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要約

本プロトコルは、コムギ植物における細胞壁関連酵素、主にβ-1,3-グルカナーゼおよびペルオキシダーゼを研究し、特徴付けるために使用される手順を説明しています。それらの活性レベルは、コムギとRWAの相互作用中に増加し、アブラムシの摂食を阻止する細胞壁強化を通じて植物の防御応答に関与しています。

要約

ロシア産コムギアブラムシ(RWA)に感染したコムギ植物は、過敏反応(HR)やβ-1,3-グルカナーゼやペルオキシダーゼ(POD)などの病原性関連(PR)タンパク質の誘導など、一連の防御応答を誘発します。この研究は、細胞壁関連PODとβ-1,3-グルカナーゼの物理化学的特性を特徴付け、RWASA2-小麦相互作用中の細胞壁修飾に対するそれらの相乗性を決定することを目的としています。感受性Tugela、中等度抵抗性のTugela-Dn1、および抵抗性Tugela-Dn5品種は、温室条件下で事前に発芽および植え付け、植え付け後14日で施肥し、3日ごとに灌漑しました。植物には、3葉の段階で同じRWASA2クローンの単為生殖個体20人が感染し、葉は寄生後1〜14日で収穫されました。細胞間洗浄液(IWF)を真空ろ過を用いて抽出し、-20°Cで保存した。 葉の残渣を粉砕して粉末にし、細胞壁成分に利用しました。PODの活性と特性評価は、5 mMのグアイアコール基質とH2O2を使用して決定され、470 nmでの吸光度の変化をモニタリングしました。β-1,3-グルカンおよびβ β-1,3-グルカン基質および-1,3-1,4-グルカン基質を用いたDNS試薬による加水分解物中の総還元糖の測定、540nmでの吸光度の測定、グルコース標準曲線を用いて、-1,3-グルカナーゼ活性、pH、および温度の最適条件を実証した。最適pHはpH 4〜9、最適温度は25〜50°C、熱安定性は30°C〜70°Cの間で決定されました。β-1,3-グルカナーゼ基質の特異性は、カードランおよび大麦β-1,3-1,4-グルカン基質を使用して、25°Cおよび40°Cで決定されました。さらに、β-1,3-グルカナーゼの作用機序は、ラミナリビオースからラミナリペンタオースまでを用いて決定されました。オリゴ糖加水分解生成物のパターンを薄層クロマトグラフィー(TLC)で定性的に分析し、HPLCで定量的に分析しました。この研究で提示された方法は、RWAを小麦に寄生させ、細胞壁領域からペルオキシダーゼとβ-1,3-グルカナーゼを抽出し、それらの包括的な生化学的特性評価を行うための堅牢なアプローチを示しています。

概要

ロシア産コムギアブラムシ(RWA)は、小麦や大麦に蔓延し、大幅な収量減少や穀物品質の低下を引き起こします。コムギは、耐性品種のβ-1,3-グルカナーゼおよびペルオキシダーゼ活性レベルを増加させるなど、いくつかの防御応答を誘発することにより蔓延に応答しますが、感受性品種は、初期の蔓延期間1,2,3,4でこれらの酵素の活性を低下させます。コムギ植物におけるβ-1,3-グルカナーゼとPODの主な機能には、抵抗性品種におけるカロース蓄積の調節と、RWAの蔓延中に細胞壁とアポプラスト領域で消光する活性酸素種(ROS)が含まれていました1,3,5,6,7。Mafaら6は、RWASA2の蔓延時に、耐性コムギ品種のPOD活性の増加とリグニン含有量の増加との間に強い相関関係があることを示しました。さらに、リグニン含有量の増加は、感染した抵抗性コムギ品種の細胞壁が強化され、RWAの摂食が減少したことを示しました。

