קיבלנו סיוע טכני ממתקן הביופולימרים בבית הספר לרפואה של הרווארד לביואנליזה. עבודה זו נתמכה על ידי מענק המחקר של האגודה הלאומית לטרשת נפוצה RG-1707-28516 (H.L.W. ו- S.L.).

כל השיטות המערבות חיות מחקר המתוארות כאן אושרו על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים (IACUC) של בית החולים בריגהם אנד נשים, בית הספר לרפואה של הרווארד.
כל השיטות המערבות את נושאי המחקר בבני אדם המתוארות כאן הן בהתאם להנחיות שנקבעו על ידי ועדת המחקר האנושית של השותפים.
1. איסוף דגימות צואה
<ol><li>Autoclave או להכין צינור מיקרוצנטריפוגה סטרילי ונטול נוקלאז 2 מ"ל עם מכסה בורג לכל נבדק בעל חיים בניסוי.<ol><li>עבור נבדקים אנושיים, ספק מכשיר איסוף דגימות צואה מתאים, ללא נוקלאז וסטרילי עבור כל נושא.</li>
	</ol></li>
	<li>לאסוף 25-100 מ"ג (כ 1-4 כדורי צואה עבור דגימות צואה עכבר) של דגימות צואה מכל נושא בעל חיים בסביבה סטרילית. הערה: שני כדורי צואה או יותר (~ 50 מ"ג או כבד יותר) מועדפים לקבלת RNA בטוהר הגבוה ביותר.<ol><li>השתמש בכל ציוד המגן האישי (PPE) והחומרים הדרושים, לדוגמה: זוג כפפות מעבדה, תרסיס חיטוי ומגבת נייר סטרילית, כדי לעקר את אזור העבודה, שבו מונח נושא המחקר בבעלי חיים, כדי למנוע זיהום דגימת צואה.<ol><li>עבור נבדקים אנושיים, הנחו כל נבדק/אספן מחקר לאסוף 100-200 מ"ג של דגימות צואה בסביבה סטרילית ככל האפשר. השתמש בפעולה סטרילית סטנדרטית והימנע מזיהום דגימת הצואה.</li>
		</ol></li>
	</ol></li>
	<li>אסוף דגימות צואה מכל נושא בעל חיים ישירות לתוך צינור microcentrifuge 2 מ"ל עם מכסה בורג מבלי לגעת במשטחים אחרים כדי למנוע זיהום.<ol><li>עבור נבדקים אנושיים, הנחו כל נבדק לעשות את צרכיו ישירות לתוך מכשיר איסוף ישים המסופק (למשל, ערכת איסוף דגימות צואה סטרילית) כדי למנוע זיהום. הערה: יש להנחות את הנושא להימנע מזיהום על ידי משטחי אסלה, מים, שתן או כל משטח/חפץ אחר שאינו סטרילי.</li>
	</ol></li>
	<li>הקפיאו דגימות צואה שנאספו בצינורות מיקרוצנטריפוגה של 2 מ"ל באופן מיידי בטמפרטורה של -80 מעלות צלזיוס או הניחו בדלי של קרח יבש לקבלת הכמות והאיכות הטובות יותר של RNA לפני חידוש הצואה כמתואר בשלבים הבאים.<ol><li>עבור דגימות צואה אנושיות, aliquot כל דגימה טרייה של 200 מ"ג לתוך צינורות microcentrifuge 2 מ"ל עם כובעי בורג ולהקפיא אותם ב -80 מעלות צלזיוס לפני צואה resuspension כמתואר להלן.<ol><li>לאחסון דגימות צואה שאינן בצינורות מיקרוצנטריפוגה של 2 מ"ל עם מכסי בורג, שוקלים ומעבירים 100-200 מ"ג כל אחת מהדגימות הקפואות לצינורות מיקרוצנטריפוגה נפרדים של 2 מ"ל עם מכסי בורג לפני חידוש הצואה כמתואר להלן. הערה: עבור דגימות צואה אנושיות, הימנע מנטילת יותר מ-200 מ"ג של דגימות צואה לבידוד RNA, שכן הדבר עלול לגרום לקשיים בשלבים הבאים. עם דגימה עמוסה בצינור מיקרוצנטריפוגה של 2 מ"ל, ייתכן שהפאזה המיימית, הפאזה האורגנית והאינטרפאזה לא ייווצרו ויופרדו בבירור. ניתן להשהות את ההליך כאן.</li>
		</ol></li>
	</ol></li>
</ol>2. הכנות של פתרונות לשטוף
<ol><li>הוסף 21 מ"ל של אתנול בדרגה 100% אתנול של האגודה האמריקאית לכימיה כימית (ACS) לתמיסת הכביסה 1 המסופקת בערכת הבידוד miRNA (ראו טבלת חומרים) כדי להגיע לנפח הסופי של 30 מ"ל, כפי שמוצג על הבקבוק. מערבולת עד שהכל מתמוסס בבקבוק.</li>
	<li>הוסף 40 מ"ל של אתנול בדרגה ACS 100% לתמיסת הכביסה 2/3 שסופקה כדי להגיע לנפח הסופי של 50 מ"ל, כפי שמוצג בבקבוק. מערבולת במשך 5 שניות או עד שהתערובת הסופית מעורבבת היטב.</li>
</ol>3. הכנת ציוד וחומרים
<ol><li>רססו את אזור העבודה והציוד, לדוגמה: ספסל המעבדה, אזור העבודה במכסה האדים הכימיים ומדפי צינורות המיקרו-צנטריפוגה, עם תמיסת פירוק ריבונוקלאז (RNase) (לדוגמה, תמיסת פירוק RNase הזמינה מסחרית). כדי למנוע זיהום, יש למרוח עם תמיסת הפירוק RNase על המשטחים בכל מקום ובכל זמן שיימצא לנכון.</li>
	<li>יש לעטות מעיל מעבדה נקי, לעטות מסכת פנים וללבוש כפפות מעבדה מתאימות כדי להגן על הרנ"א בדגימות הצואה מפני נוקלאזות הנמצאות על עור האדם. יש לרסס כפפות עם תמיסת RNase deontamination ולהחליף כפפות לעתים קרובות כדי למנוע זיהום.</li>
	<li>הכינו דלי קרח יבש לדגימות צואה המאוחסנות בטמפרטורה של -80 מעלות צלזיוס כדי למנוע הפשרה לפני ההפשרה מחדש של הצואה ודלי קרח לחומרים, לדוגמה: חומצה-פנול: כלורופורם, להארכת חיי המדף. הערה: ודא שהחומרים כולל המדיה המשמשת בפרוטוקול הם סטריליים ללא זיהום של נוקלאים.</li>
</ol>4. החייאת צואה
<ol><li>יש לשלול 25-100 מ"ג של דגימות צואה ב-600 מיקרו-ליטר של תמיסת מלח סטרילית 1x Dulbecco (DPBS). אזהרה: דגימות צואה צריכות להיות מעובדות באופן מיידי כאשר הן מופשרות מ-80°C- ללא הפשרה חלקית אפילו כדי למזער את שחרורם של RNases ו-RNA תאי, שכן גבישי קרח קורעים תאים פנימיים וחיצוניים כאשר תאים בדגימה מפשירים.<ol><li>הוסף 600 μL של 1x DPBS לצינור microcentrifuge 2 מ"ל עם מכסה בורג המכיל דגימות צואה בטמפרטורת החדר (RT).</li>
		<li>דגירה של תערובת של דגימות צואה שקועה ב 600 μL של 1x DPBS בצינור microcentrifuge 2 מ"ל מכוסה במשך 30 דקות ב RT.</li>
		<li>השהה את התערובת על ידי מחית עם קצה פיפטה של 1 מ"ל ומערבולת היטב עם צינור microcentrifuge 2 מ"ל מכוסה. כדי לייעל ולהגדיל את הכמות והאיכות של RNA, להשעות את התערובת עם homogenizer עם ההגדרה עבור מחזור אחד ב S4000 (או 4000 סל"ד) ו 45 שניות.</li>
