Anmelden

Zum Anzeigen dieser Inhalte ist ein JoVE-Abonnement erforderlich. Melden Sie sich an oder starten Sie Ihre kostenlose Testversion.

In diesem Artikel

  • Zusammenfassung
  • Zusammenfassung
  • Einleitung
  • Protokoll
  • Ergebnisse
  • Diskussion
  • Offenlegungen
  • Danksagungen
  • Materialien
  • Referenzen
  • Nachdrucke und Genehmigungen

Zusammenfassung

Die In-vitro-Reifung (IVM) vor der gynäkologischen Operation (OP-IVM) kombiniert IVM nach Eizellentnahme mit routinemäßiger gynäkologischer Chirurgie und dient als Erweiterung herkömmlicher IVM-Anwendungen zur Fertilitätserhaltung.

Zusammenfassung

Die Anwendung der In-vitro-Reifung (IVM) vor der gynäkologischen Operation (OP-IVM) ist eine Erweiterung der konventionellen IVM, die IVM nach Eizellentnahme mit routinemäßigen gynäkologischen Operationen kombiniert. OP-IVM eignet sich für Patienten, die sich einer gutartigen gynäkologischen Operation unterziehen und die Fruchtbarkeitserhaltung (FP) oder Unfruchtbarkeitsbehandlungen wie In-vitro-Fertilisation und Embryotransfer (IVF-ET) benötigen. Im Operationssaal werden Patienten, die sich einer gutartigen gynäkologischen Operation unterziehen, zunächst betäubt und erhalten eine ultraschallgeführte Behandlung mit unreifer Follikelaspiration (IMFA). Während der anschließenden gynäkologischen Operation werden die Kumulus-Eizell-Komplexe (COCs) untersucht und die unreifen COCs in das IVM-Medium übertragen und für 28-32 Stunden im IVF-Labor kultiviert. Nach der Beurteilung werden reife Eizellen im MII-Stadium ausgewählt und in flüssigem Stickstoff für FP kryokonserviert oder durch intrazytoplasmatische Spermieninjektion (ICSI) für IVF-ET befruchtet. Durch die Kombination von IVM mit gynäkologischer Chirurgie können unreife Eizellen, die verworfen worden wären, gerettet und für die assistierte Reproduktionstechnologie (ART) verwendet werden. Das Verfahren, die Bedeutung und die kritischen Aspekte von OP-IVM werden in diesem Artikel beschrieben.

Einleitung

IVM ist eine ART, bei der menschliche unreife Eizellen in vitro kultiviert werden, um für IVF-ET oder FP zu reifen. Bei IVM werden keine Ovulationsinduktionsmedikamente verwendet, wodurch Schmerzen, finanzielle Belastungen und Komplikationen wie das ovarielle Überstimulationssyndrom (OHSS)1,2reduziert werden. Darüber hinaus eignet sich IVM besonders für die FP von Krebspatienten und die Unfruchtbarkeitsbehandlung von hormonsensitiven Patientinnen, die möglicherweise nicht in der Lage sind oder keine Zeit haben, eine Ovulationsinduktionstherapie zu erhalten3. Obwohl die Anzahl der entnommenen Eizellen, die klinische Schwangerschaftsrate (CPR) und die Lebendgeburtenrate (LBR) niedriger sind als die von IVF4,5,hat IVM seine eigenen einzigartigen Vorteile.

Unfruchtbare Patienten mit Endometriumläsionen, Hydrosalpinx oder Ovarialzysten haben in der Regel vor der ART-Behandlung eine gynäkologische Operation, und ihre Eizellen sind normalerweise unreif. OP-IVM verwendet geführten transvaginalen Ultraschall, um die unreifen Eizellen zu entnehmen und sie in vitro bis zur Reifung für IVF-ET oder FP zu züchten. OP-IVM kombiniert IVM nach der Eizellentnahme und gynäkologischen Operation, wodurch Komplikationen, die in kontrollierten Ovarialüberstimulationszyklen üblich sind, reduziert und Zeit und Geld gespart werden. Für fruchtbare Patienten könnte OP-IVM als "Fruchtbarkeitsversicherung" dienen, während sie sich einer routinemäßigen gynäkologischen Operation unterziehen.