ほとんどの研究者グループは、小麦/大麦-RWA相互作用中のアポプラストβ-1,3-グルカナーゼとPODを抽出して研究しました。さらに、これらの研究のほとんどは、これらの酵素が細胞壁領域での酵素の存在を測定することなく、RWAが蔓延した小麦植物の細胞壁に影響を与えると主張していました。顕微鏡技術を使用して、β-1,3-グルカナーゼ活性レベルがカロース調節に関連していることを示したり、耐性6,10のPOD活性と細胞壁修飾との相関関係を実証するために主要な細胞壁成分を抽出したりした研究はごくわずかです。β-1,3-グルカナーゼとPODの細胞壁との会合を調査できていないことは、研究者が細胞壁に結合した酵素を直接測定できる方法を開発する必要があることを示しています。

現在の方法では、細胞壁結合酵素を抽出する前に、葉組織からアポプラスティ液を除去することが必要であると提案されています。アポプラスチック液の抽出手順は、細胞壁結合酵素の抽出に使用される葉組織から2回実行する必要があります。このプロセスにより、アポプラスト酵素と細胞壁領域に見られる酵素との汚染と混同が減少します。そこで、本研究では、細胞壁に結合したPOD、β-1,3-グルカナーゼ、およびMLG特異的なβ-グルカナーゼを抽出し、それらの生化学的特性評価を行った。

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プロトコル

この研究は、フリーステート大学の環境およびバイオセーフティ研究倫理委員会(UFS-ESD2022/0131/22)の承認と許可を得て実施されました。ここに掲載されている試薬と機器の詳細は、 材料表に記載されています。

1.植物の成長条件

  1. 各小麦品種の250個の種子、すなわち、感受性ツゲラ、中等度耐性のトゥゲラ-Dn1、 および耐性ツゲラ-Dn5を別々のペトリ皿で発芽させます。
  2. 各シャーレに5 mLの蒸留水を加え、パラフィンフィルムで密封し、25°Cに設定した発芽チャンバーで2日間インキュベートします。
  3. 各品種の発芽種子を、制御された温室条件下で、1:1の土壌とピートモス(ポットあたり15植物)を含む15cmのポットに移植します。
  4. 温度レジームを夜間と昼間はそれぞれ18°Cと24°Cに設定します。
  5. 水道水を使用して3日ごとに植物を灌漑し、発芽後14日後に2 g / Lの肥料を供給します。
  6. 植物をネットで包まれたケージに入れ、第3葉のステージ2,6(各品種の4つの生物学的複製)まで成長させます。

2. RWASA2による小麦品種の蔓延

  1. Jimoh et al.11およびMohaseおよびTaiwe12によると、Tugela、Tugela-Dn1、およびTugela-Dn5小麦品種にRWASA2を寄生させます。
  2. 植物をケージ内の2つの別々のセットに保管します。ネットで覆われた成長チャンバーの各ポットに、植物ごとに同じRWASA2クローンの20人の単為生殖個体を1セット寄生させます。別の小麦植物のセットを、清潔なネットで成長チャンバーの下の別の部屋に保管し、それらをコントロールとして扱います。
    注意: 2つの処理を別々の部屋に保管し、ネットに包まれたケージで植物を覆います。また、研究で2つの異なるRWAバイオタイプを使用する場合は、1つのRWAバイオタイプが感染した植物と2つ目のバイオタイプが感染した植物をできるだけ遠ざけるか、RWASA2の相互汚染を避けるためにネットで覆われた成長チャンバーの下の別々の部屋に保管してください。
  3. 収穫は、短期給餌期間(1日、2日、3日)と長期給餌期間(7日、14日)の2つの異なる時間体制で2枚目と3枚目の葉を選び、湿らせたペーパータオルで包みます。
  4. 収穫した葉をすぐに氷の入った箱に移し、細胞間洗浄液(IWF)抽出前に葉の代謝を減らします。

