקחיים ומניח את שני הקשתות באמצע מיועד גם. קשתות צלחת 1 st ו- 2 nd בלוע בבארות נפרדות. ודא שהקשתות נמצאות בקשר עם הסרט של תקשורת הוסיפה בשלב 1.2. זה חיוני כי קשתות לא מכוסות על ידי בינוני, כפי שהם צריכים ליצור קשר עם פני השטח של גם לקובץ מצורף בתקופה זו. </li></ol> 3. דגירה והדמיה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירה קשתות מצופות בצלחת 12 גם ב 37 ° C / 5% CO 2 לשעה 2 לקשתות לצרף את פני שטח היטב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעדינות להוסיף 200 μl של 37 מעלות צלזיוס SFM למטה בצד של הבאר. ודא שקשתות תישארנה מחוברים ודגירת O / N. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> למחרת, חזותי לבדוק שקשתות בלוע מצורפות ועדינות להוסיף 200 μl של 37 מעלות צלזיוס SFM למטה בצד שלכן. אם הקשתות יישארו פנויות וצף, להסיר בעדינות תקשורת עם טפטפת מבלי להסיר קשתות עד שרק סרט של תקשורת נשאר. השתמש קצה פיפטה למקם קשתות באמצע הצעד טוב וחזור על 3.1. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צג יומי; להוסיף ~ 100-200 μl של תקשורת בכל יום 2 להחליף כל התאדו תקשורת. הערה: 24-48 שעות לאחר העברת תאים להופיע סביב הקשת ולהתרבות ולהעביר מקשת מעל 5-8 הימים הקרובים. אחרי 36-72 היווצרות שעות של שריר לב פועם ניתן לצפות מקשת בלוע 2 nd (איור 2). היווצרות Myotube ניתן לצפות מ3-7 ימי 1 קשת בלוע רח לאחר מצורף (איור 2 א). </li></ol>

<ol>
	<li>Kelly, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+second+heart+field.">The second heart field.</a> Curr Top Dev Biol. 100, 33-65 (2012).</li><li>Bruneau, B. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+developmental+genetics+of+congenital+heart+disease.">The developmental genetics of congenital heart disease.</a> Nature. 451, 943-948 (2008).</li><li>Tzahor, E., Evans, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pharyngeal+mesoderm+development+during+embryogenesis:+implications+for+both+heart+and+head+myogenesis.">Pharyngeal mesoderm development during embryogenesis: implications for both heart and head myogenesis.</a> Cardiovasc Res. 91, 196-202 (2011).</li><li>Uosaki, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Direct+Contact+with+Endoderm-like+Cells+Efficiently+Induces+Cardiac+Progenitors+from+Mouse+and+Human+Pluripotent+Stem+Cells.">Direct Contact with Endoderm-like Cells Efficiently Induces Cardiac Progenitors from Mouse and Human Pluripotent Stem Cells.</a> PLoS One. 7 (10), e46413 (2012).</li><li>Cheng, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fibronectin+mediates+mesendodermal+cell+fate+decisions.">Fibronectin mediates mesendodermal cell fate decisions.</a> Development. 140, 2587-2596 (2013).</li><li>Kwon, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+regulatory+pathway+involving+Notch1/beta-catenin/Isl1+determines+cardiac+progenitor+cell+fate.">A regulatory pathway involving Notch1/beta-catenin/Isl1 determines cardiac progenitor cell fate.</a> Nature cell biology. 11, 951-957 (2009).</li><li>Shenje, L. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Precardiac+deletion+of+Numb+and+Numblike+reveals+renewal+of+cardiac+progenitors.">Precardiac deletion of Numb and Numblike reveals renewal of cardiac progenitors.</a> Elife. 3, e02164 (2014).</li><li>Grevellec, A., Tucker, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+pharyngeal+pouches+and+clefts:+Development,+evolution,+structure+and+derivatives.">The pharyngeal pouches and clefts: Development, evolution, structure and derivatives.</a> Semin Cell Dev Biol. 21, 325-332 (2010).</li><li>Kwon, C., Cordes, K. R., Srivastava, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Wnt/beta-catenin+signaling+acts+at+multiple+developmental+stages+to+promote+mammalian+cardiogenesis.">Wnt/beta-catenin signaling acts at multiple developmental stages to promote mammalian cardiogenesis.</a> Cell Cycle. 7, 3815-3818 (2008).</li><li>Cho, G. S., Fernandez, L., Kwon, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regenerative+medicine+for+the+heart:+perspectives+on+stem-cell+therapy.">Regenerative medicine for the heart: perspectives on stem-cell therapy.</a> Antioxid Redox Signal. 21, 2018-2031 (2014).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