Darüber hinaus könnten Schäden, die durch gynäkologische Operationen wie Elektrokauter6,7 und Ovarialtumorresektion verursacht werden, durch Eizellentnahme vor der gynäkologischen Operation reduziert werden. Daher könnte OP-IVM im Vergleich zu routinemäßigen gynäkologischen Operationen die Anzahl der Operationen während der Unfruchtbarkeitsbehandlung reduzieren und den Verlust funktioneller Eizellen während der Ovarialchirurgie verhindern.

Eine frühere Studie hat gezeigt, dass das zusätzliche Verfahren der Eizellentnahme weder chirurgische Komplikationen und nachteilige Schwangerschaftsergebnisse erhöhen noch den Krankenhausaufenthalt verlängern würde8. Einige Patienten haben durch OP-IVM8eine Lebendgeburt bekommen, was auf die Machbarkeit dieser Methode hinweist. Dieses Papier beschreibt Merkmale von Patienten, die von OP-IVM profitieren können, sowie Verfahren und kritische Punkte von OP-IVM und diskutiert die Bewertung der menschlichen Eizellreife.

Protokoll

HINWEIS: Studien im Zusammenhang mit der OP-IVM-Methode wurden vom Institutional Review Board (IRB) des Dritten Krankenhauses der Universität Peking und der Ethikkommission der Universität Peking (2014S2004) genehmigt. Eine Zusammenfassung von OP-IVM ist in Abbildung 1 dargestellt. Die Schritt-für-Schritt-Vorgehensweise wird im folgenden Abschnitt vorgestellt.

1. Einführung von OP-IVM bei geeigneten Patienten

  1. Identifizieren Sie potenzielle Patienten, die von OP-IVM profitieren könnten, wie in den Schritten 1.1.1-1.1.3 beschrieben:
    1. Patientinnen des polyzystischen Ovarialsyndroms (PCOS) mit Clomifenresistenz, die eine laparoskopische Ovarialbohroperation benötigen.
    2. Unfruchtbare Patienten, die vor der ART-Behandlung gutartige gynäkologische Operationen wie hysteroskopische Myomektomie, Polypektomie, transzervikale Septumresektion und laparoskopische Tubenchirurgie sowie Oophorozystektomie benötigen.
    3. Patienten mit Krebs oder hämatologischen Erkrankungen, die eine Chemoradiotherapie oder Strahlentherapie erhalten.

2. Einwilligung nach Aufklärung

  1. Bereitstellung vollständiger Informationen für Patienten, einschließlich der Frage, warum OP-IVM von Vorteil sein kann, seines Verfahrens, der Verwendung von IVM-Eizellen (IVF-ET oder Kryokonservierung), geschätzter CPRs und LBRs und möglicher Komplikationen. Bitten Sie die Patienten, eine Einwilligung nach Aufklärung zu geben, indem Sie die Einverständniserklärung unterschreiben.

3. Etiketten und IVM-Eizellmedium vorbereiten

  1. Drucken Sie Identifikationsetiketten (ID) mit dem Namen und den Daten des Patienten für Kulturschalen und Tuben.
  2. Fügen Sie 0,5 ml IVM-Medium, ergänzt mit 0,075 I.E./ml follikelstimulierendem Hormon (FSH) und 0,075 I.E./ml luteinisierendem Hormon (LH), zu jeder Vertiefung einer 4-Well-Platte hinzu. Bedecken Sie das Medium mit Öl.
    HINWEIS: Führen Sie alle diese Verfahren in Laminar-Flow-Clean-Bänken durch.
  3. Die 4-Well-Platte mit IVM-Eizellmedium bei 37 °C in befeuchteter Luft mit 5%CO2 und 5% O2 mindestens6 h vor Gebrauch vorwärmen.

4. Verabreichen Sie eine Anästhesie in einem Operationssaal

  1. Überprüfen Sie den Namen des Patienten, bevor Sie eine Anästhesie verabreichen.
  2. Intravenöse Anästhesie des Patienten durch Anästhesisten.