	</ol></li>
</ol>5. מיצוי אורגני
אזהרה: השתמש במכסה האדים הכימי המסוכן לשלבים הבאים עד שלב 6 עם שימוש בחומצה-פנול: כלורופורם ואתנול בדרגה ACS 100% בשל רעילותם ודליקותם. שנה PPE לפי הצורך ופעל לפי אמצעי זהירות סטנדרטיים נאותים בעת טיפול בחומרים מסוכנים.
<ol><li>חלץ RNA עם 600 μL של חומצה-פנול: כלורופורם (נפח חומצה-פנול: כלורופורם נדרש שווה לנפח הראשוני של 1x DPBS נוסף בשלב 4.1).<ol><li>הוסף 600 μL של חומצה-פנול: כלורופורם לתרחיף משלב 4.1. הערה: למשוך חומצה-פנול: כלורופורם מהשלב התחתון בבקבוק כאשר השלב העליון מעורבב עם חיץ מימי. אם האינטרפאזה בין שני השלבים האלה מופרעת, אז לחכות ולסגת חומצה-פנול: כלורופורם רק כאשר interphase מחדש מבסס את עצמו כדי למנוע זיהום.</li>
	</ol></li>
	<li>מערבבים את התערובת במשך 60 שניות כדי לערבב היטב. לחלופין, כדי לייעל ולהגדיל את כמות הרנ"א בתפוקה, ערבבו באמצעות הומוגנייזר עם ההגדרה למחזור אחד ב-S4000 וב-45 שניות.</li>
	<li>צנטריפוגה למשך 15 דקות ב-10,000 x גרם ב-RT כדי להפריד בין הפאזות המימיות והאורגניות באמצעות מיקרוצנטריפוגה. לאחר צנטריפוגה, האינטרפאזה צריכה להיות קומפקטית. אם לא, חזור על הצנטריפוגה. הערה: אם האינטרפאזה לא יכולה להיות קומפקטית כפי הרצוי, אולי בגלל יחס לא אחיד של הנפח הראשוני לנפח של חומצה-פנול נוסף: כלורופורם לאחר מספר חזרות של צנטריפוגה, המשך לשחזר את השלב מימי בזהירות רבה יותר כדי למנוע זיהום.</li>
	<li>לשחזר את הפאזה המימית ולהעביר אותה לצינור מיקרוצנטריפוגה חדש של 2 מ"ל עם מכסה ציר (לא מסופק על ידי ערכת בידוד miRNA).<ol><li>הסר את הפאזה המימית (או העליונה) בזהירות מבלי להפריע לפאזה התחתונה והעבר אותה לצינור מיקרוצנטריפוגה חדש בגודל 2 מ"ל עם מכסה ציר. שים לב לנפח שהועבר (לדוגמה, ~ 500 μL). הערה: כאשר האינטרפאזה קומפקטית והפאזה העליונה מופרדת בבירור, ייתכן שיש כמה חלקיקים שיוריים זעירים שצפים בחלק העליון של הפאזה המיימית. פיפטה בזהירות כדי להימנע משאריות אלה ולהתאושש רק בפאזה מימית מופרדת באופן גלוי וברור כדי להבטיח תפוקת RNA איכותית, גם אם ניתן להשיג רק נפח קטן של הפאזה המיימית.</li>
	</ol></li>
</ol>6. בידוד RNA סופי
<ol><li>הוסף 1.25 נפחים של 100% אתנול בדרגה RT ACS לפאזה המימית בצינור מיקרוצנטריפוגה של 2 מ"ל (לדוגמה, הוסף 625 μL של 100% אתנול אם 500 μL של פאזה מימית התאוששו משלב 5.4.). וורטקס 3 שניות.</li>
	<li>טען את תערובת הפאזה/אתנול המימית דרך מחסנית המסנן המסופקת בערכת הבידוד miRNA.<ol><li>עבור כל דגימה, הנח את מחסנית המסנן באחת מצינורות האיסוף המסופקים על ידי הערכה.<ol><li>פיפטה וטעינה של 600 μL של תערובת פאזה/אתנול מימית לתוך מחסנית המסנן. הערה: מערבבים את התערובת לזמן קצר כדי לערבב היטב את האתנול עם פאזה מימית לפני הפיפטה. לא ניתן לטעון יותר מ-700 μL של תערובת פאזה/אתנול מימית בכל פעם.</li>
		</ol></li>
		<li>צנטריפוגה בגודל 10,000 x גרם למשך 90 שניות כדי לסנן את התערובת. סיבוב במהירות גבוהה יותר עלול לגרום נזק למסנן.</li>
		<li>השליכו את התסנין וחזרו על שלבים 6.2.1 עד 6.2.2 עד שכל התערובת תסונן דרך אותה קרום מסנן ביישומים עוקבים. יש לשמור ולעשות שימוש חוזר באותו צינור איסוף לשטיפה בשלבים הבאים.</li>
		<li>שטפו את המסנן עם 700 μL של miRNA Wash Solution 1. אזהרה: תמיסת רחצה miRNA 1 מכילה גואנידין תיוציאנט שעלול לגרום לגירוי בעור ולנזק חמור לעיניים. ללבוש PPE הכרחי, למשל: כפפות, מגן פנים, מעיל מעבדה מגן. החלף כפפות לעתים קרובות לפי הצורך.<ol><li>החל 700 μL של miRNA Wash Solution 1, פתרון העבודה שהוכן עם אתנול 100% בדרגה ACS, לתוך מחסנית המסנן.</li>
			<li>צנטריפוגה למשך 60 שניות לסינון תמיסת הכביסה miRNA 1 דרך מחסנית המסנן.</li>
			<li>השליכו את התסנין מצינור האיסוף והכניסו את אותה מחסנית מסנן לאותה שפופרת איסוף.</li>
		</ol></li>
		<li>שטפו את המסנן עם Wash Solution 2/3 פעם אחת כל אחד בנפחים של 700 μL, 500 μL ו-250 μL ברציפות.<ol><li>החל 700 μL של Wash Solution 2/3, פתרון העבודה שהוכן עם אתנול 100% בדרגה ACS, לתוך מחסנית המסנן.<ol><li>צנטריפוגה ב-10,000 x גרם למשך דקה.</li>
				<li>השליכו את התסנין מצינור האיסוף והכניסו את אותה מחסנית מסנן לאותה שפופרת איסוף.</li>
			</ol></li>
			<li>יש למרוח 500 μL של תמיסת כביסה 2/3 לתוך מחסנית המסנן.<ol><li>צנטריפוגה ב-10,000 x גרם למשך דקה.</li>
				<li>השליכו את התסנין מצינור האיסוף והכניסו את אותה מחסנית מסנן לאותה שפופרת איסוף.</li>
			</ol></li>
			<li>החל 250 μL של תמיסת כביסה 2/3 לתוך מחסנית המסנן.<ol><li>צנטריפוגה ב-10,000 x גרם למשך דקה.</li>
				<li>השליכו את התסנין מצינור האיסוף.</li>
			</ol></li>
			<li>העבירו את מחסנית המסנן לצינור איסוף חדש וסובבו את המכלול למשך 5 דקות כדי להסיר שאריות נוזל מהמסנן.</li>
		</ol></li>
	</ol></li>
</ol>7. רנ"א אלוטי עם 50 μL מים נטולי נוקלאז
<ol><li>העבר את מחסנית המסנן לצינור איסוף חדש. פיפטה 50 μL של מים ללא נוקלאז למרכז המסנן ומכסה את צינור האיסוף.<ol><li>דגירה ב- RT במשך 10 דקות.</li>
		<li>סובבו במשך 5 דקות ב-8,000 x g כדי לשחזר RNA לתוך צינור האיסוף החדש.</li>
		<li>לקבוע את הריכוז והטוהר של RNA צואה משוחזר באמצעות פלואורומטר. RNA צואה משוחזר יכול להיות מאוחסן ב -80 מעלות צלזיוס.</li>
	</ol></li>
</ol>

