網膜血管系における糖尿病誘発性付着性白血球の定量化

要約

網膜血管系と付着性白血球の壁を標識する方法を示します。これらの付着性白血球は、炎症のパラメータまたはその炎症の治療法に対する反応として、蛍光顕微鏡でカウントできます。

要約

白血球症とは、血管系の管腔壁への白血球の付着を指します。この白血球と血管壁との相互作用は炎症の特徴であり、糖尿病性網膜症を含むさまざまな組織や疾患の毛細血管閉塞と因果関係があります。

白血球増加症は、生命を脅かす白血球増加症の合併症として何年も前から報告されており、臨床的にしか診断できません。この現象の重要性を考慮して、その発現につながる可能性のあるメカニズムを理解するために集中的な研究が行われてきました。しかし、実験室の設定では、イベントの深刻度を視覚化および定量化するためのゴールドスタンダードの手法はありません。

以下に要約する方法では、最初に血管系に緩衝液を注入して血液を除去し、次にコンカナバリンAを血管系に灌流して、露出したすべての細胞壁に結合し、白血球に特に明るい染色を引き起こします。結合していないすべての血液細胞を除去する灌流が成功した場合、蛍光標識された残りの白血球は血管系に結合し、利用可能な蛍光顕微鏡を使用して手動で定量できます。

概要

白血球(白血球、WBC)は、血液流動性の維持や血栓の分解能の調節など、血管系の最適な機能に重要な役割を果たします¹。また、血管系の管腔壁に長時間付着し、少なくとも一時的には白血球^{安定症として知られる}現象である血管閉塞を引き起こすなど、いくつかの病的状態でも重要な役割を果たします^2,3。

糖尿病性網膜症は、長期糖尿病の最も一般的な合併症の1つであり、米国および世界中で20〜75歳の個人の視覚障害と失明の主な原因の1^{つです4。}網膜血管系のゆっくりと進行性の変性は、疾患の初期段階の臨床的に意味のある要素であり、一部の患者では網膜虚血を引き起こし、その結果として網膜血管新生が行われます^5,6。累積的な証拠は、炎症が網膜症の発症に重要な役割を果たしていることを示し^{ており7、}白血球減少症は無症候性の血管内炎症反応と考えられています。白血栓症は、糖尿病の初期段階で、検出可能な臨床症状が発症するかなり前に発生します^8,9,10。糖尿病における付着性白血球による網膜血管の繰り返しの詰まり(慢性白血球症)は、毛細血管の血管閉塞および変性に寄与する可能性がある11,12,13。この白血球避縮の重症度は病理学的に重要であり、疾患プロセスの重症度を監視したり、研究環境での治療の有効性を評価したりするために使用できます。

高血糖微小環境が白血球うっ滞に及ぼす特異的な影響をさらに研究するために、in vitroモデルが設計されました。単離された網膜微小血管内皮細胞は、2Dまたは3D培養モデル(microvasculature-on-a-chip¹⁴)のいずれかで増殖および配置して、血管内皮(血管の内腔を舗装する細胞単層)を複製することができる。ただし、これらのモデルの実験的なバリエーションにより、その使用は制限されます。in vivo でのヒト網膜血管系における白血球感染の研究はまだ限られているため、網膜白血球感染に関する現在の知識のほとんどは、糖尿病性網膜症の動物モデルから得られています^13,15。

このレポートの目的は、白血球うっ滞のパラメーターとして網膜血管系に付着した白血球を定量化するための、他の場所で説明されている方法¹⁶に基づく標準プロトコルを説明することです。このアッセイは、悪性腫瘍^3,17,18,19およびいくつかの感染性およびアレルギー状態²⁰など、白血球うっ滞を呈する他の血管疾患の研究に用いることができる。このプロトコルは、特殊な機器を必要とせずに、あらゆる基礎研究所で実装できます。以下に要約する方法では、血管系は最初に血液を除去するために緩衝液で灌流され、次に、コンカナバリンAが血管系に灌流され、そこで露出した全ての細胞壁に結合し、白血球の特に明るい染色を引き起こす21,22,23。結合していないすべての血液細胞を除去する灌流が成功した場合、血管系に結合した残りの蛍光標識白血球は、手元にある任意の蛍光顕微鏡を使用して手動で定量できます。