5. Eizellentnahme durchführen

  1. Markieren Sie die Etiketten mit Name, Datum und ID auf den Kulturschalen und Tuben.
  2. Setzen Sie den Patienten in die Blasenlithotomie-Position; Ständig desinfizieren, drapieren und schrubben Sie die Vagina mit warmer Kochsalzlösung.
  3. Platzieren Sie die Ultraschallsonde in der Vagina; Scannen und notieren Sie die Anzahl der Follikel in beiden Eierstöcken. Finden Sie den Ort, der dem Eierstock als Einstichstelle am nächsten ist, und vermeiden Sie den Darm, die Blase und die großen Blutgefäße.
  4. Aspirieren Sie follikuläre Flüssigkeit.
    1. Waschen Sie die Nadel vor dem Durchstechen mit pH-stabilem Handhabungsmedium(siehe Materialtabelle ).
    2. Injizieren Sie die 19 G, Ein-Lumen-Aspirationsnadel unter Anleitung von Ultraschall in die Eierstöcke.
    3. Punktieren Sie größere Follikel mit klaren Grenzen, die der Sonde am nächsten sind. In einer niedrigen Position die Spüllösung, die mit 25 U / ml Heparin ergänzt wird, schnell injizieren. Aspirieren Sie follikuläre Flüssigkeit mit der Nadel unter einem Druck von 80-90 mmHg und drehen Sie die Nadel leicht, um so viel Follikelflüssigkeit wie möglich abzusaugen. Punktieren Sie andere Follikel von der nahen bis zur anderen Seite auf dieser Ebene.
      HINWEIS: Während der Aspiration fließt follikuläre Flüssigkeit, die Eizellen enthält, unter Unterdruck in ein steriles 10-ml-Reagenzglas. Heparin kann die Viskosität der Follikelflüssigkeit reduzieren, um den Aspirationsprozess zu erleichtern.
    4. Entfernen Sie die Nadel vom Eierstock (halten Sie die Nadel in der Vaginalwand). Stellen Sie die Richtung der Ultraschallsonde ein und punktieren Sie die verbleibenden Follikel auf anderen Ebenen. Versuchen Sie, alle Follikel mit einem Durchmesser von ~ 5-9 mm abzusaugen.
      HINWEIS: Stellen Sie die Position der Sonde ein, um sie jederzeit am nächsten an den Eierstöcken zu halten. Drücken Sie den vaginalen Fornix mit entsprechender Kraft, um Verletzungen und Blutungen zu reduzieren.
    5. Ziehen Sie die Nadel nach dem Beenden in einem Eierstock heraus, waschen Sie die Nadel mit dem Handhabungsmedium und punktieren Sie die andere Seite mit der gleichen Methode.
      HINWEIS: Vollständige Follikelaspiration innerhalb von 25-30 min.
  5. Übertragen Sie die Follikelflüssigkeit innerhalb weniger Minuten nach Bestätigung des Namens und der ID des Patienten aus dem Operationssaal in das IVF-Labor.
    HINWEIS: Übertragen Sie aspirierte Follikelflüssigkeit so schnell wie möglich in die IVF-Laborbank, um eine Gerinnung zu verhindern.
  6. Erkennen Sie aktive Blutungen in der Beckenhöhle mit B-Mode-Ultraschall nach Punktion aller Follikel. Setzen Sie ein Spekulum ein und richten Sie die Spitze auf den hinteren Fornix, um aktive Blutungen an der Einstichstelle zu erkennen.
    HINWEIS: An der vaginalen Punktionsstelle sollte keine aktive Blutung beobachtet werden, wenn die Eierstockposition normal ist und die Eizellentnahme sorgfältig durchgeführt wird. Für leichte Blutungen, die auch nach der Kompression anhalten, halten Sie eine sterile Mullkompresse in der Vagina für 2-4 h. Kontrollieren Sie übermäßige Blutungen aus kleinen Arterien mit Klammern mit Gefäßzange für 2-4 h. Blutungen in der Beckenhöhle oder im Eierstock, die selten auftreten, sollten durch Elektrokoagulation durch laparoskopische Operation kontrolliert werden.

6. Gynäkologische Chirurgie

  1. Führen Sie je nach Bedarf und Zustand des Patienten nach der Eizellentnahme eine geeignete gynäkologische Operation durch.
    1. Führen Sie eine laparoskopische Ovarialbohroperation für Patientinnen mit polyzystischem Ovarialsyndrom (PCOS) mit Clomifenresistenz durch.
    2. Führen Sie vor der ART-Behandlung eine gutartige gynäkologische Operation für unfruchtbare Patienten durch, wie hysteroskopische Myomektomie, Polypektomie, transzervikale Septumresektion und laparoskopische Tubenchirurgie sowie Oophorozystektomie.
    3. Führen Sie eine Ovariektomie zur Kryokonservierung der Fruchtbarkeit von Patienten mit Krebs oder hämatologischen Erkrankungen durch, die eine Chemoradiotherapie benötigen.
      HINWEIS: Diese gynäkologischen Operationen sind grundlegende und standardisierte klinische Operationen. Die Operationsrichtlinien in verschiedenen Ländern und Krankenhäusern sollten relativ ähnlich sein.