<ol><li>Das, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+extracellular+RNA+communication+consortium%3A+Establishing+foundational+knowledge+and+technologies+for+extracellular+RNA+research%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">The extracellular RNA communication consortium: Establishing foundational knowledge and technologies for extracellular RNA research.</a> Cell. 177 (2), 231-242 (2019).</li>
<li>Ahmed, F. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diagnostic+microRNA+markers+for+screening+sporadic+human+colon+cancer+and+active+ulcerative+colitis+in+stool+and+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Genomics+%26+Proteomics%22%5BJournal%5D)">Diagnostic microRNA markers for screening sporadic human colon cancer and active ulcerative colitis in stool and tissue.</a> Cancer Genomics & Proteomics. 6 (5), 281-295 (2009).</li>
<li>Liu, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+host+shapes+the+gut+microbiota+via+fecal+microRNA%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Host+%26+Microbe%22%5BJournal%5D)">The host shapes the gut microbiota via fecal microRNA.</a> Cell Host & Microbe. 19 (1), 32-43 (2016).</li>
<li>Viennois, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Host-derived+fecal+microRNAs+can+indicate+gut+microbiota+healthiness+and+ability+to+induce+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Theranostics%22%5BJournal%5D)">Host-derived fecal microRNAs can indicate gut microbiota healthiness and ability to induce inflammation.</a> Theranostics. 9 (15), 4542-4557 (2019).</li>
<li>Liu, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oral+administration+of+miR-30d+from+feces+of+MS+patients+suppresses+MS-like+symptoms+in+mice+by+expanding+Akkermansia+muciniphila%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Host+%26+Microbe%22%5BJournal%5D)">Oral administration of miR-30d from feces of MS patients suppresses MS-like symptoms in mice by expanding Akkermansia muciniphila.</a> Cell Host & Microbe. 26 (6), 779-794 (2019).</li>
<li>Masotti, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantification+of+small+non-coding+RNAs+allows+an+accurate+comparison+of+miRNA+expression+profiles%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedicine+%26+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Quantification of small non-coding RNAs allows an accurate comparison of miRNA expression profiles.</a> Journal of Biomedicine & Biotechnology. 2009, 659028(2009).</li>
<li>Green, M. R., Sambrook, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+to+win+the+battle+with+RNase%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Protocols%22%5BJournal%5D)">How to win the battle with RNase.</a> Cold Spring Harbor Protocols. 2019 (2), 101857(2019).</li>
<li>Franzosa, E. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relating+the+metatranscriptome+and+metagenome+of+the+human+gut%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Relating the metatranscriptome and metagenome of the human gut.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 111 (22), 2329-2338 (2014).</li>
<li>Wohnhaas, C. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fecal+microRNAs+show+promise+as+noninvasive+Crohn%27s+disease+biomarkers%5BTitle%5D)+AND+%22Crohn%27s+%26+Colitis%22%5BJournal%5D)">Fecal microRNAs show promise as noninvasive Crohn's disease biomarkers.</a> Crohn's & Colitis. 2 (1), 003(2020).</li>
<li>Tomkovich, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+colon+mucosal+biofilms+and+murine+host+communicate+via+altered+mRNA+and+microRNA+expression+during+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22mSystems%22%5BJournal%5D)">Human colon mucosal biofilms and murine host communicate via altered mRNA and microRNA expression during cancer.</a> mSystems. 5 (1), (2020).</li>
<li>Tarallo, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Altered+fecal+small+RNA+profiles+in+colorectal+cancer+reflect+gut+microbiome+composition+in+stool+samples%5BTitle%5D)+AND+%22mSystems%22%5BJournal%5D)">Altered fecal small RNA profiles in colorectal cancer reflect gut microbiome composition in stool samples.</a> mSystems. 4 (5), 70(2019).</li>
<li>Xing, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Breed+differences+in+the+expression+levels+of+gga-miR-222a+in+laying+hens+influenced+H2S+production+by+regulating+methionine+synthase+genes+in+gut+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Research+Square%22%5BJournal%5D)">Breed differences in the expression levels of gga-miR-222a in laying hens influenced H2S production by regulating methionine synthase genes in gut bacteria.</a> Research Square. , (2020).</li>
<li>Teng, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plant-derived+exosomal+microRNAs+shape+the+gut+microbiota%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Host+%26+Microbe%22%5BJournal%5D)">Plant-derived exosomal microRNAs shape the gut microbiota.</a> Cell Host & Microbe. 24 (5), 637-652 (2018).</li>
<li>Moloney, G. M., Viola, M. F., Hoban, A. E., Dinan, T. G., Cryan, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Faecal+microRNAs%3A+indicators+of+imbalance+at+the+host-microbe+interface%5BTitle%5D)+AND+%22Beneficial+Microbes%22%5BJournal%5D)">Faecal microRNAs: indicators of imbalance at the host-microbe interface.</a> Beneficial Microbes. , 1-10 (2017).</li>
<li>Giannoukos, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+and+robust+RNA-seq+process+for+cultured+bacteria+and+complex+community+transcriptomes%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biology%22%5BJournal%5D)">Efficient and robust RNA-seq process for cultured bacteria and complex community transcriptomes.</a> Genome Biology. 13 (3), 23(2012).</li>
</ol>