3. アポプラストからの細胞間洗浄液(IWF)の抽出

  1. 小麦品種3種ほどの収穫した葉を7cmに切ります。
  2. 葉片を蒸留水で2回すすぎ、切り口6,13から細胞質汚染を取り除きます。
  3. 葉片を厚肉ガラス管に挿入し、サンプルを抽出バッファー(50 mM Tris-HCl、pH 7.8)に浸します。
  4. ウォータージェットポンプを使用して5分間真空浸透させ、抽出バッファーを葉に含浸させます。
  5. その後、ガラス管から葉片を取り出し、ペーパータオルで拭き取り乾燥します。
  6. 乾燥させた葉片を、穴あきディスクを取り付けた予冷済みの遠心分離チューブに垂直に挿入し、500 x g で4°Cで10分間遠心分離します。
  7. 100 μLピペットを使用して、上清を予冷した1.5 mL微量遠心チューブに回収します。
  8. 同じ葉の材料で抽出手順全体を繰り返します。
  9. 採取した上清を混ぜ合わせ、-20°Cで保存します。
    注:上清アリコートは、アポプラスト含有量またはIWFの供給源として扱われます。今回の研究ではIWFは使用していませんが、細胞壁に結合したβ-1,3-グルカナーゼとペルオキシダーゼ(POD)を抽出する前に、葉の組織からIWFを除去することが重要でした。

4. 細胞壁関連β-1,3-グルカナーゼおよびPODの抽出

注:IWF抽出後に残った葉残基は、全細胞壁タンパク質を抽出するために使用されました。

  1. 乳鉢と乳棒を使用して、葉の残留物を液体窒素で微粉末に粉砕します。
  2. 約200 mgの粉末葉組織を4 mLの抽出バッファー(50 mMリン酸ナトリウムと1%(w / v)ポリビニルポリピロリドン(PVPP);pH 5.0)を含む乳鉢に移し、続いて乳棒で滑らかなペーストに粉砕し、マイクロ遠心チューブに移します。
  3. 混合物を微量遠心チューブ内で氷上で3分間インキュベートした後、10,000 x g で4°Cで15分間遠心分離します。
  4. 上清(総タンパク質抽出物)を微量遠心チューブ(2 mLのアリコート)に収集し、研究全体のβ-1,3-グルカナーゼおよびPODの供給源として使用します。

5. タンパク質標準物質の測定

  1. Bradford法14に従って抽出物の総タンパク質濃度を決定します。
  2. 0.0 mg/mL、0.1 mg/mL、0.2 mg/mL、0.3 mg/mL、0.4 mg/mL、0.5 mg/mL、0.6 mg/mL、0.7 mg/mL、0.8 mg/mL、0.9 mg/mL、1.0 mg/mL の濃度のウシ血清アルブミン(BSA)溶液を調製し、50 mM リン酸ナトリウムバッファーに溶解してタンパク質標準品を調製します。
  3. 190 μL(0.25% v/v)のBradford試薬を含む96ウェルマイクロプレートに各BSA溶液10 μLを加えて、スタンダードを調製します( 材料表を参照)。
  4. 25°Cで20分間インキュベートし、マイクロプレートリーダーを使用して595 nmの吸光度を測定し、吸光度の値を使用してタンパク質濃度を定量するための標準曲線を調製します。
  5. タンパク質濃度の定量化
    1. 抽出した酵素10 μL(ステップ4)を、190 μL(0.25% v/v)のBradford試薬をトリプリケートに入れた96ウェルマイクロプレートに加えます。
    2. 室温(25°C)で20分間インキュベートします。
    3. マイクロプレートリーダー付きの分光光度計を使用して595 nmでの吸光度を測定し、吸光度の値を使用して、BSAをタンパク質標準として使用してタンパク質濃度を決定します(ステップ5.4で調製)。

6. β-1,3-グルカナーゼ活性のためのグルコース標準液を調製します

  1. 0.00 mg/mL から 1.0 mg/mL の濃度の標準溶液(0.0 mg/mL、0.1 mg/mL、0.2 mg/mL、0.3 mg/mL、0.4 mg/mL、0.5 mg/mL、0.6 mg/mL、0.7 mg/mL、0.8 mg/mL、0.9 mg/mL、1.0 mg/mL)の標準溶液を、グルコースを蒸留水に溶解して調製します。
  2. 各グルコース溶液300 μLと3,5-ジニトロサリチル酸(DNS)試薬600 μLを1:2の比率で1.5 mLの微量遠心チューブに加え、反応液を100°Cで5分間インキュベートします(DNS試薬の材料表を参照)(Miller et al.15)。
  3. 混合物を室温で冷ましてから、分光光度計を使用して540nmの吸光度を測定します。
  4. 平均吸光度値を使用して、β-1,3-グルカナーゼ酵素活性を決定するための標準曲線を作成します。