7. IVM durchführen

HINWEIS: Führen Sie den gesamten IVM-Prozess auf einer homothermen Ebene mit 37 °C durch.

  1. Filtern Sie die angesaugte Follikelflüssigkeit mit einem 70 μm Nylon-Zellsieb. Kulturröhrchen und Sieb wiederholt mit vorgewärmtem pH-stabilem Handhabungsmedium abspülen. Stellen Sie sicher, dass alle unreifen COCs vollständig auf das Kulturgericht übertragen werden. Die gefilterte Flüssigkeit sammeln, ausspülen und in einer 100 x 15 mm großen Petrischale entnehmen.
  2. Untersuchen Sie die COCs (Abbildung 2) unter dem Stereoskop mit 40-facher Vergrößerung. Übertragen Sie die Unreifen schnell in ein vorgewärmtes IVM-Eizellmedium.
    HINWEIS: Wählen Sie eine geeignete Vergrößerung in Abhängigkeit von der Gewohnheit des Bedieners.
  3. Notieren Sie die Anzahl der kultivierten unreifen COCs.
  4. Informieren Sie den Patienten über die Anzahl der kultivierten COCs. Besprechen Sie die Samenentnahme mit den Patienten und ihren Partnern. Führen Sie die Spermienextraktion nach dem normalen Verfahren durch.
  5. Kultivieren Sie die unreifen COCs bei 37 °C in befeuchteter Luft mit 5% CO2 und 5%O2 für 28-32 h.
  6. Beurteilen Sie die Reife der Eizelle.
    1. Entleeren Sie die Kumuluszellen durch wiederholtes Pipettieren mit einer Glas-Pasteur-Pipette unter dem Stereoskop mit 40-facher Vergrößerung. Untersuchen Sie die Extrusion des Polkörpers (PB), um das Entwicklungsstadium der Eizellen zu identifizieren. Siehe Abbildung 2 für repräsentative Bilder von Eizellen in COCs, Metaphase II (MII), Metaphase I (MI) und Keimbläschen (GVs) mit klaren morphologischen Merkmalen.
      HINWEIS: Verwenden Sie eine vertikale Flamme (z. B. eines Bunsenbrenners), um den Durchmesser der Pasteurpipette aus Glas auf die Größe einer Eizelle einzustellen.
    2. Zählen Sie MII-Eizellen und notieren Sie die Anzahl.
    3. Wählen Sie reife Eizellen für IVF oder Vitrifikation.
      HINWEIS: Sammeln Sie Spermien an dem Tag, an dem die Eizellen für IVF reifen, aber nicht für die Vitrifizierung von Eizellen.
    4. Kultivieren Sie die unreifen Eizellen im GV- und MI-Stadium im ursprünglichen IVM-Kulturmedium mit Kumuluszellen für weitere 10-14 h. Wiederholen Sie die Schritte 7.6.2-7.6.3.

8. ICSI oder Eizellvitrifikation durchführen

  1. Befolgen Sie das Standardverfahren des Fortpflanzungszentrums8.

9. Kultivieren Sie Embryonen und führen Sie eine Kryokonservierung von Embryonen durch

  1. Befolgen Sie das Standardverfahren des Fortpflanzungszentrums8.

Ergebnisse

Bis Dezember 2019 wurde OP-IVM zur Erhaltung der Fruchtbarkeit von 274 Patienten eingesetzt. Embryologische und reproduktive Ergebnisse von 158 Patienten zwischen 2014 und 2016 wurden in einer früheren Arbeit veröffentlicht8. Im folgenden Beispiel wird das Verfahren für einen PCOS-Patienten beschrieben, der 2016 OP-IVM erhielt. Der Patient ist ein 28-Jähriger, bei dem primäre Unfruchtbarkeit, linke Adnexzyste und PCOS diagnostiziert wurden. Sie erhielt am...