プロトコル

このプロトコルは、カリフォルニア大学アーバイン校の動物管理・使用委員会(IACUC)によって審査・承認されており、実験動物の世話と使用に関する政府の規制に準拠しています。このプロトコルには停止点はありません。マウスあたりの平均時間は30分です。

1. 灌流ステージの準備

1. 0.9%生理食塩水バッグとコンカナバリンA溶液を37 ^°Cの水浴で20〜30分間温めてから使用してください。
   注意: コンカナバリンAを光から保護します(ホイルで覆います)。
2. 処置が行われる表面に滴り落ちる血液や液体を入れるためのトレイを設置します。トレイの上に、吸収性ベンチアンダーパッドまたは吸収性材料で覆われた加熱パッドを置きます。
   注:目標は、冷却により灌流中に血液を除去するのがより困難になるため、処置中にマウスの体が熱を失うのを避けることです。

2.圧力注入器のセットアップ

1. 0.9%生理食塩水の袋、I.V.カテーテルセット、4方向弁活栓、および強制針を直列に接続します。
2. 0.9%生理食塩水バッグをネットと圧力注入器の空気袋の間に挿入します。生理食塩水バッグを気嚢の背面にあるフックに掛けます。IVポールループを使用して、IVポールに圧力注入器を吊るします。
3. システムを数分間開いて(実行して)、流量を18〜20 mL / min²⁴に設定して、すべての気泡のラインとポートをパージします。圧力注入器の気袋を膨らませるには、ストップコックハンドルを回して開いているストップコックベントの方を向いてから、圧力計が希望の圧力を示すまで膨張バルブをポンプで送ります。各マウスを灌流する前に、圧力を再調整してください。収縮させるには、ストップコックハンドルをインフレバルブに向かってまっすぐ下に回します。
   注:0.9%生理食塩水バッグが新しい場合、通常150mmHgの圧力で目的の流量が得られます。ただし、圧力注入器のブランドや0.9%生理食塩水バッグの使用期間中の変動により、圧力は経験的に調整する必要があります。
4. 温めたコンカナバリンA溶液を充填した10mLシリンジを4方向弁に取り付けます。
   注意: シリンジを光にさらさないように保護します(ホイルで覆います)。

3.麻酔

1. ケタミン:キシラジンの腹腔内(I.P.)注射により麻酔を送達します。マウスの手術/処置に最も広く使用されている用量は、100:10 mg / kg体重²⁵です。ペダル反射(つま先をしっかりとつまむ)によって麻酔を評価します。
   注:この用量は、45〜60分の外科的麻酔の持続時間で4〜6分の発症を提供します。麻酔カクテルは、室温で最大2週間保存できます。

