サインイン

このコンテンツを視聴するには、JoVE 購読が必要です。 サインイン又は無料トライアルを申し込む。

この記事について

  • 要約
  • 要約
  • 概要
  • プロトコル
  • 結果
  • ディスカッション
  • 開示事項
  • 謝辞
  • 資料
  • 参考文献
  • 転載および許可

要約

婦人科手術前のインビトロ成熟(IVM)は、卵母細胞の検索に続くIVMと日常的な婦人科手術を組み合わせ、不妊治療の保存のための従来のIVMアプリケーションの延長として機能します。

要約

婦人科手術(OP-IVM)前のインビトロ成熟(IVM)の使用は、定期的な婦人科手術と卵母細胞の検索に続くIVMを組み合わせた従来のIVMの延長である。OP-IVMは、不妊治療(FP)または体外受精や胚移植(IVF-ET)などの不妊治療の必要性を有する良性婦人科手術を受けている患者に適しています。手術室では、良性婦人科手術を受けている患者は、最初に麻酔を受け、超音波誘導未熟卵性卵胞吸引(IMFA)治療を受ける。その後の婦人科手術が行われると、cumulus-oocyte複合体(COC)を検査し、未熟なCOCをIVM培地に移し、IVF実験室で28〜32時間培養する。評価後、MII段階の成熟卵母細胞を選択し、FP用の液体窒素中で凍結保存するか、IVF-ETの細胞質内精子注入(ICSI)によって受精する。IVMと婦人科手術を組み合わせることで、廃棄されたであろう未熟な卵母細胞を保存し、生殖補助技術(ART)に使用することができます。OP-IVM の手順、重要性、および重要な側面については、この記事で説明します。

概要

IVMは、ヒト未熟卵母細胞がIVF-ETまたはFPの成熟に向けて体外で培養されるARTである。IVMでは、排卵誘導薬は使用されず、痛み、経済的負担、卵巣過剰刺激症候群(OHSS)1、2などの合併症を軽減する。また、IVMは、排卵誘導療法3を受けることができないか、または受け取る時間がない場合があるホルモン感受性患者の癌患者のFPおよび不妊治療に特に適している。したがって、取得した卵母細胞の数は、臨床妊娠率(CPR)、および出生率(LBR)がIVF4、5のそれよりも低いが、IVMは独自の利点を有する。

子宮内膜病変、水力不水圧、または卵巣嚢胞を有する不妊患者は、通常、ART治療の前に婦人科手術を受け、その卵母細胞は通常未熟である。OP-IVMは、ガイド付き経膣超音波を使用して未熟な卵母細胞を取り出し、IVF-ETまたはFP.OP-IVMの成熟まで体外で成長させ、卵母細胞の検索および婦人科手術後にIVMを組み合わせ、それによって制御された卵巣過剰刺激サイクルで一般的な合併症を軽減し、時間とお金を節約する。肥沃な患者にとって、OP-IVMは定期的な婦人科手術を受けながら「不妊保険」として機能する可能性があります。

さらに、電気焼灼6、7、卵巣腫瘍切除などの婦人科手術による損傷は、婦人科手術前に卵母細胞の検索によって減少する可能性がある。したがって、定期的な婦人科手術と比較して、OP-IVMは不妊治療中の手術の数を減らし、卵巣手術中の機能的卵母細胞の喪失を防ぐことができる。

以前の研究では、卵母細胞の検索の追加手順は、外科的合併症および不利な妊娠結果を増加させることも、入院を延長することもなく、8.一部の患者は、この方法の実現可能性を示すOP-IVM8を介して生きた出産を行った。本論文では、OP-IVMの恩恵を受ける可能性のある患者の特徴、およびOP-IVMの手順および重要な点について説明し、ヒト卵母細胞成熟度の評価について議論する。

プロトコル

注:OP-IVM法に関する研究は、北京大学第三病院の機関審査委員会(IRB)と北京大学倫理委員会(2014S2004)によって承認されています。OP-IVM の概要を図 1に示します。次のセクションでは、手順を説明します。