Diskussion

Die in diesem Artikel beschriebene OP-IVM-Methode erstreckt sich auf konventionelle IVM-Anwendungen und kombiniert IVM nach Eizellentnahme mit routinemäßigen gynäkologischen Operationen. Eizellen, die in der gynäkologischen Chirurgie verloren gegangen wären, können nun ohne zusätzliche chirurgische Risiken für IVF-ET oder FP verwendet werden. OP-IVM wurde zuerst verwendet, um Eizellen vor dem Eierstockbohren bei PCOS-Patienten zu entnehmen. Seine Anwendung weitete sich bald auf unfruchtbare Patienten aus, die ein...

Offenlegungen

Die Autoren haben nichts preiszugeben.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde durch Zuschüsse des China National Key R&D Program (Nr. 2017YFC1002000, 2018YFC1004001, 2019YFA0801400), der National Science Foundation of China (Nr. 81571386, 81730038), des CAMS Innovation Fund for Medical Sciences (2019-I2M-5-001) und des Special Research Project of Chinese Capital Health Development (2018-2-4095) unterstützt.

Materialien

NameCompanyCatalog NumberComments
19 G single-lumen aspiration needlesCook, AustraliaK-OPS-7035-REH-ET
4-well plateCorning
70 μm nylon cell strainerFalcon, USA352350
CO2 IncubatorThermo
Culture oilVitrolife, Sweden10029,OVOIL Step 3.2.
FSH & LHFerring Reproductive Health, GermanyMENOPUR®
Glass Pasteur pipetteHilgenberg GmbH, Germany3154102-26
G-MOPS mediumpH-stable handling medium for washing the needle before puncturing
IVM mediumOrigio, DenmarkART-1600-B
Laminar Flow Clean BenchesESCO
Petri dishThermo Fisher Scientific, Denmark263991
pH stable handing media designed to support the handling and manipulation of oocytes and embryos outside the incubatorVitrolife, Sweden10130, G-MOPS PLUSStep 7.1.
Rinse solutionCook, AustraliaK-SIFB-100
StereoscopeNikon