7. β-1,3-グルカナーゼ活性アッセイの測定

注:Tugela、Tugela-Dn1、およびTugela-Dn5から抽出された細胞壁結合β-1,3-グルカナーゼの酵素活性は、Millerらによって記述された修正された方法を使用して、0.5%(w / v)混合結合β-1,3-グルカン(MLG)および0.4%(w / v)β-1,3-グルカン基質の加水分解から放出される総還元糖の量によって決定されました。.タンパク質アリコートの入ったチューブは常に氷の上に置いてください。サンプルが凍結している場合は、氷上で解凍し、解凍後すぐに進めてください。

  1. 酵素抽出物200 μL(特に明記されていない限り、すべての反応でタンパク質濃度を20 μg/mLから90 μg/mLに保ちます)と50 mMクエン酸ナトリウムバッファー(pH 5.0)に溶解した基質300 μLを1.5 mL微量遠心チューブに加えます。
    注:すべての基質に対して酵素抽出物なしで並列ブランク反応を実行し(最初のブランク)、酵素ブランクは基質を含まない酵素抽出物(2番目のブランク)で構成されます。基質および酵素抽出物の両方を、それぞれ第1および第2の黒の緩衝液で置換した。
  2. 反応液を37°Cで24時間インキュベートし、100°Cで5分間加熱して反応を終了し、次いで10,000 x g で4°Cで10分間遠心分離します。
  3. 上清300 μLと600 μLのDNS試薬(1:2の比率)を新しい1.5 mL微量遠心チューブに混合し、100 °Cで5分間煮沸します。
  4. 溶液を室温まで冷却し、分光光度計を使用して540nmで吸光度を測定します。
    注:混合物中の総還元糖の濃度が高いと、暗褐色の溶液になり、分光光度計を使用して読み取るのが困難です。したがって、吸光度を読み取る前に、サンプルをさらに希釈する必要があります。
  5. 上記のステップ 6.4 で作成したグルコース標準曲線を使用して、標準曲線の SI 単位で酵素活性を測定します。
  6. 活性をμmolグルコース/h/mgタンパク質で表される特定の活性に変換するには、以下の式を使用します。
    比活性=[(酵素活性/180.16)×1000]/時間/タンパク質濃度
    注:mg / mL単位の酵素活性をg / mLに変換します。180.16 g/molはグルコースの分子量、1000はMをマイクロモルに変換する因子、時間は反応期間、タンパク質抽出物の濃度はmg/mLで表されます。β-1,3-グルカナーゼ活性の1単位は、1時間の反応期間内に基質から放出される1μmolのグルコースとして定義されます。

8. ペルオキシダーゼ(POD)活性の測定

注:Tugela、Tugela-Dn1、およびTugela-Dn5小麦品種の細胞壁結合ペルオキシダーゼ活性は、グアイアコール16から単位時間あたりに産生されるテトラ-グアイアコールの形成を定量化することによって決定されました。

  1. 酵素抽出物30μL、1%(v/v)H2O230μL、 5mMグアイアコール970μLを25°Cのキュベットに加えます。
    注:酵素抽出物を含まないブランク反応(最初のブランク)と、基質を含まない酵素サンプル用の別のブランク(2番目のブランク)を行います。酵素サンプルまたは基質サンプルは、第1ブランクおよび第2ブランクでそれぞれ50 mMリン酸ナトリウム緩衝液に置換しました。
  2. 分光光度計の運動モードを使用して、470nmでの吸光度の変化を監視します。
  3. グラフが線形であった傾きを特定し、それを吸光度値として使用します。
  4. 平均吸光度を計算し、POD活性の計算に使用します。
  5. グアイアコールのモル吸光係数(26.6 mM-1 cm-1)を使用してペルオキシダーゼ活性を計算し、その活性をμmolテトラ-グアイアコール/min/mgタンパク質で表します。
  6. Mafa et al.6 で使用した式を使用して POD アクティビティを計算します。
    ポッド活性= [(ΔABS × DF) ÷タンパク質濃度] × 26.6 mM-1 cm-1 × 1 cm
    注:ここで、ΔABS =平均吸光度。DF = 希釈係数;26.6 mM-1 cm-1 = グアイアコールの吸光係数。