1. 適切な患者へのOP-IVMの導入

  1. ステップ 1.1.1-1.1.3 で説明されているようなOP-IVMの恩恵を受ける可能性のある潜在的な患者を特定します。
    1. 腹腔鏡下卵巣穿孔手術を必要とするクロミフェン耐性を有する多嚢胞性卵巣症候群(PCOS)患者。
    2. ART治療前に、子宮鏡下筋切除術、多形切除術、中隔および腹腔鏡下管切除術の経子宮頸部切除、および卵巣嚢胞切除術などの良性婦人科手術を必要とする不妊患者。
    3. 化学放射線療法または放射線療法を受けている癌または血管疾患を有する患者。

2. インフォームド・コンセント

  1. OP-IVMが有益である理由、その手順、IVM卵母細胞(IVF-ETまたは凍結保存)の使用、推定CDRおよびLBR、および合併症の可能性を含む、患者に完全な情報を提供する。同意書に署名して、患者にインフォームド・コンセントを提出してもらいます。

3. ラベルとIVM卵子培地を準備する

  1. 培養皿および管のための患者の名前および日付の印字の識別(ID)ラベル。
  2. 4ウェルプレートの各ウェルに0.075 IU/mLの卵胞刺激ホルモン(FSH)と0.075 IU/mLの黄体形成ホルモン(LH)を添加するIVM培地の0.5 mLを加えます。媒体を油で覆います。
    注:これらすべての手順を、ラミナーフロークリーンベンチで実行します。
  3. 使用前に5%CO2および5%O2を含む加湿空気中の37°CのIVM卵母細胞培地と4ウェルプレートを予熱する。

4. 手術室で麻酔を行う

  1. 麻酔をする前に患者の名前を確認してください。
  2. 麻酔科医によって患者を静脈内麻酔する。

5. 卵母細胞の検索を行う

  1. ラベルに、カルチャ料理やチューブの名前、日付、ID をタグ付けします。
  2. 膀胱リトトミーの位置に患者を置く;常に消毒し、ドレープし、暖かい生理液で膣をスクラブします。
  3. 膣内の超音波プローブを配置します。両方の卵巣の卵胞の数をスキャンし、記録します。穿刺部位として卵巣に最も近い場所を見つけ、腸、膀胱、および大きな血管を避ける。
  4. 濾胞液を吸引する。
    1. 穿刺する前に、pH安定なハンドリング媒体で針を洗浄します( 材料表を参照)。
    2. 超音波の指導の下で卵巣に19G、単一内腔吸引針を注入する。
    3. プローブに最も近い明確な境界を持つ大きな卵胞を穿刺する。低い位置で、すぐに25 U/mLのヘパリンを補ったリンス溶液を注入する。80-90 mmHgの圧力下で針を持つ濾胞液を吸引し、針をわずかに回転させ、できるだけ多くの濾胞液を吸引する。この平面上の近くから遠い側に他の卵胞を穿刺します。
      注:吸引の間、卵母細胞を含む濾胞液は陰圧下で無菌10 mL試験管に流れ込みます。ヘパリンは、吸引プロセスを容易にするために濾胞液粘度を低下させることができる。
    4. 卵巣から針を取り出します(針を膣壁に入れる)。超音波プローブの方向を調整し、他の平面上の残りの卵胞を穿刺します。直径5~9mmの卵胞をすべて吸引してみてください。
      注:プローブの位置を調整して、常に卵巣に最も近い位置に保ちます。膣のフォルニックスを適切な力で押して、傷害と出血を軽減します。
    5. 一方の卵巣で仕上げ終えた針を引き出し、ハンドリング媒体で針を洗い、もう一方の側を同じ方法で穿刺する。
      注:25〜30分以内に完全な卵胞の吸引。
  5. 患者の名前とIDを確認した後、数分以内に手術室からIVF検査室に濾胞液を移す。
    注:凝固を防ぐために、できるだけ早くIVF実験室のベンチに吸引濾胞液を移す。
  6. すべての卵胞を穿刺した後、Bモード超音波で骨盤腔内の活動性出血を検出する。鏡を挿入し、後部fornixに先端を向けて穿刺部位での活発な出血を検出する。
    注:卵巣の位置が正常であり、卵母細胞の検索が慎重に行われる場合、膣穿刺部位では活性出血は認めてはならない。圧縮後も続く軽い出血の場合は、2〜4時間膣内で無菌ガーゼの圧縮を保ちます。2-4時間の血管鉗子を有するクランプを使用して、小動脈からの過度の出血を制御する。めったに起こらない骨盤腔または卵巣の出血は、腹腔鏡手術による電気凝固によって制御されるべきである。