המחברים מצהירים על היעדר אינטרסים כספיים רלוונטיים או מהותיים הקשורים לשיטת המחקר המתוארת במאמר פרוטוקול זה.

חשוב להשתמש בטכניקה נטולת RNase כדי למנוע זיהום RNase במהלך הבידוד7. לאחר צנטריפוגה והיווצרות אינטרפאזה קומפקטית, חשוב להימנע מהאינטרפאזה, הפאזה התחתונה ומזיהום החלקיקים המרחף על החלק העליון של הפאזה המימית בעת שחזור הפאזה המיימית. בנוסף, מתווספים שני שלבי שטיפה עם 500 μL ו- 250 μL Wash S...

רנ"א חוץ-תאי מקבל הכרה כגורם משמעותי המתווך תהליכים ביולוגיים רבים1. RNA חוץ-תאי בצואה דווח לראשונה בשנת 2008 כסמן לסרטן המעי הגס ולקוליטיס כיבית פעילה2, והוא התגלה לאחרונה כמרכיב נורמלי של לומן המעיים והצואה ומתווך תקשורת בין חיידקים מארחים 3,4,5. מטרת פרוטוקול בידוד RNA זה היא לחלץ RNA חוץ-תאי באיכות גבוהה מדגימות צואה שנאספו מנבדקים בעלי חיים ובני אדם. הפרוטוקול הותאם מתוך ערכת בידוד miRNA מסחרית. הרנ"א הנרכש מנוצל לניתוחים במורד הזרם כגון ריצוף RNA, RT-PCR ומיקרו-מערך. הפרוטוקול כולל מספר טיפים חשובים ושימושיים כדי למקסם את הכמות והאיכות של RNA שנמצא בצואה של בעלי חיים ובני אדם. הסיבה לפתח ולייעל שיטה זו של בידוד RNA (כולל מיקרו-רנ"א) היא להקטין את הרנ"א המיקרוביאלי בצואה, להגביל את המשתנים במחקרים ולנתח את הרכב הרנ"א במעיים מבלי לקחת בחשבון גורמים מבלבלים שונים ומקורות זיהום. יש לציין שבידוד רנ"א זה ממזער את שחרור הרנ"א מתא חי וממיקרובים חיים (רנ"א תאי). הוא מתמקד ב-RNA חוץ-תאי ששוחררו על-ידי תאי מעיים או נרכשו באמצעות צריכת מזון. בעיקרון, שיטה זו אינה מתאימה למחקרים שבהם נחקר התעתיק המיקרוביאלי.