9. PODの特性評価

注:POD特性評価アッセイは、ステップ8で説明した同様の方法に従って、Tugela、Tugela-Dn1、およびTugela-Dn5の侵入後3日(dpi)酵素抽出物を使用して、反応バッファーと温度をわずかに変更して実施しました。実験が行われている間、酵素サンプルは常に氷上に保管されていました。平行ブランク反応を使用して、反応を四重化して実行します。

  1. 最適なpHアッセイを行うには、以下の手順を実行します。
    1. グアイアコール基質を50 mMバッファー(クエン酸ナトリウム、pH 4および5)、リン酸ナトリウム(pH 6および7)、およびTris-HCl(pH 8および9)に溶解します( 材料表を参照)。
    2. ステップ8で説明したように、反応を25°Cで実行します。
  2. 最適な温度アッセイを行うには、以下の手順を実行します。
    1. 反応液をそれぞれ25°C、30°C、40°C、50°Cで分析します。
    2. 緩衝液pH 5(pH optimum)に溶解したグアイアコール基質を使用し、ステップ8で説明したように反応を実行します。
  3. 耐熱性アッセイの場合は、以下の手順を実行します。
    1. 反応を開始する前に、酵素を37°C、50°C、および70°Cで30分間インキュベートします。
    2. ステップ8で説明した方法に従って、50 mMクエン酸ナトリウムバッファー(pH 5)を使用し、40°C(最適温度)で反応を実行します。

10. β-1,3-グルカナーゼの特性評価

注:ステップ7で説明した方法に従って、3 dpi酵素抽出物を使用し、反応バッファーと温度にいくつかの変更を加えながら、特性評価アッセイを実施します。反応を四重極で実行し、各基質に対して平行なブランク反応を行います。

  1. 最適なpHアッセイを行うには、以下の手順に従ってください。
    1. MLGおよびβ-1,3-グルカン基質を50 mMバッファー(クエン酸ナトリウム、pH 4および5)、リン酸ナトリウム(pH 6および7)、およびTris-HCl(pH 8および9)に溶解します。
    2. ステップ7の説明に従って反応を実行します。
  2. 最適な温度アッセイを行うには、以下の手順に従ってください。
    1. 反応液をそれぞれ25°C、30°C、40°C、50°Cで分析します。
    2. 50 mMクエン酸ナトリウム緩衝液(pH 5)に最適なpH(ステップ10.1で取得)で溶解したMLGおよびβ-1,3-グルカン基質を使用し、ステップ7で説明したように反応を実行します。
  3. 熱安定性アッセイについては、以下の手順に従ってください。
    1. 反応を開始する前に、酵素を37°C、50°C、および70°Cで30分間インキュベートします。
    2. 50 mMクエン酸ナトリウム緩衝液(pH 5)に溶解した基質を用いて反応を行い、25°Cおよび40°Cで24時間インキュベートします。

11. β-1,3-グルカナーゼの異なるグルカン基質に対する作用機序の評価

注:グルカン基質は、その骨格に同じグルコース残基を含んでいるが、グルコピラノースユニット間のグリコシド結合は多様であり、αまたはβ配向をとることができる17。グリコシド結合は、グルコース分子のいくつかの炭素原子間に形成され、それらの化学構造を定義することができます、例えば、β-1,3-グルカン、β-1,4-グルカン、および混合結合-β-1,3-1,4-グルカン(MLG)18,19,20。β-1,3-グルカナーゼの作用機序は、RWASA2に感染したTugela、Tugela-Dn1、およびTugela-Dn 5サンプル(酵素源)と、次の基質β-1,3-グルカン(CM-カードラン)、MLG(大麦由来)、およびβ-1,4-グルカン(AZO-CM-セルロース)を使用して決定しました。作用機序は、0.1%(w/v)β-1,4-グルカン、0.4%(w/v)β-1,3-グルカン、または0.5%(w/v)MLG基質を使用して、最適なアッセイ条件(25°Cおよび40°C、pH 5.0)で決定します。