בסרטון הזה, אנחנו מדגימים איך לבודד וקשתות התרבות הראשונה ובלוע השני של עוברי עכברים ישנים 9.5 ימים. קשתות בלוע הם חולפות, מפולחים בליטות המופיעות בצד craniolateral של עוברים מתפתחים 9, המכילים בלוקים אב תאים-בניין לב רב עוצמה כדי להפוך את הלב במהלך העובר 10,11 -in קשת...

תאי המזודרם בלוע להצמיח חלקים של הלב ושרירי בלוע. במהלך התפתחות עוברית, תאי לב multipotent משדה הלב השני להגר מהמזודרם בלוע ולאכלס את דרכי יצוא לב וחדר ממני, וההתפתחות לא תקינה שלהם קשורה קשר הדוק עם מחלת לב מולדת-הגורם המוביל למומים מולדים ופגם לידה מקרי מוות הקשורים בבני האדם 1-3. מחקרים שנעשו לאחרונה הראו כי המזודרם בלוע תורם לראש שרירים, בנוסף ללב, מה שהופך את המזודרם חלק קריטי בפיתוח סיבולת הלב-craniofacial 4. לפיכך, התהליכים התפתחותיים כוללים אינדוקציה, שגשוג, והבחנה של אבות ראש ולב בהמזודרם בלוע נמצאים תחת החקירה פעילה 5-7. עד לאחרונה, הוא נשאר לא ידוע אם ותאי לב עוברים ללא ציפוי הרחבהבידול ut, נובע בחלקו חוסר המידע על הסביבה הסלולרית שלהם. המחקר שנערך לאחרונה שלנו מצביע על כך שקשתות בלוע לשמש כמייקרו-סביבה לחידוש של אבות לב ושרירים ויכולות להיות מתורבת לשעבר vivo על פני כמה שבועות 8. שיטת explant זה מציעה הזדמנות ייחודית וחדשנית ללימוד הפיתוח של אבות לב וcraniofacial vivo לשעבר.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<colgroup>
		<col span="4" />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr>
			<td>FBS</td>
			<td>Hyclone</td>
			<td>SH30071.03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS + Ca2 + Mg2</td>
			<td>Corning</td>
			<td>21-030-CV</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10cm petri plates</td>
			<td>Fishersci</td>
			<td>FB0875712</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scissor</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td colspan="2">Dissection forceps</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td colspan="2">Serum Free Media:</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IMDM</td>
			<td>Cellgro</td>
			<td>15-016-CV</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ham&#8217;s F12</td>
			<td>Cellgro</td>
			<td>10-080-CV</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>N2-SUPPLEMENT</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>17502-048</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>B27-retinoic acid</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>12587-010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10% BSA (in PBS) &#224; (Invitrogen Cat#. P2489)</td>
			<td>Life Sciences</td>
			<td>P2489</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>100X Glutamine (Gibco Cat.# 25030-081)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>35050-61</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>100X Pen/Strep (Gibco Cat#. 15070-063)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15140-122</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

ex vivo culture of pharyngeal arches to study heart and muscle progenitors and their niche

המזודרם בלוע של עוברים מתפתחים תורם לאזורים רחבים של ראש ושרירי לב. פיתחנו שיטה חדשה ללימוד פיתוח ראש ואב לב תא עם קשתות בלוע (הידוע גם בקשתות branchial) vivo לשעבר. באמצעות שיטה זו, שתארנו לאחרונה כי קשת בלוע השנייה מכילה אבות לב חידוש עצמיים ומשמשת כמייקרו-סביבה להרחבת האבות במהלך התפתחות לב עכבר. התאים שלא עברו התמיינות להישאר ורחב בתוך הקשת, אבל מהר מאוד הפכו cardiomyocytes הפונקציונלי כפי שהם נודדים מהקשת. אנחנו גם דיווחו כי קשת בלוע ראשונה מכילה אבות שריר והוליד myotubes לאחר שעזב את הקשת. הנה, אנחנו מדגימים את ההליך לנתיחה והתרבות לשעבר vivo של קשתות בלוע הראשונות ושנייה מפיתוח עוברי עכבר. השיטה מאפשרת לאדם ללמוד מוליד ראש והלב / dev שרירelopment, כולל cardiomyocyte והיווצרות myotube בפירוט vivo לשעבר.