6. 婦人科手術

  1. 患者の必要性および状態に基づいて、卵母細胞の検索後に適切な婦人科手術を行う。
    1. クロミフェン耐性を有する多嚢胞性卵巣症候群(PCOS)患者に対して腹腔鏡下卵巣穿孔手術を行う。
    2. 子宮鏡下筋切除術、多形切除術、中隔および腹腔鏡下管切除術、および卵巣嚢胞切除術などのART治療の前に不妊患者に対して良性婦人科手術を行う。
    3. 化学放射線療法を受ける必要がある癌または血管疾患の患者の生殖能力凍結保存のための卵巣切分術を行う。
      注:これらの婦人科手術は、基本的かつ標準化された臨床手術です。各国や病院の運営ガイドラインは比較的似ているはずです。

7. IVM を実行する

注:37°CのホモサーマルフラットでIVMの全工程を実行します。

  1. 70 μm のナイロンセルストレーナーで、吸引した卵胞液をフィルター処理します。培養管とストレーナーを、あらかじめ温めたpH安定ハンドリング培地で繰り返しすすいます。すべての未熟なCOCが完全に培養皿に移されることを確認します。100 x 15 mm のペトリ皿にろ過した液体、すすがり、培養を収集します。
  2. 40倍の倍率でステレオスコープの下にあるCOC(図2)を調べます。未熟者を温めるIVM卵母細胞培地に素早く移します。
    注: オペレータの習慣に応じて、適切な倍率を選択します。
  3. 培養された未熟なCOCの数を記録します。
  4. 培養したCOCの数を患者に知らせる。患者とそのパートナーと精液のコレクションについて話し合います。通常の手順に従って精子抽出を行います.
  5. 5%CO2及び5%O2 を含む加湿空気中の37°Cで28〜32時間の不成熟なCOCSを培養する。
  6. 卵母細胞の成熟度を評価します。
    1. 40倍の倍率で立体鏡下のガラスパスツールピペットを使用して繰り返しピペット処理を行い、積Mulus細胞を脱裸にした。極体(PB)の押し出しを調べて、卵母細胞の発達段階を特定する。明確な形態学的特徴を持つCOCs、転移II(MII)、転移I(MI)、および生殖小胞(GV)における卵母細胞の代表的な画像については 、図2 を参照してください。
      注:ガラスパスツールピペットの直径を卵母細胞の大きさに調整するには、垂直炎(例えば、ブンゼンバーナーの)を使用してください。
    2. MII卵母細胞をカウントし、数を記録します。
    3. IVFまたはガラス化のために成熟卵母細胞を選択してください。
      注:卵母細胞がIVFのために成熟した日に精子を収集しますが、卵子のガラス化のためではありません。
    4. GVおよびMI段階で未熟卵母細胞を、さらに10〜14時間のcumulus細胞を用いた元のIVM培地で培養する。ステップ 7.6.2 ~ 7.6.3 を繰り返します。

8. ICSI または卵卵子ガラス化を行う

  1. 生殖センター8の標準的な手順に従ってください。

9. 培養胚と胚凍結保存を行う

  1. 生殖センター8の標準的な手順に従ってください。

結果

2019年12月まで、OP-IVMは274人の患者の不妊治療保存に使用されました。2014年から2016年の間に158人の患者の胚学的および生殖結果が前の論文8に掲載された。次の例では、2016 年に OP-IVM を受信した PCOS 患者の手順について説明します。患者は原発性不妊症、左腺嚢胞、およびPCOSと診断された28歳である。彼女は9月28に腹腔鏡下膀胱切除術とOP-I...