  1. 基質を50 mMクエン酸ナトリウム緩衝液(pH 5)に溶解します。
  2. 酵素抽出物200μLと基質300μLを1.5mLの微量遠心チューブに加えます。
  3. 反応液を25°Cと40°Cの2つの別々の温度で8時間インキュベートします。
  4. 100°Cでの加熱による反応の終了。
  5. β-1,3-グルカンとMLGの反応混合物を10,000 x g で4°Cで10分間遠心分離し、ステップ7.3の説明に従って進めます。
  6. β-1,4-グルカンの場合、100°Cで反応を終了した後、混合物を800μLの無水エタノールで希釈し、4°Cで10,000 x gで10分間遠心分離します。
  7. 上清をカーブに移し、分光光度計で590 nmの吸光度を測定し、製造元の手順( 材料の表を参照)を使用してβ-1,3-グルカンのβ-1,3-グルカナーゼ活性を計算し、活性を単位/ mgタンパク質で表します。

12. β-1,3-グルカナーゼの作用機序の決定

注:RWASA2に感染したTugela、Tugela-Dn1、およびTugela-Dn5誘導されたβ-1,3-グルカナーゼの作用機序は、ラミナリンオリゴ糖(LAM)でアッセイされ、重合度(DP)は5〜2でした。薄層クロマトグラフィー(TLC)、液体クロマトグラフィー質量分析(LC-MS)、およびグルコースオキシダーゼペルオキシダーゼ(GOPOD)キットを使用して、β-1,3-グルカナーゼが基質を加水分解するために必要なDPを決定します。TLCは定性分析に、LC-MSは定量分析に用い、反応後の加水分解物中のオリゴ糖の濃度を決定した21。

  1. β-1,3-グルカナーゼの作用機序の反応を準備します
    注:濃縮タンパク質抽出物を10 kDa遠心分離機濃縮膜フィルターで調製し、実験用の濃縮および非濃縮のRWASA2感染タンパク質抽出物を用意します。
    1. 各品種から抽出した酵素を濃縮するには、抽出物5 mLを10 kDa遠心濃縮メンブレンフィルターに移します。
    2. 抽出物を含むメンブレンフィルターチューブを15,000 x g で4°Cで30分間遠心分離します。
    3. ラミナリペンタオース(LAM5)、ラミナリテトラオース(LAM4)、ラミナリトリオース(LAM3)、およびラミナリビオース(LAM2)( 材料表を参照)を50 mMクエン酸ナトリウム(pH 5)に溶解して、10 mg/mLにします。
    4. 反応を開始するには、タンパク質抽出物20 μLとラミナリペンタオース(LAM5)、ラミナリテトラオース(LAM4)、ラミナリトリオース(LAM3)、およびラミナリビオース(LAM2)40 μLを加えます。
    5. 反応を40°Cで16時間インキュベートし、100°Cで5分間煮沸して終了します。
  2. 薄層クロマトグラフィー(TLC)の実施
    1. シリカ板4枚を10cm2枚に切り、片方の端の底から1cmのスペースを残して、プレートの表面に1本の線を引きます。
    2. 線の上にドットをマークし、ラミナリンオリゴ糖のさまざまな品種とDPに従って、1 cm間隔でマークします。濃縮タンパク質抽出物用に2枚のシリカプレートを取り、他の2枚を非濃縮抽出物用に取ります。
    3. 反応混合物3μLをシリカプレート上の対応するマークされたスポットに3〜5倍加え、プレート上のスポットを完全に乾かしてからプロセスを繰り返します。
    4. n-ブタノール:酢酸:水(2:1:1 v/v/v)の移動相が入ったTLCタンクにシリカプレートを静かに入れ、サンプルのスポットがある側を底に置きます。
    5. 移動相をプレートの下から上に移動するのを待ちます。
      注: この手順には約 2 時間かかる場合があります。サンプルが分離している間は、タンクを動かしたり邪魔したりしないでください。
    6. プレートを移動相から取り出し、室温で乾燥させます。
    7. 小さな容器に染色液を加え、シリカプレートを0.3%(w / v)ナフトールの染色液に95%(v / v)エタノール、5%(v / v)硫酸を使用して5秒間静かに沈め、取り出してから室温で乾燥させます。
      注意: このステップでは、加熱ブロック/オーブンのスイッチを入れ、温度を100°Cに設定します。
    8. 乾燥シリカプレートを加熱ブロックに置き、100°Cで7〜10分間、または青紫色の斑点が現れるまで加熱します。青紫色の斑点を示すシリカプレートの写真を撮り、それらを記録します。
  3. ラミナリン-オリゴ糖加水分解物の濃度を定量化
    注:LAM加水分解物の濃度は、濃縮タンパク質抽出物と非濃縮タンパク質抽出物の両方について定量化されます21。
    1. C18(炭水化物4.6 × 250 mm)カラムに各サンプル20 μLを添加し、水(溶媒A)とアセトニトリル(溶媒B)のグラジエントを使用して500 μL/minの流速で100% Bから60% Bまで10分間で分離し、その後、合計実行時間20分のカラム再平衡化ステップを行い、カラムの再平衡化を可能にします。
    2. 溶出する分析種を、400°Cのヒーター温度で質量分析イオン源の負エレクトロスプレーモードでイオン化し、余分な溶媒、30 psiネブライザーガス、30 psiヒーターガス、および20 psiカーテンガスを蒸発させます。
    3. クラスタリング解除電位を 350 V に設定します。
    4. 質量分析計で溶出する分析種を、150 Daから1000 Daの範囲で3秒の滞留時間でQ1スキャンモードで分析します。
    5. スプレッドシートに分析物の濃度を記録します。
  4. グルコース濃度の定量化
    1. メーカーの指示に従って、GOPOD試薬を使用してラミナリン加水分解によって生成されたグルコース濃度を分析します22,23。
    2. 分光光度計の固定モードで510nmの吸光度を測定します。