במהלך פיתוח, ניתן לייחס אבות שריר לב ופנים כפי שהם להתרבות ולהעביר מ-1 ו -2 קשת בלוע ND, להיות ראש ושרירי לב, בהתאמה (איור 1 א, &#39;ו&#39;&#39;). Culturing קשתות בלוע מציע דרך ייחודית ללמוד לב ושרירים פיתוח בפירוט vivo לשעבר. לאחר נתיחה והתקשרות של קשתות בלוע, ת?...

Watch this Scientific Journal Video about Ex Vivo Culture of Pharyngeal Arches to Study Heart and Muscle Progenitors and Their Niche at JoVE.com

Ex Vivo Culture of Pharyngeal Arches to Study Heart and Muscle Progenitors and Their Niche

Here, we present a protocol to culture pharyngeal arches to study the biology of heart and muscle progenitor cells and their microenvironment.

אקס תרבות Vivo של בלוע קשתות לחקר תאי אב לב ושרירים והנישה שלהם

The pharyngeal mesoderm of developing embryos contributes to broad regions of head and heart musculature. We have developed a novel method to study head ...

ex-vivo-culture-pharyngeal-arches-to-study-heart-muscle-progenitors

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Ex Vivo Culture of Pharyngeal Arches to Study Heart and Muscle Progenitors and Their Niche

7.8K Views.  Johns Hopkins University School of Medicine. Here, we present a protocol to culture pharyngeal arches to study the biology of heart and muscle progenitor cells and their microenvironment.

Video: Ex Vivo Culture of Pharyngeal Arches to Study Heart and Muscle Progenitors and Their Niche

Ex Utero Electroporation and Organotypic Slice Culture of Mouse Hippocampal Tissue

Mouse genetics offers a powerful tool determining the role of specific genes during development. Analyzing the resulting phenotypes by immunohistochemical and molecular methods provides information of potential target genes and signaling pathways. To further elucidate specific regulatory mechanisms requires a system allowing the manipulation of only a small number of cells of a specific tissue by either overexpression, ablation or re-introduction of specific genes and follow their fate during development. To achieve this ex utero electroporation of hippocampal structures, especially the dentate gyrus, followed by organotypic slice culture provides such a tool. Using this system to generate mosaic deletions allows determining whether the gene of interest regulates cell-autonomously developmental processes like progenitor cell proliferation or neuronal differentiation. Furthermore it facilitates the rescue of phenotypes by re-introducing the deleted gene or its target genes. In contrast to in utero electroporation the ex utero approach improves the rate of successfully targeting deeper layers of the brain like the dentate gyrus. Overall ex utero electroporation and organotypic slice culture provide a potent tool to study regulatory mechanisms in a semi-native environment mirroring endogenous conditions.

Ex Utero Electroporation and Organotypic Slice Culture of Mouse Hippocampal Tissue

Here we present a protocol providing a tool to examine regulatory mechanisms of specific genes during hippocampal development. Employing ex utero electroporation and organotypic slice culture allows the up- and down-regulation of the expression of genes of interest in single cells and follow their fate during development.

Ex הרחם Electroporation וOrganotypic Slice תרבות של רקמות העכבר בהיפוקמפוס

Mouse genetics offers a powerful tool determining the role of specific genes during development. Analyzing the resulting phenotypes by immunohistochemical ...

Ex Vivo Culture of Chick Cerebellar Slices and Spatially Targeted Electroporation of Granule Cell Precursors

The cerebellar external granule layer (EGL) is the site of the largest transit amplification in the developing brain, and an excellent model for studying neuronal proliferation and differentiation. In addition, evolutionary modifications of its proliferative capability have been responsible for the dramatic expansion of cerebellar size in the amniotes, making the cerebellum an excellent model for evo-devo studies of the vertebrate brain. The constituent cells of the EGL, cerebellar granule progenitors, also represent a significant cell of origin for medulloblastoma, the most prevalent paediatric neuronal tumour. Following transit amplification, granule precursors migrate radially into the internal granular layer of the cerebellum where they represent the largest neuronal population in the mature mammalian brain. In chick, the peak of EGL proliferation occurs towards the end of the second week of gestation. In order to target genetic modification to this layer at the peak of proliferation, we have developed a method for genetic manipulation through ex vivo electroporation of cerebellum slices from embryonic Day 14 chick embryos. This method recapitulates several important aspects of in vivo granule neuron development and will be useful in generating a thorough understanding of cerebellar granule cell proliferation and differentiation, and thus of cerebellum development, evolution and disease.