4. コンカナバリンAによる経心灌流および染色

1. マウスを仰臥位の灌流ステージに置き、胸腔と腹腔の露出を可能にします。
2. 剣状突起を視覚的に識別し、止血剤を利き手に持って、皮膚を固定してロックします。止血剤が固定されたら、それを利き手ではない手に移し、皮膚を持ち上げます。
3. 利き手でハサミを使用し、背骨に対して90°の角度で皮膚のパッチを切り取り、外腹壁を露出させます。
4. 剣状突起と胸郭が見えてきたので、臓器や主要な血管を切らないように注意しながら、腹壁を両側に解剖します。
5. 横隔膜が見えてきたら、横隔膜を通して心室と肺を視覚化します。はさみの先端を使用して、臓器や主要な血管を切らないように注意しながら、背骨に近い側面の1つの横隔膜を切り取ります。
   注:横隔膜のこの「穴」は、負の胸腔内圧を大気圧と平衡化し、気胸が発生して肺が崩壊し、心臓が収縮し、肺や心臓を損傷することなく横隔膜の解剖が容易になります。
6. 肋骨を通って肺と平行に解剖を続けて、胸の「フラップ」を作成します。止血剤を放出し、矢状面の剣状突起を切断します。剣状突起を手動で静かに大きく開きます。心臓の4つの部屋を観察してください。
7. 利き手ではない手で鉗子を使用して、心臓の頂点近くをつかみます。利き手で、強制針(点滴カテーテルに取り付けられている)を持ち、心臓の頂点に穴を開けます。左心室の完全な穿孔または肺血管系に到達し、その後全身性血管系の灌流不良を避けるために、強制針のボール先端の端の配置を確認します。湾曲した蚊の鉗子を使用して強制針を所定の位置に固定するか、IVストップコックを操作しながら手で保持します。
8. ストップコックを0.9%生理食塩水まで開き、ほぼ同時に、はさみで右心室を切り開きます。2〜3分間灌流します。灌流時間中は、針を左右および上下にゆっくりと動かして、血管系のねじれを減らし、心臓からの血液の排出を増やします。
9. 生理食塩水で灌流した後、活栓のハンドルを回して生理食塩水からの流れを遮断し、注射器から強制針への流れを待ちます。コンカナバリンA溶液を定常状態の速度で手で灌流します。.10 mLのコンカナバリンA溶液が30〜35秒で分注されていることを確認します。.
10. コンカナバリンAで ?? 流した後、バルブを回してシリンジからの流れを遮断し、0.9%生理食塩水から再び強制針への流れを待ちます。.0.9%生理食塩水でさらに2〜3分間灌流します。心臓から強制針を取り外します。
    注:このプロトコルで提案されているコンカナバリンAは、フルオレセイン(緑)に結合しています。ただし、他の蛍光色素に結合したコンカナバリンAも利用可能です。

5. 新鮮網膜の核形成と分離

1. マウスを横にして、利き手ではない方の手を使用して、人差し指と親指をそれぞれ上まぶたと下まぶたに置きます。まぶたと皮膚を指でそっと引っ込め、目をプロップトースして、眼窩から部分的に膨らむようにします。
2. 目を支えた状態で、利き手で湾曲したハサミを使用し、目の下を45°の角度ですくい取ります。筋肉の付着部と視神経を切断します。ヘラと同じハサミを使用して、目を小さな容器に移すか、直接解剖顕微鏡のステージに移します。
   注意: このステップ中に目の後ろを切り取らないように注意し、目を引っ張らないように注意してください。
3. デンタルワックスに目を置いて、地球を開きます。解剖顕微鏡の下で、利き手ではない手を使用して、マイクロ鉗子で強膜のひだまたは後眼に外部に付着したままの筋肉の残骸を保持し、角膜が横を向くように眼の向きを合わせます。
   注意: 地球儀を開くときに目が動いたり滑ったりするのを防ぐために、濡れた糸くずの出ない組織を歯科用ワックスの上に置くことができます。
4. テフロンコーティングされたカミソリの刃の鋭い角の1つを使用して、リンバス(角膜-強膜接合部)の後ろに1〜2mmの切開を行います。マイクロ鉗子で強膜のひだまたは筋肉を保持し、最小限の下向きの力でブレードをリンバス全体に引き込みます。かみそりでカットを続けて、前眼部(角膜、虹彩、水晶体、硝子体)を後眼部(アイカップ)から完全に分離します。
   注意: 前後に見ないでください。
5. 二等分されたアイカップをPBS付きの小さなシャーレに移します。
   注意: 網膜がティッシュペーパーに接触することは避けてください(手順5.3の注意)は、紙にしっかりとくっついて回復することが不可能になるためです。
6. 強膜のひだまたは強膜の外側に残っている筋肉をマイクロ鉗子でつかみます。マイクロスパチュラを使用して、アイカップの周囲のリンバスのすべての接続を切断することにより、網膜を強膜から完全に切り離します。マイクロスパチュラで網膜を強膜からすくい取ります。網膜が視神経によって強膜に付着している場合は、網膜と強膜の間にマイクロハサミを滑り込ませて視神経を切断します。
7. 網膜の周辺にある硝子体筋と毛様体筋の残骸をすべて取り除きます。分離された網膜を直ちにPBSのあるスライドに移します。
   注:研究者の好みに応じて、他の網膜分離技術を使用できます。