Referenzen

  1. Ho, V. N. A., Braam, S. C., Pham, T. D., Mol, B. W., Vuong, L. N. The effectiveness and safety of in vitro maturation of oocytes versus in vitro fertilization in women with a high antral follicle count. Human Reproduction. 34 (6), 1055-1064 (2019).
  2. Yang, Z. Y., Chian, R. C. Development of in vitro maturation techniques for clinical applications. Fertility and Sterility. 108 (4), 577-584 (2017).
  3. Hatirnaz, S., et al. Oocyte in vitro maturation: A sytematic review. Turkish Journal of Obstetrics and Gynecology. 15 (2), 112-125 (2018).
  4. Gremeau, A. S., et al. In vitro maturation or in vitro fertilization for women with polycystic ovaries? A case-control study of 194 treatment cycles. Fertility and Sterility. 98 (2), 355-360 (2012).
  5. Ho, V. N. A., Braam, S. C., Pham, T. D., Mol, B. W., Vuong, L. N. The effectiveness and safety of in vitro maturation of oocytes versus in vitro fertilization in women with a high antral follicle count. Human Reproduction. 34 (6), 1055-1064 (2019).
  6. Sahin, C., et al. Which should be the preferred technique during laparoscopic ovarian cystectomy. Reproductive Sciences. 24 (3), 393-399 (2017).
  7. Xiao, J., et al. Impact of hemostatic methods on ovarian reserve and fertility in laparoscopic ovarian cystectomy. Experimental and Therapeutic. 17 (4), 2689-2693 (2019).
  8. Song, X. -. L., et al. Enhancing the scope of in vitro maturation for fertility preservation: transvaginal retrieval of immature oocytes during endoscopic gynaecological procedures. Human Reproduction. 35 (4), 837-846 (2020).
  9. Magnusson, &. #. 1. 9. 7. ;., Källen, K., Thurin-Kjellberg, A., Bergh, C. The number of oocytes retrieved during IVF: a balance between efficacy and safety. Human Reproduction. 33 (1), 58-64 (2018).
  10. Larose, H., et al., Wellik, D. M., et al. Gametogenesis: A journey from inception to conception. Current Topics in Developmental Biology. 132, 257-310 (2019).
  11. Broer, S. L., Broekmans, F. J. M., Laven, J. S. E., Fauser, B. C. J. M. Anti-Müllerian hormone: ovarian reserve testing and its potential clinical implications. Human Reproduction Update. 20 (5), 688-701 (2014).
  12. Arce, J. C., La Marca, A., Mirner Klein, B., Nyboe Andersen, A., Fleming, R. Antimüllerian hormone in gonadotropin releasing-hormone antagonist cycles: prediction of ovarian response and cumulative treatment outcome in good-prognosis patients. Fertility and Sterility. 99 (6), 1644-1653 (2013).
  13. Katayama, K. P., et al. Ultrasound-guided transvaginal needle aspiration of follicles for in vitro fertilization. Obstetrics and Gynecology. 72 (2), 271-274 (1988).
  14. Dellenbach, P., et al. Transvaginal sonographically controlled follicle puncture for oocyte retrieval. Fertility and Sterility. 44 (5), 656-662 (1985).
  15. Hirata, T., et al. Concomitant ovarian drilling and oocyte retrieval by laparoendoscopic single-site surgery led to live birth using in vitro maturation of oocyte and transfer of frozen-thawed blastocyst in woman with polycystic ovary syndrome. Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 40 (5), 1431-1435 (2014).
  16. Deutinger, J., et al. Follicular aspiration for in vitro fertilization: sonographically guided transvaginal versus laparoscopic approach. European Journal of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Biology. 26 (2), 127-133 (1987).
  17. Tanbo, T., Henriksen, T., Magnus, O., Abyholm, T. Oocyte retrieval in an IVF program. A comparison of laparoscopic and transvaginal ultrasound-guided follicular puncture. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 67 (3), 243-246 (1988).
  18. Nagy, Z. P., et al. Pregnancy and birth after intracytoplasmic sperm injection of in vitro matured germinal-vesicle stage oocytes: case report. Fertility and Sterility. 65 (5), 1047-1050 (1996).
  19. Söderström-Anttila, V., Mäkinen, S., Tuuri, T., Suikkari, A. -. M. Favourable pregnancy results with insemination of in vitro matured oocytes from unstimulated patients. Human Reproduction. 20 (6), 1534-1540 (2005).
  20. Hwang, J. L., Lin, Y. H., Tsai, Y. L. In vitro maturation and fertilization of immature oocytes: a comparative study of fertilization techniques. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 17 (1), 39-43 (2000).
  21. Walls, M., Junk, S., Ryan, J. P., Hart, R. IVF versus ICSI for the fertilization of in-vitro matured human oocytes. Reproductive Biomedicine Online. 25 (6), 603-607 (2012).
  22. Park, J. H., Jee, B. C., Kim, S. H. Comparison of normal and abnormal fertilization of in vitro-matured human oocyte according to insemination method. Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 42 (4), 417-421 (2016).
  23. Ho, V. N. A., Pham, T. D., Le, A. H., Ho, T. M., Vuong, L. N. Live birth rate after human chorionic gonadotropin priming in vitro maturation in women with polycystic ovary syndrome. Journal of Ovarian Research. 11 (1), 70 (2018).
  24. Zheng, X., et al. Effect of hCG priming on embryonic development of immature oocytes collected from unstimulated women with polycystic ovarian syndrome. Reproductive Biology and Endocrinology. 10, 40 (2012).
  25. Tannus, S., et al. Predictive factors for live birth after in vitro maturation of oocytes in women with polycystic ovary syndrome. Archives of Gynecology and Obstetrics. 297 (1), 199-204 (2018).
  26. Cohen, Y., et al. Decreased pregnancy and live birth rates after vitrification of in vitro matured oocytes. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 35 (9), 1683-1689 (2018).
  27. Yazdanpanah, F., Khalili, M. A., Eftekhar, M., Karimi, H. The effect of vitrification on maturation and viability capacities of immature human oocytes. Archives of Gynecology and Obstetrics. 288 (2), 439-444 (2013).

Nachdrucke und Genehmigungen

Genehmigung beantragen, um den Text oder die Abbildungen dieses JoVE-Artikels zu verwenden

Genehmigung beantragen

Weitere Artikel entdecken

MedizinAusgabe 171IVMFertilit tserhaltungtransvaginale Entnahmeendoskopische gyn kologische VerfahrenPCOS

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Datenschutz

Nutzungsbedingungen

Richtlinien

Forschung

Lehre

ÜBER JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. Alle Rechte vorbehalten