Ex Vivo Culture of Chick Cerebellar Slices and Spatially Targeted Electroporation of Granule Cell Precursors

The cerebellar external granule layer is the site of the largest transit amplification in the developing brain. Here, we present a protocol to target genetic modification to this layer at the peak of proliferation using ex vivo electroporation and culture of cerebellar slices from embryonic Day 14 chick embryos.

אקס תרבות Vivo של פרוסות המוח הקטן אפרוח וממוקד מרחבית Electroporation של מבשרי תא גרגיר

The cerebellar external granule layer (EGL) is the site of the largest transit amplification in the developing brain, and an excellent model for studying ...

Epicardial Outgrowth Culture Assay and Ex Vivo Assessment of Epicardial-derived Cell Migration

A single layer of epicardial cells lines the heart, providing paracrine factors that stimulate cardiomyocyte proliferation and directly contributing cardiovascular progenitors during development and disease. While a number of factors have been implicated in epicardium-derived cell (EPDC) mobilization, the mechanisms governing their subsequent migration and differentiation are poorly understood. Here, we present in vitro and ex vivo strategies to study EPDC motility and differentiation. First, we describe a method of obtaining primary epicardial cells by outgrowth culture from the embryonic mouse heart. We also introduce a detailed protocol to assess three-dimensional migration of labeled EPDC in an organ culture system. We provide evidence using these techniques that genetic deletion of myocardin-related transcription factors in the epicardium attenuates EPDC migration. This approach serves as a platform to evaluate candidate modifiers of EPDC biology and could be used to develop genetic or chemical screens to identify novel regulators of EPDC mobilization that might be useful for cardiac repair.

Epicardial Outgrowth Culture Assay and Ex Vivo Assessment of Epicardial-derived Cell Migration

Here, we describe methods for isolating primary mouse epicardial cells by an outgrowth culture assay and assessing the functional migration of epicardial-derived cells (EPDC) using an ex vivo heart culture system. These protocols are suitable for identifying genetic and chemical modulators of epicardial epithelial-to-mesenchymal transition (EMT) and motility.

Epicardial תולדת תרבות Assay ו<em&gt; Ex Vivo</em&gt; הערכה של נדידת תאים שמקורם Epicardial

A single layer of epicardial cells lines the heart, providing paracrine factors that stimulate cardiomyocyte proliferation and directly contributing ...

Identification Of Erythromyeloid Progenitors And Their Progeny In The Mouse Embryo By Flow Cytometry

Macrophages are professional phagocytes from the innate arm of the immune system. In steady-state, sessile macrophages are found in adult tissues where they act as front line sentinels of infection and tissue damage. While other immune cells are continuously renewed from hematopoietic stem and progenitor cells (HSPC) located in the bone marrow, a lineage of macrophages, known as resident macrophages, have been shown to be self-maintained in tissues without input from bone marrow HSPCs. This lineage is exemplified by microglia in the brain, Kupffer cells in the liver and Langerhans cells in the epidermis among others. The intestinal and colon lamina propria are the only adult tissues devoid of HSPC-independent resident macrophages. Recent investigations have identified that resident macrophages originate from the extra-embryonic yolk sac hematopoiesis from progenitor(s) distinct from fetal hematopoietic stem cells (HSC). Among yolk sac definitive hematopoiesis, erythromyeloid progenitors (EMP) give rise both to erythroid and myeloid cells, in particular resident macrophages. EMP are only generated within the yolk sac between E8.5 and E10.5 days of development and they migrate to the fetal liver as early as circulation is connected, where they expand and differentiate until at least E16.5. Their progeny includes erythrocytes, macrophages, neutrophils and mast cells but only EMP-derived macrophages persist until adulthood in tissues. The transient nature of EMP emergence and the temporal overlap with HSC generation renders the analysis of these progenitors difficult. We have established a tamoxifen-inducible fate mapping protocol based on expression of the macrophage cytokine receptor Csf1r promoter to characterize EMP and EMP-derived cells in vivo by flow cytometry.