ディスカッション

この記事で説明するOP-IVM法は、従来のIVMアプリケーションにまで及び、卵母細胞の検索後のIVMと日常的な婦人科手術を組み合わせたものです。婦人科手術で失われたであろう卵母細胞は、追加の外科的リスクなしにIVF-ETまたはFPに使用できるようになりました。OP-IVMは、PCOS患者の卵巣掘削前に卵母細胞を取り出すために最初に使用されました。その適用はすぐに良性婦人科手術と癌または化?...

開示事項

著者らは開示するものは何もない。

謝辞

この作品は、中国国家キーR&Dプログラムからの助成金によって支えられました(いいえ。 2017YFC1002000,2018YFC1004001,2019YFA0801400,中国国立科学財団(81571386,81730038),CAMS医学イノベーション基金(2019-I2M-5-001)、中国資本健康開発特別研究プロジェクト(2018-209-409-409)。

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
19 G single-lumen aspiration needlesCook, AustraliaK-OPS-7035-REH-ET
4-well plateCorning
70 μm nylon cell strainerFalcon, USA352350
CO2 IncubatorThermo
Culture oilVitrolife, Sweden10029,OVOIL Step 3.2.
FSH & LHFerring Reproductive Health, GermanyMENOPUR®
Glass Pasteur pipetteHilgenberg GmbH, Germany3154102-26
G-MOPS mediumpH-stable handling medium for washing the needle before puncturing
IVM mediumOrigio, DenmarkART-1600-B
Laminar Flow Clean BenchesESCO
Petri dishThermo Fisher Scientific, Denmark263991
pH stable handing media designed to support the handling and manipulation of oocytes and embryos outside the incubatorVitrolife, Sweden10130, G-MOPS PLUSStep 7.1.
Rinse solutionCook, AustraliaK-SIFB-100
StereoscopeNikon