<table><tbody><tr><td>Acid-Phenol: Chloroform, pH 4.5 (with IAA, 125:24:1)</td><td>Thermo Fischer Scientific</td><td>AM9720</td><td></td></tr><tr><td>DPBS, no calcium, no magnesium</td><td>Thermo Fischer Scientific</td><td>14190-144</td><td></td></tr><tr><td>Gloves</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microcentrifuge</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>mirVana miRNA Isolation Kit</td><td>Thermo Fischer Scientific</td><td>AM1561</td><td></td></tr><tr><td>Nuclease-Free microcentrifuge tubes (1.5 mL, 2 mL)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nuclease-Free Water (Not DEPC-treated)</td><td>Thermo Fischer Scientific</td><td>AM9937</td><td></td></tr><tr><td>Pipettor and Nuclease-Free Pipette tips (with filter)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>PowerLyzer 24 Homogenizer</td><td>QIAGEN</td><td>13155</td><td></td></tr><tr><td>RNaseZap RNase Decontamination Solution</td><td>Thermo Fischer Scientific</td><td>AM9780</td><td></td></tr><tr><td>Vortex Shaker</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

fecal (micro) rna isolation

זה הולך ומתברר כי RNA קיים לומן המעיים וצואה בבעלי חיים ובני אדם. הפרוטוקול המתואר להלן מבודד את סך הרנ"א כולל מיקרו-רנ"א מדגימות צואה של נבדקים בעלי חיים ובני אדם. המטרה היא לבודד RNA כולל עם טוהר וכמות גבוהים עבור ניתוחים במורד הזרם כגון ריצוף RNA, RT-PCR ומיקרו-מערך. היתרונות של פרוטוקול אופטימלי זה בבידוד miRNA הם היכולות של בידוד מוצרי RNA מטוהרים מאוד עם שלבי שטיפה נוספים שתוארו, כמות מוגברת של RNA המתקבלת בשיטה משופרת בחידוש הדגימה, וטיפים חשובים של פירוק. מגבלה אחת היא חוסר היכולת לעבד ולטהר מדגם גדול יותר של יותר מ -200 מ"ג מכיוון שגודלי דגימה אלה יגרמו לקושי בהיווצרות ברורה של האינטרפאזה. כתוצאה מכך, גודל המדגם הגדול עלול לזהם את הפאזה המימית שיש לחלץ כמתואר בפרוטוקול עם עניינים אורגניים המשפיעים על איכות הרנ"א המבודד בסופו של דבר. עם זאת, רנ"א מבודד מדגימה של עד 200 מ"ג מספיק לרוב הניתוחים במורד הזרם.

רנ"א מייצגים בודדו מדגימות של 50 מ"ג צואת עכברים (2 כדורי צואה של עכברים) ו-100 מ"ג של דגימות צואה אנושית בהתאמה, ונלקחו במים נטולי נוקלאז של 50 μL. מניתוח ספקטרופוטומטר של הריכוז עולה כי כמות כוללת של 49 מיקרוגרם ו-16 מיקרוגרם RNA בודדו בהתאמה (טבלה 1). טוהר הרנ"א היה גבוה כפי שצוין על ידי יחס A2...

Watch this Scientific Journal Video about Fecal micro RNA Isolation at JoVE.com

Fecal micro RNA Isolation

פרוטוקול זה מבודד RNA כולל באיכות גבוהה מדגימות צואה של נבדקים בעלי חיים ובני אדם. ערכת בידוד miRNA מסחרית משמשת עם הסתגלות משמעותית לבידוד RNA טהור עם כמות ואיכות אופטימליות. מבודדי ה-RNA טובים לרוב מבחני ה-RNA במורד הזרם, כגון ריצוף, מיקרו-מערך ו-RT-PCR.

צואה (מיקרו) בידוד RNA

It is becoming clear that RNA exists in the gut lumen and feces in animals and humans. The protocol described below isolates total RNA including microRNAs ...

Research

Education

JoVE Core

JoVE Journal

Medical-Surgical Nursing

Immunology and Infection

Unit 1

Fecal (micro) RNA Isolation

Diagnostic and Radiological Studies of the GI System

SCIENTISTS IN ACTION

4.7K Views.  Brigham and Women's Hospital and Harvard Medical School. פרוטוקול זה מבודד RNA כולל באיכות גבוהה מדגימות צואה של נבדקים בעלי חיים ובני אדם. ערכת בידוד miRNA מסחרית משמשת עם הסתגלות משמעותית לבידוד RNA טהור עם כמות ואיכות אופטימליות. מבודדי ה-RNA טובים לרוב מבחני ה-RNA במורד הזרם, כגון ריצוף, מיקרו-מערך ו-RT-PCR.

Video: Fecal micro RNA Isolation

Isolation of Cognate RNA-protein Complexes from Cells Using Oligonucleotide-directed Elution

Ribonucleoprotein particles direct the biogenesis and post-transcriptional regulation of all mRNAs through distinct combinations of RNA binding proteins. They are composed of position-dependent, cis-acting RNA elements and unique combinations of RNA binding proteins. Defining the composition of a specific RNP is essential to achieving a fundamental understanding of gene regulation. The isolation of a select RNP is akin to finding a needle in a haystack. Here, we demonstrate an approach to isolate RNPs associated at the 5' untranslated region of a select mRNA in asynchronous, transfected cells. This cognate RNP has been demonstrated to be necessary for the translation of select viruses and cellular stress-response genes.
The demonstrated RNA-protein co-precipitation protocol is suitable for the downstream analysis of protein components through proteomic analyses, immunoblots, or suitable biochemical identification assays. This experimental protocol demonstrates that DHX9/RNA helicase A is enriched at the 5' terminus of cognate retroviral RNA and provides preliminary information for the identification of its association with cell stress-associated huR and junD cognate mRNAs.

This manuscript describes an approach to isolate select cognate RNPs formed in eukaryotic cells via a specific oligonucleotide-directed enrichment. We demonstrate the applicability of this approach by isolating a cognate RNP bound to the retroviral 5' untranslated region that is composed of DHX9/RNA helicase A.

בידוד של קומפלקסים RNA חלבון מאותו מקור מתאי שימוש Elution oligonucleotide מכוונת

Ribonucleoprotein particles direct the biogenesis and post-transcriptional regulation of all mRNAs through distinct combinations of RNA binding proteins. ...