13. データの収集と分析

  1. 蔓延またはサンプル収集中のバイアスを避けるために、すべての実験をランダム化し、4倍で分析を実施します。
  2. 特に明記されていない限り、平均±標準偏差を使用して、収集された実験データから生成されたグラフや表の値を表します。
  3. Microsoft Excel を使用して、すべてのデータを分析し、グラフを生成します。
  4. 互換性のあるソフトウェアで統計分析を実行します。
    注:多因子分散分析(ANOVA)を実行して、治療とフィッシャーLSDとの間の有意性を検定し、アルファ値0.05で均質なグループを検定します。

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結果

コムギ品種の4つの生物学的複製物(Tugela、Tugela-Dn1、およびTugela-Dn5)は、3葉の成長段階でRWASA2に感染しました。蔓延後、葉は1、2、3、7、および14dpiで収穫されました。対照処理にはRWASA2が寄生していなかったため、実験結果はストレスにさらされていない小麦植物と同等になりました。実験は四重極で行われ、結果は平均値として提示されました。

RWASA2 に感?...

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ディスカッション

小麦と大麦は、ロシアのコムギアブラムシ(Diuraphis noxia)7,24を含むアブラムシ種が頻繁に蔓延する穀物作物です。抵抗性コムギ植物は、カロースとリグニンの蓄積を調節することにより、細胞壁を修飾するために、蔓延期間を通じて防御応答としてPODおよびβ-1,3-グルカナーゼ活性のアップレギュレーションを誘導します

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開示事項

著者は、この作品に関与する利益相反を宣言しません。

謝辞

M.マファはNRF-Thuthuka(参照番号:TTK2204102938)から資金提供を受けました。S.N. Zondoは、修士号を取得するために国立研究財団大学院奨学金を受け取りました。著者らは、この研究で使用された種子を提供してくれた農業研究評議会-小粒穀物(ARC-SG)研究所に感謝しています。この資料で表明された意見、調査結果、および推奨事項は著者のものであり、したがって、資金提供者はそれに関していかなる責任も負いません。