参考文献

  1. Ho, V. N. A., Braam, S. C., Pham, T. D., Mol, B. W., Vuong, L. N. The effectiveness and safety of in vitro maturation of oocytes versus in vitro fertilization in women with a high antral follicle count. Human Reproduction. 34 (6), 1055-1064 (2019).
  2. Yang, Z. Y., Chian, R. C. Development of in vitro maturation techniques for clinical applications. Fertility and Sterility. 108 (4), 577-584 (2017).
  3. Hatirnaz, S., et al. Oocyte in vitro maturation: A sytematic review. Turkish Journal of Obstetrics and Gynecology. 15 (2), 112-125 (2018).
  4. Gremeau, A. S., et al. In vitro maturation or in vitro fertilization for women with polycystic ovaries? A case-control study of 194 treatment cycles. Fertility and Sterility. 98 (2), 355-360 (2012).
  5. Ho, V. N. A., Braam, S. C., Pham, T. D., Mol, B. W., Vuong, L. N. The effectiveness and safety of in vitro maturation of oocytes versus in vitro fertilization in women with a high antral follicle count. Human Reproduction. 34 (6), 1055-1064 (2019).
  6. Sahin, C., et al. Which should be the preferred technique during laparoscopic ovarian cystectomy. Reproductive Sciences. 24 (3), 393-399 (2017).
  7. Xiao, J., et al. Impact of hemostatic methods on ovarian reserve and fertility in laparoscopic ovarian cystectomy. Experimental and Therapeutic. 17 (4), 2689-2693 (2019).
  8. Song, X. -. L., et al. Enhancing the scope of in vitro maturation for fertility preservation: transvaginal retrieval of immature oocytes during endoscopic gynaecological procedures. Human Reproduction. 35 (4), 837-846 (2020).
  9. Magnusson, &. #. 1. 9. 7. ;., Källen, K., Thurin-Kjellberg, A., Bergh, C. The number of oocytes retrieved during IVF: a balance between efficacy and safety. Human Reproduction. 33 (1), 58-64 (2018).
  10. Larose, H., et al., Wellik, D. M., et al. Gametogenesis: A journey from inception to conception. Current Topics in Developmental Biology. 132, 257-310 (2019).
  11. Broer, S. L., Broekmans, F. J. M., Laven, J. S. E., Fauser, B. C. J. M. Anti-Müllerian hormone: ovarian reserve testing and its potential clinical implications. Human Reproduction Update. 20 (5), 688-701 (2014).
  12. Arce, J. C., La Marca, A., Mirner Klein, B., Nyboe Andersen, A., Fleming, R. Antimüllerian hormone in gonadotropin releasing-hormone antagonist cycles: prediction of ovarian response and cumulative treatment outcome in good-prognosis patients. Fertility and Sterility. 99 (6), 1644-1653 (2013).
  13. Katayama, K. P., et al. Ultrasound-guided transvaginal needle aspiration of follicles for in vitro fertilization. Obstetrics and Gynecology. 72 (2), 271-274 (1988).
  14. Dellenbach, P., et al. Transvaginal sonographically controlled follicle puncture for oocyte retrieval. Fertility and Sterility. 44 (5), 656-662 (1985).
  15. Hirata, T., et al. Concomitant ovarian drilling and oocyte retrieval by laparoendoscopic single-site surgery led to live birth using in vitro maturation of oocyte and transfer of frozen-thawed blastocyst in woman with polycystic ovary syndrome. Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 40 (5), 1431-1435 (2014).
  16. Deutinger, J., et al. Follicular aspiration for in vitro fertilization: sonographically guided transvaginal versus laparoscopic approach. European Journal of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Biology. 26 (2), 127-133 (1987).
  17. Tanbo, T., Henriksen, T., Magnus, O., Abyholm, T. Oocyte retrieval in an IVF program. A comparison of laparoscopic and transvaginal ultrasound-guided follicular puncture. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 67 (3), 243-246 (1988).
  18. Nagy, Z. P., et al. Pregnancy and birth after intracytoplasmic sperm injection of in vitro matured germinal-vesicle stage oocytes: case report. Fertility and Sterility. 65 (5), 1047-1050 (1996).
  19. Söderström-Anttila, V., Mäkinen, S., Tuuri, T., Suikkari, A. -. M. Favourable pregnancy results with insemination of in vitro matured oocytes from unstimulated patients. Human Reproduction. 20 (6), 1534-1540 (2005).
  20. Hwang, J. L., Lin, Y. H., Tsai, Y. L. In vitro maturation and fertilization of immature oocytes: a comparative study of fertilization techniques. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 17 (1), 39-43 (2000).
  21. Walls, M., Junk, S., Ryan, J. P., Hart, R. IVF versus ICSI for the fertilization of in-vitro matured human oocytes. Reproductive Biomedicine Online. 25 (6), 603-607 (2012).
  22. Park, J. H., Jee, B. C., Kim, S. H. Comparison of normal and abnormal fertilization of in vitro-matured human oocyte according to insemination method. Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 42 (4), 417-421 (2016).
  23. Ho, V. N. A., Pham, T. D., Le, A. H., Ho, T. M., Vuong, L. N. Live birth rate after human chorionic gonadotropin priming in vitro maturation in women with polycystic ovary syndrome. Journal of Ovarian Research. 11 (1), 70 (2018).
  24. Zheng, X., et al. Effect of hCG priming on embryonic development of immature oocytes collected from unstimulated women with polycystic ovarian syndrome. Reproductive Biology and Endocrinology. 10, 40 (2012).
  25. Tannus, S., et al. Predictive factors for live birth after in vitro maturation of oocytes in women with polycystic ovary syndrome. Archives of Gynecology and Obstetrics. 297 (1), 199-204 (2018).
  26. Cohen, Y., et al. Decreased pregnancy and live birth rates after vitrification of in vitro matured oocytes. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 35 (9), 1683-1689 (2018).
  27. Yazdanpanah, F., Khalili, M. A., Eftekhar, M., Karimi, H. The effect of vitrification on maturation and viability capacities of immature human oocytes. Archives of Gynecology and Obstetrics. 288 (2), 439-444 (2013).

転載および許可

このJoVE論文のテキスト又は図を再利用するための許可を申請します

許可を申請

さらに記事を探す

171 IVM PCOS

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

個人情報保護方針

利用規約

一般データ保護規則

研究

教育

JoVEについて

Copyright © 2023 MyJoVE Corporation. All rights reserved