While infiltrating macrophages are continuously recruited to adult tissues from circulating precursors, resident macrophages seed their tissue during development, where they are maintained without further input from progenitors. The progenitors for resident macrophages were recently identified. Here, we present methods for the genetic fate mapping of the resident macrophage progenitors.

זיהוי של אבות אריתרומיאלואידים צאצאיהם בעובר עכבר על ידי זרימת cytometry

Macrophages are professional phagocytes from the innate arm of the immune system. In steady-state, sessile macrophages are found in adult tissues where ...

Isolation, Culture, and Differentiation of Bone Marrow Stromal Cells and Osteoclast Progenitors from Mice

Bone marrow stromal cells (BMSCs) constitute a cell population routinely used as a representation of mesenchymal stem cells in vitro. They reside within the bone marrow cavity alongside hematopoietic stem cells (HSCs), which can give rise to red blood cells, immune progenitors, and osteoclasts. Thus, extractions of cell populations from the bone marrow results in a very heterogeneous mix of various cell populations, which can present challenges in experimental design and confound data interpretation. Several isolation and culture techniques have been developed in laboratories in order to obtain more or less homogeneous populations of BMSCs and HSCs invitro. Here, we present two methods for isolation of BMSCs and HSCs from mouse long bones: one method that yields a mixed population of BMSCs and HSCs and one method that attempts to separate the two cell populations based on adherence. Both methods provide cells suitable for osteogenic and adipogenic differentiation experiments as well as functional assays.

In this article, we present methods to isolate and differentiate bone marrow stromal cells and hematopoietic stem cells from mouse long bones. Two different protocols are presented yielding different cell populations suitable for expansion and differentiation into osteoblasts, adipocytes, and osteoclasts.

בידוד, תרבות, התמיינות של תאי סטרומה מח עצם ו אוסטאוקלסט אבות של עכברים

Bone marrow stromal cells (BMSCs) constitute a cell population routinely used as a representation of mesenchymal stem cells in vitro. They reside within ...

Application of Chronic Stimulation to Study Contractile Activity-induced Rat Skeletal Muscle Phenotypic Adaptations

Skeletal muscle is a highly adaptable tissue, as its biochemical and physiological properties are greatly altered in response to chronic exercise. To investigate the underlying mechanisms that bring about various muscle adaptations, a number of exercise protocols such as treadmill, wheel running, and swimming exercise have been used in the animal studies. However, these exercise models require a long period of time to achieve muscle adaptations, which may be also regulated by humoral or neurological factors, thus limiting their applications in studying the muscle-specific contraction-induced adaptations. Indirect low frequency stimulation (10 Hz) to induce chronic contractile activity (CCA) has been used as an alternative model for exercise training, as it can successfully lead to muscle mitochondrial adaptations within 7 days, independent of systemic factors. This paper details the surgical techniques required to apply the treatment of CCA to the skeletal muscle of rats, for widespread application in future studies.

This protocol describes the use of the chronic contractile activity model of exercise to observe stimulation-induced skeletal muscle adaptations in the rat hindlimb.

יישום של גירוי כרוני ללמוד עיבודים פנוטיפי של שרירי השלד כויץ הנוצרות על-ידי פעילות עכברוש

Skeletal muscle is a highly adaptable tissue, as its biochemical and physiological properties are greatly altered in response to chronic exercise. To ...

In Vivo Imaging of Muscle-tendon Morphogenesis in Drosophila Pupae

Muscles together with tendons and the skeleton enable animals including humans to move their body parts. Muscle morphogenesis is highly conserved from animals to humans. Therefore, the powerful Drosophila model system can be used to study concepts of muscle-tendon development that can also be applied to human muscle biology. Here, we describe in detail how morphogenesis of the adult muscle-tendon system can be easily imaged in living, developing Drosophila pupae. Hence, the method allows investigating proteins, cells and tissues in their physiological environment. In addition to a step-by-step protocol with helpful tips, we provide a comprehensive overview of fluorescently tagged marker proteins that are suitable for studying the muscle-tendon system. To highlight the versatile applications of the protocol, we show example movies ranging from visualization of long-term morphogenetic events &#8211; occurring on the time scale of hours and days &#8211; to visualization of short-term dynamic processes like muscle twitching occurring on time scale of seconds. Taken together, this protocol should enable the reader to design and perform live-imaging experiments for investigating muscle-tendon morphogenesis in the intact organism.