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資料

NameCompanyCatalog NumberComments
10 kDa Centrifuge concentrating membrane deviceSigma-AldrichR1NB84206For research use only. Not for use in Diagnostic procedures. For concentration and purification of biological solutions.
2 g LaminaribioseMegazyme (Wicklow, Ireland)O-LAM2High purity laminaribiose for use in research, biochemical enzyme assays and in vitro diagnostic analysis.
3 g LaminaritrioseMegazyme (Wicklow, Ireland)O-LAM3High purity laminaritriose for use in research, biochemical enzyme assays and in vitro diagnostic analysis.
3,5 Dinitro salicylic acidSigma-AldrichD0550Used in colorimetric determination of reducing sugars
4 g Laminaritetraose Megazyme (Wicklow, Ireland)O-LAM4High purity laminaritetraose for use in research, biochemical enzyme assays and in vitro diagnostic analysis.
5 g LaminaripentaoseMegazyme (Wicklow, Ireland)O-LAM5High purity laminaripentaose for use in research, biochemical enzyme assays and in vitro diagnostic analysis.
95% Absolute ethanolSigma-Aldrich107017Ethanol absolute for analysis
acetic acidSigma-AldrichB00063Acetc acid glacial 100% for analysis (contains acetic acid)
Azo-CM-CelluloseMegazyme (Wicklow, Ireland)S-ACMCThe polysaccharide is dyed with Remazolbrilliant Blue R to an extent of approx. one dye molecule per 20 sugar residues.
Beta glucan (barley) Megazyme (Wicklow, Ireland)G6513A powdered substrate, less soluble in water. Used in determining β-1,3-glucanase activity.
Bio-Rad Protein Assay DyeBio-Rad Laboratories, South africa500-0006Colorimetric assay dye, concentrate, for use with Bio-Rad Protein Assay Kits I and II 
Bovine serum albumin (BSA)Gibco Europe810-1018For Laboratory use only
Citrate acidSigma-AldrichC0759For Life Science research only. Not for use in diagnostic procedures.
CM-curdlan Megazyme (Wicklow, Ireland)P-CMCURPowdered substrate for determining β-1,3-glucanase activity. Insoluble in water.
D-GlucoseSigma-AldrichG8270For Life Science research only. Not for use in diagnostic procedures.
GuaiacolSigma-AldrichG5502Oxidation indicator. Used for determining peroxidase activity.
Hydrogen peroxideBDH Laboratory Supplies, England10366Powerful oxidising agent.
Mikskaar Professional SubstarteMikskaar (Estonia)NIPeat moss-based seedling substrate.
Multifeed fertiliser (5.2.4 (43))Multifeed ClassicB1908248A water soluble fertiliser for young developing plants and seedlings with a high phosphorus (P) requirement to ensure optimum root development.
NaphtholMerck, GermanyN2780Undergoes hydrogenations in the presence of a catalyst.
PhenolSigma-Aldrich33517Light sensitive. For R&D use only. Not for drug, household, or other uses. SDS available
Potassium sodium tartrate tetrahydrate (Rochelle salt)Sigma-AldrichS2377used in the preparation of 3,5-dinitrosalicylic acid solution used in the determination of the reducing sugar.
Silica plate (TLC Silica gel 60 F254)Sigma-Aldrich60778-25EASilica gel matrix, with fluorescent indicator 254 nm
Sodium hydroxideSigma-AldrichS8045For R&D use only. Not for drug, household, or other uses.
Sodium metabisulfiteSigma-Aldrich31448Added as an antioxidant during the preparation of 3,5-dinitrosalicylic acid solutions.
Sodium phosphate dibasic heptahydrateSigma-AldrichS9390Used as a buffer solution in biological research to keep the pH constant.
Sodium phosphate monobasic heptahydrateSigma-Aldrich71500An inorganic compound, which is soluble in water. Used as a reagent in the development of silicate-based grouts.
Statistical analysis softwareTIBCO Statisticaversion 13.1
Sulfuric acidMerck, Darmstadt, Germany30743Sulfuric acid 95-97% for analysis of Hg, ACS reagent.
Tris-HClSigma-Aldrich10812846001Buffering agent in incubation mixtures. It has also been used as a component of lysis and TE (Tris-EDTA) buffer. For life science research only. Not for use in diagnostic procedures.
UV–Visible SpectrophotometerGENESYS 120 
 NI = not identified.

参考文献

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