Biochemistry

Novel RNA-Binding Proteins Isolation by the RaPID Methodology

RNA-binding proteins (RBPs) play important roles in every aspect of RNA metabolism and regulation. Their identification is a major challenge in modern biology. Only a few in vitro and in vivo methods enable the identification of RBPs associated with a particular target mRNA. However, their main limitations are the identification of RBPs in a non-cellular environment (in vitro) or the low efficiency isolation of RNA of interest (in vivo). An RNA-binding protein purification and identification (RaPID) methodology was designed to overcome these limitations in yeast and enable efficient isolation of proteins that are associated in vivo. To achieve this, the RNA of interest is tagged with MS2 loops, and co-expressed with a fusion protein of an MS2-binding protein and a streptavidin-binding protein (SBP). Cells are then subjected to crosslinking and lysed, and complexes are isolated through streptavidin beads. The proteins that co-purify with the tagged RNA can then be determined by mass spectrometry. We recently used this protocol to identify novel proteins associated with the ER-associated PMP1 mRNA. Here, we provide a detailed protocol of RaPID, and discuss some of its limitations and advantages.

RNA-protein interactions lie at the heart of many cellular processes. Here, we describe an in vivo method to isolate specific RNA and identify novel proteins that are associated with it. This could shed new light on how RNAs are regulated in the cell.

RNA מחייב רומן בידוד חלבונים לפי שיטת RAPID

RNA-binding proteins (RBPs) play important roles in every aspect of RNA metabolism and regulation. Their identification is a major challenge in modern ...

Genetics

Simultaneous DNA-RNA Extraction from Coastal Sediments and Quantification of 16S rRNA Genes and Transcripts by Real-time PCR

Real Time Polymerase Chain Reaction also known as quantitative PCR (q-PCR) is a widely used tool in microbial ecology to quantify gene abundances of taxonomic and functional groups in environmental samples. Used in combination with a reverse transcriptase reaction (RT-q-PCR), it can also be employed to quantify gene transcripts. q-PCR makes use of highly sensitive fluorescent detection chemistries that allow quantification of PCR amplicons during the exponential phase of the reaction. Therefore, the biases associated with &#39;end-point&#39; PCR detected in the plateau phase of the PCR reaction are avoided. A protocol to quantify bacterial 16S rRNA genes and transcripts from coastal sediments via real-time PCR is provided. First, a method for the co-extraction of DNA and RNA from coastal sediments, including the additional steps required for the preparation of DNA-free RNA, is outlined. Second, a step-by-step guide for the quantification of 16S rRNA genes and transcripts from the extracted nucleic acids via q-PCR and RT-q-PCR is outlined. This includes details for the construction of DNA and RNA standard curves. Key considerations for the use of RT-q-PCR assays in microbial ecology are included.

A protocol to quantify bacterial 16S rRNA genes and transcripts from coastal sediments via real-time PCR is provided. The methodology includes the co-extraction of DNA and RNA; preparation of DNA-free RNA; and 16S rRNA gene and transcript quantification via RT-q-PCR, including standard curve construction.

הפקת DNA-RNA סימולטני החוף משקעים וכימות של 16S rRNA גנים תעתיקי ידי בזמן אמת PCR

Real Time Polymerase Chain Reaction also known as quantitative PCR (q-PCR) is a widely used tool in microbial ecology to quantify gene abundances of ...

Environment

Avian Influenza Surveillance with FTA  Cards: Field Methods, Biosafety, and Transportation Issues Solved

Avian Influenza Viruses (AIVs) infect many mammals, including humans1. These AIVs are diverse in their natural hosts, harboring almost all possible viral subtypes2. Human pandemics of flu originally stem from AIVs3. Many fatal human cases during the H5N1 outbreaks in recent years were reported. Lately, a new AIV related strain swept through the human population, causing the 'swine flu epidemic'4. Although human trading and transportation activity seems to be responsible for the spread of highly pathogenic strains5, dispersal can also partly be attributed to wild birds6, 7. However, the actual reservoir of all AIV strains is wild birds.
In reaction to this and in face of severe commercial losses in the poultry industry, large surveillance programs have been implemented globally to collect information on the ecology of AIVs, and to install early warning systems to detect certain highly pathogenic strains8-12. Traditional virological methods require viruses to be intact and cultivated before analysis. This necessitates strict cold chains with deep freezers and heavy biosafety procedures to be in place during transport. Long-term surveillance is therefore usually restricted to a few field stations close to well equipped laboratories. Remote areas cannot be sampled unless logistically cumbersome procedures are implemented. These problems have been recognised13, 14 and the use of alternative storage and transport strategies investigated (alcohols or guanidine)15-17. Recently, Kraus et al.18 introduced a method to collect, store and transport AIV samples, based on a special filter paper. FTA cards19 preserve RNA on a dry storage basis20 and render pathogens inactive upon contact21. This study showed that FTA cards can be used to detect AIV RNA in reverse-transcription PCR and that the resulting cDNA could be sequenced and virus genes and determined.
In the study of Kraus et al.18 a laboratory isolate of AIV was used, and samples were handled individually. In the extension presented here, faecal samples from wild birds from the duck trap at the Ottenby Bird Observatory (SE Sweden) were tested directly to illustrate the usefulness of the methods under field conditions. Catching of ducks and sample collection by cloacal swabs is demonstrated. The current protocol includes up-scaling of the work flow from single tube handling to a 96-well design. Although less sensitive than the traditional methods, the method of FTA cards provides an excellent supplement to large surveillance schemes. It allows collection and analysis of samples from anywhere in the world, without the need to maintaining a cool chain or safety regulations with respect to shipping of hazardous reagents, such as alcohol or guanidine.

A method to preserve, detect and sequence RNA from Avian Influenza Viruses was validated and extended using natural faecal samples from birds. This technique removes the necessity of maintaining a cool chain and handling of infectious viruses and can be applied in a 96-well high-throughput setup.

מעקבים שפעת העופות FTA עם כרטיסי: שיטות שדה, biosafety, וסוגיות התחבורה נפתר

Avian Influenza Viruses (AIVs) infect many mammals, including humans1. These AIVs are diverse in their natural hosts, harboring almost all possible viral ...