In Vivo Imaging of Muscle-tendon Morphogenesis in Drosophila Pupae

Here, we present an easy-to-use and versatile method to perform live imaging of developmental processes in general and muscle-tendon morphogenesis in particular in living Drosophila pupae.

אין ויוו הדמיה של גיד השריר מורפוגנזה ב דרוזופילה הגלמים

Muscles together with tendons and the skeleton enable animals including humans to move their body parts. Muscle morphogenesis is highly conserved from ...

Generation of First Heart Field-like Cardiac Progenitors and Ventricular-like Cardiomyocytes from Human Pluripotent Stem Cells

The generation of large amounts of functional human pluripotent stem cells-derived cardiac progenitors and cardiomyocytes of defined heart field origin is a pre-requisite for cell-based cardiac therapies and disease modeling. We have recently shown that Id genes are both necessary and sufficient to specify first heart field progenitors during vertebrate development. This differentiation protocol leverages these findings and uses Id1 overexpression in combination with Activin A as potent specifying cues to produce first heart field-like (FHF-L) progenitors. Importantly, resulting progenitors efficiently differentiate (~70&#8211;90%) into ventricular-like cardiomyocytes. Here we describe a detailed method to 1) generate Id1-overexpressing hPSCs and 2) differentiate scalable quantities of cryopreservable FHF-L progenitors and ventricular-like cardiomyocytes.

Here we describe a scalable method, using a simple combination of Activin A and lentivirus-mediated Id1-overexpression, to generate first heart field-like cardiac progenitors and ventricular-like cardiomyocytes from human pluripotent stem cells.

הדור של אבות לב שדה דמויי הלב הראשון, דמוי-חדרית Cardiomyocytes מתאי גזע Pluripotent אנושי

The generation of large amounts of functional human pluripotent stem cells-derived cardiac progenitors and cardiomyocytes of defined heart field origin is ...

Ex Vivo Perfusion of the Rodent Placenta

The placenta is a key organ during pregnancy that serves as a barrier to fetal xenobiotic exposure and mediates the exchange of nutrients for waste. An assay is described here to perfuse an isolated rat placenta and evaluate the maternal-to-fetal translocation of xenobiotics ex vivo. In addition, the evaluation of physiological processes such as fluid flow to the fetus and placental metabolism may be conducted with this methodology. This technique is suitable for evaluating maternal-to-fetal kinetics of pharmaceutical candidates or environmental contaminants. In contrast to current alternative approaches, this methodology allows the evaluation of the isolated maternal-fetal vasculature, with the systemic neural or immune involvement removed, allowing any observed changes in physiological function to be attributable to local factors within the isolated tissue.

Here is presented a protocol of ex vivo maternal-fetal vascular perfusion to enable the administration of a test article into maternal vasculature and to evaluate placental transfer of xenobiotic particles or pharmacological agents in addition to alterations in placental physiology.

לשעבר Vivo Perfusion של השליה מכרסם

The placenta is a key organ during pregnancy that serves as a barrier to fetal xenobiotic exposure and mediates the exchange of nutrients for waste. An ...

Isolation, Culture, Characterization, and Differentiation of Human Muscle Progenitor Cells from the Skeletal Muscle Biopsy Procedure

The use of primary human tissue and cells is ideal for the investigation of biological and physiological processes such as the skeletal muscle regenerative process. There are recognized challenges to working with human primary adult stem cells, particularly human muscle progenitor cells (hMPCs) derived from skeletal muscle biopsies, including low cell yield from collected tissue and a large degree of donor heterogeneity of growth and death parameters among cultures. While incorporating heterogeneity into experimental design requires a larger sample size to detect significant effects, it also allows us to identify mechanisms that underlie variability in hMPC&#160;expansion capacity, and thus allows us to better understand heterogeneity in skeletal muscle regeneration. Novel mechanisms that distinguish the expansion capacity of cultures have the potential to lead to the development of therapies to improve skeletal muscle regeneration.

We present techniques for isolating, culturing, characterizing, and differentiating human primary muscle progenitor cells (hMPCs) obtained from skeletal muscle biopsy tissue. hMPCs obtained and characterized through these methods can be used to subsequently address research questions related to human myogenesis and skeletal muscle regeneration.