6.網膜のフラットマウント

1. 固定されていない網膜を少量のPBSでスライド上にレイアウトします。マイクロスパチュラを使用して、硝子体側を上にして網膜をそっと向けます。網膜が内側に折りたたまれている場合は、マイクロスパチュラを使用して網膜を広げている間、マイクロ鉗子を使用して網膜の端を保持します。
2. 網膜に4〜5個の放射状に切り込みを入れて、網膜が平らになるようにします(クローバーの葉のパターン)。
3. 糸くずの出ないティッシュを使用して、網膜から余分なPBSを乾かします。
   注:組織で網膜に触れないでください。そうしないと、サンプルが失われます。網膜を平らに保つためには、カバースリップが望ましいです。

7. 顕微鏡検査

注:このステップには、GFP/FITC(480/530 nm)チャンネルを備えた任意の蛍光顕微鏡を使用できます。この研究では、488チャンネルの参照顕微鏡と画像取得用の関連ソフトウェアを使用しました。

1. 最近フラットマウントされた網膜を顕微鏡下で100倍(対物レンズ10倍)で観察し、組織全体(右から左または上から下)を系統的にスキャンすることにより、蛍光標識された白血球(手動)をカウントします。
   注:白血球は、円形または楕円形を示すことができる単一の蛍光ドットです。それらは直径12〜15μmであり、網膜毛細血管からはみ出していません(構造は血管の内腔によって完全に拘束されています)。
2. 目的の倍率で代表的な画像を取得し、選択したソフトウェア(ImageJ [Fiji]など)で画像の後処理を実行します。
3. 網膜あたりの白血球としてカウントを表します。データを平均±標準偏差でグラフ化します。

結果

適切に実行された灌流および染色プロトコルは、コンカナバリンAで描かれた完全な網膜血管系を示します(図1)。マウスの灌流が不十分な場合、血管ツリー全体の標識と、その後の内腔に付着した白血球の分析が妨げられます(図2)一方、注射器の急速な圧迫(30〜35秒未満)による過度の圧力は、血管透過性と血管の破裂を引?...

ディスカッション

ヒトの白血球減少症とは、白血球増加症に関連する症状と臨床所見を指し(総白血球(WBC)数>100,000/μL)であり、医療上の緊急事態です²⁰。白血球減少症を引き起こすメカニズムは、現在集中的に研究されています。これまで、 ヒトの生体内で の白血球増殖の研究はまだ可能ではなく、研究者はこのプロセスを理解するために動物モデルに頼る必?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
10 mL syringe
4-way stopcock Luer lock I.V. line valve	Baxter	2C6204
Concanavalin A solution	Vector	FL-1001	Prepare in PBS 1 mg/mL
Dissecting tools set			Includes hemostats, scissors and forceps
FIJI			Software for image processing
Fluorescence microscope	Nikon	Eclipse Ni
Forceps, Dumont #5, Biological grade tip	Electron Microscopy Sciences (EMS)	72700-D
Gavage Needle 1.25 mm OD barrel tip x 30 mm	Fine Science	18060-20
Halstead Mosquito Forceps	Fisher Scientific	13-812-10
I.V. Catheter set with regulating clamp 70 inches	Baxter	2C5417s
I.V. Pole
Lint free tissue			Kimpwipes is an option
Micro dissecting spring scissors, Vannas, 3 mm straight	ROBOZ	RS-5620
Micro spatula	Fine Science Tools (FST)	10091-12
Nikon		NIS-Elements (AR 5.30.03 64-bit)	Software for image acquisition
Petri dish (100 mmx15 mm)	Corning	351029
Phosphate buffered saline (PBS)
Pink dental wax	Electron Microscopy Sciences (EMS)	72670
Pressure infuser	Infusurge	4010
Razor blades, GEM single edge stainless steel, Teflon coated	Electron Microscopy Sciences (EMS)	71970
Saline 0.9%, veterinary grade, 1000 mL	Baxter	04925-04-10
Small dissecting scissors, curved blunt end 22 mm	ROBOZ	RS 5983