Detection and Genogrouping of Noroviruses from Children's Stools By Taqman One-step RT-PCR

Noroviruses (NoVs) are the leading cause of outbreaks of sporadic acute gastroenteritis worldwide in humans of all ages. They are important cause of hospitalizations in children with a public health impact similar to that of Rotavirus. NoVs are RNA viruses of great genetic diversity and there is a continuous appearance of new strains. Five genogroups are recognized; GI and GII with their many genotypes and subtypes being the most important for human infection. However, the diagnosis of these two genotypes remains problematic, delaying diagnosis and treatment. 1, 2, 3
For RNA extraction from stool specimens the most commonly used method is the QIAmp Viral RNA commercial kit from Qiagen. This method combines the binding properties of a silica gel membrane, buffers that control RNases and provide optimum binding of the RNA to the column together with the speed of microspin. This method is simple, fast and reliable and is carried out in a few steps that are detailed in the description provided by the manufacturer. 
 Norovirus is second only to rotavirus as the most common cause of diarrhea. Norovirus diagnosis should be available in all studies on pathogenesis of diarrhea as well as in outbreaks or individual diarrhea cases. At present however norovirus diagnosis is restricted to only a few centers due to the lack of simple methods of diagnosis. This delays diagnosis and treatment 1, 2, 3. In addition, due to costs and regulated transportation of corrosive buffers within and between countries use of these manufactured kits poses logistical problems. As a result, in this protocol we describe an alternative, economic, in-house method which is based on the original Boom et al. method4 which uses the nucleic acid binding properties of silica particles together with the anti-nuclease properties of guanidinium thiocyanate.
For the detection and genogrouping (GI and GII) of NoVs isolates from stool specimens, several RT-PCR protocols utilizing different targets have been developed. The consensus is that an RT-PCR using TaqMan chemistry would be the best molecular technique for diagnosis, because it combines high sensitivity, specificity and reproducibility with high throughput and ease of use. Here we describe an assay targeting the open reading frame 1 (ORF1)-ORF2 junction region; the most conserved region of the NoV genome and hence most suitable for diagnosis. For further genetic analysis a conventional RT-PCR that targets the highly variable N-terminal-shell from the major protein of the capsid (Region C) using primers originally described by Kojima et al. 5 is detailed. Sequencing of the PCR product from the conventional PCR enables the differentiation of genotypes belonging to the GI and GII genogroups.

A One-Step RT-PCR assay for detection and genogroup identification of Norovirus isolates from children&#x2019;s stools, that utilizes primers and TaqMan probes specific to the open reading frame 1 (ORF1)-ORF2 junction region, the most conserved region of the Norovirus genome is described. A non-commercial, cost-effective RNA extraction method is detailed.

איתור Genogrouping של Noroviruses מ שרפרפים לילדים עד Taqman צעד אחד RT-PCR

Noroviruses (NoVs) are the leading cause of outbreaks of sporadic acute gastroenteritis worldwide in humans of all ages. They are important cause of ...

Medicine

RNA Isolation of Pseudomonas aeruginosa Colonizing the Murine Gastrointestinal Tract

Pseudomonas aeruginosa (PA) infections result in significant morbidity and mortality in hosts with compromised immune systems, such as patients with leukemia, severe burn wounds, or organ transplants1. In patients at high-risk for developing PA bloodstream infections, the gastrointestinal (GI) tract is the main reservoir for colonization2, but the mechanisms by which PA transitions from an asymptomatic colonizing microbe to an invasive, and often deadly, pathogen are unclear. Previously, we performed in vivo transcription profiling experiments by recovering PA mRNA from bacterial cells residing in the cecums of colonized mice 3 in order to identify changes in bacterial gene expression during alterations to the host&#x2019;s immune status.
As with any transcription profiling experiment, the rate-limiting step is in the isolation of sufficient amounts of high quality mRNA. Given the abundance of enzymes, debris, food residues, and particulate matter in the GI tract, the challenge of RNA isolation is daunting. Here, we present a method for reliable and reproducible isolation of bacterial RNA recovered from the murine GI tract. This method utilizes a well-established murine model of PA GI colonization and neutropenia-induced dissemination4. Once GI colonization with PA is confirmed, mice are euthanized and cecal contents are recovered and flash frozen. RNA is then extracted using a combination of mechanical disruption, boiling, phenol/chloroform extractions, DNase treatment, and affinity chromatography. Quantity and purity are confirmed by spectrophotometry (Nanodrop Technologies) and bioanalyzer (Agilent Technologies) (Fig 1). This method of GI microbial RNA isolation can easily be adapted to other bacteria and fungi as well.

RNA Isolation of Pseudomonas aeruginosa Colonizing the Murine Gastrointestinal Tract

A reliable method for the RNA isolation of Pseudomonas aeruginosa recovered from murine cecums is described. The RNA recovered is of sufficient quantity and quality for subsequent qPCR, transcription profiling, and RNA Seq experiments. This technique can be adapted for RNA isolation of other intestinal microbes.

RNA בידוד Pseudomonas aeruginosa מיישבים את מערכת העיכול Murine

Pseudomonas aeruginosa (PA) infections result in significant morbidity and mortality in hosts with compromised immune systems, such as patients with ...

An Oligonucleotide-based Tandem RNA Isolation Procedure to Recover Eukaryotic mRNA-Protein Complexes

RNA-binding proteins (RBPs) play key roles in the post-transcriptional control of gene expression. Therefore, biochemical characterization of mRNA-protein complexes is essential to understanding mRNA regulation inferred by interacting proteins or non-coding RNAs. Herein, we describe a tandem RNA isolation procedure (TRIP) that enables the purification of endogenously formed mRNA-protein complexes from cellular extracts. The two-step protocol involves the isolation of polyadenylated mRNAs with antisense oligo(dT) beads and subsequent capture of an mRNA of interest with 3&#39;-biotinylated 2&#39;-O-methylated antisense RNA oligonucleotides, which can then be isolated with streptavidin beads. TRIP was used to recover in vivo crosslinked mRNA-ribonucleoprotein (mRNP) complexes from yeast, nematodes and human cells for further RNA and protein analysis. Thus, TRIP is a versatile approach that can be adapted to all types of polyadenylated RNAs across organisms to study the dynamic re-arrangement of mRNPs imposed by intracellular or environmental cues.

A tandem RNA isolation procedure (TRIP) for recovery of endogenously formed mRNA-protein complexes is described. Specifically, RNA-protein complexes are crosslinked in vivo, polyadenylated RNAs are isolated from extracts with oligo(dT) beads, and particular mRNAs are captured with modified RNA antisense oligonucleotides. Proteins bound to mRNAs are detected by immunoblot analysis.

הליך בידוד RNA טנדם מבוססי Oligonucleotide לשחזר את מתחמי ה-mRNA האיקריוטים-חלבון

RNA-binding proteins (RBPs) play key roles in the post-transcriptional control of gene expression. Therefore, biochemical characterization of mRNA-protein ...

Isolation of Viral Replication Compartment-enriched Sub-nuclear Fractions from Adenovirus-infected Normal Human Cells

During infection of human cells by adenovirus (Ad), the host cell nucleus is dramatically reorganized, leading to formation of nuclear microenvironments through the recruitment of viral and cellular proteins to sites occupied by the viral genome. These sites, called replication compartments (RC), can be considered viral-induced nuclear domains where the viral genome is localized and viral and cellular proteins that participate in replication, transcription and post-transcriptional processing are recruited. Moreover, cellular proteins involved in the antiviral response, such as tumor suppressor proteins, DNA damage response (DDR) components and innate immune response factors are also co-opted to RC. Although RC seem to play a crucial role to promote an efficient and productive replication cycle, a detailed analysis of their composition and associated activities has not been made. To facilitate the study of adenoviral RC and potentially those from other DNA viruses that replicate in the cell nucleus, we adapted a simple procedure based on velocity gradients to isolate Ad RC and established a cell-free system amenable to conduct morphological, functional and compositional studies of these virus-induced subnuclear structures, as well as to study their impact on host-cell interactions.

We provide a novel strategy to isolate viral replication compartments (RC) from adenovirus (Ad)-infected human cells. This approach represents a cell-free system that can help to elucidate the molecular mechanisms regulating viral genome replication and expression as well as regulation of viral-host interactions established at the RC.

בידוד של שברים תת-גרעיניים מועשרים-תא ויראלי שכפול מתאים נורמלים אדם נגוע Adenovirus

During infection of human cells by adenovirus (Ad), the host cell nucleus is dramatically reorganized, leading to formation of nuclear microenvironments ...

Vampiric Isolation of Extracellular Fluid from Caenorhabditis elegans

The genetically tractable model organism C. elegans has provided insights into a myriad of biological questions, enabled by its short generation time, ease of growth and small size. This small size, though, has disallowed a number of technical approaches found in other model systems. For example, blood transfusions in mammalian systems and grafting techniques in plants enable asking questions of circulatory system composition and signaling. The circulatory system of the worm, the pseudocoelom, has until recently been impossible to assay directly. To answer questions of intercellular signaling and circulatory system composition C. elegans researchers have traditionally turned to genetic analysis, cell/tissue specific rescue, and mosaic analysis. These techniques provide a means to infer what is happening between cells, but are not universally applicable in identification and characterization of extracellular molecules. Here we present a newly developed technique to directly assay the pseudocoelomic fluid of C. elegans. The technique begins with either genetic or physical manipulation to increase the volume of extracellular fluid. Afterward the animals are subjected to a vampiric reverse microinjection technique using a microinjection rig that allows fine balance pressure control. After isolation of extracellular fluid, the collected fluid can be assayed by transfer into other animals or by molecular means. To demonstrate the effectiveness of this technique we present a detailed approach to assay a specific example of extracellular signaling molecules, long dsRNA during a systemic RNAi response. Although characterization of systemic RNAi is a proof of principle example, we see this technique as being adaptable to answer a variety of questions of circulatory system composition and signaling.

Vampiric Isolation of Extracellular Fluid from Caenorhabditis elegans

The model organism C. elegans uses pseudocoelomic fluid as a passive circulatory system. Direct assay of this fluid has not been previously possible. Here we present a novel technique to directly assay the extracellular space, and use systemic silencing signals during an RNAi response as a proof of principle example.

בידוד ערפדים של נוזלים מתאיים<em&gt; Elegans Caenorhabditis</em

The genetically tractable model organism C. elegans has provided insights into a myriad of biological questions, enabled by its short generation time, ...

Biology

Depletion of Ribosomal RNA for Mosquito Gut Metagenomic RNA-seq

The mosquito gut accommodates dynamic microbial communities across different stages of the insect's life cycle. Characterization of the genetic capacity and functionality of the gut community will provide insight into the effects of gut microbiota on mosquito life traits. Metagenomic RNA-Seq has become an important tool to analyze transcriptomes from various microbes present in a microbial community. Messenger RNA usually comprises only 1-3% of total RNA, while rRNA constitutes approximately 90%. It is challenging to enrich messenger RNA from a metagenomic microbial RNA sample because most prokaryotic mRNA species lack stable poly(A) tails. This prevents oligo d(T) mediated mRNA isolation. Here, we describe a protocol that employs sample derived rRNA capture probes to remove rRNA from a metagenomic total RNA sample. To begin, both mosquito and microbial small and large subunit rRNA fragments are amplified from a metagenomic community DNA sample. Then, the community specific biotinylated antisense ribosomal RNA probes are synthesized in vitro using T7 RNA polymerase. The biotinylated rRNA probes are hybridized to the total RNA. The hybrids are captured by streptavidin-coated beads and removed from the total RNA. This subtraction-based protocol efficiently removes both mosquito and microbial rRNA from the total RNA sample. The mRNA enriched sample is further processed for RNA amplification and RNA-Seq.

A ribosomal RNA (rRNA) depletion protocol was developed to enrich messenger RNA (mRNA) for RNA-seq of the mosquito gut metatranscriptome. Sample specific rRNA probes, which were used to remove rRNA via subtraction, were created from the mosquito and its gut microbes. Performance of the protocol can result in the removal of approximately 90-99% of rRNA.

דלדול של רנ&quot;א ריבוזומלי לMetagenomic גוט יתוש RNA-seq

The mosquito gut accommodates dynamic microbial communities across different stages of the insect's life cycle. Characterization of the genetic capacity ...

צואה (מיקרו) בידוד RNA

Summary

Explore More Videos