この研究は、「仮想肝ネットワーク」の資金教育研究ドイツ連邦Ministery（BMBF）によってサポートされていました。私はビデオを生成すると音声を記録するためのアニメーションとイザベル素早く方向を変えるの作成に彼らの助けのためのイエナ大学病院のメディアセンターからフランクシューベルトとルネグンペルトに感謝したいと思います。

住宅·実施し、すべての手順は、ドイツの動物保護法制に従った。 1。センサーキャリブレーション（校正用センサメーカーの指示に従ってください） 1.1）ミラーカテーテル校正。 30分前にバランスをとる（ゼロ）とキャリブレーション用滅菌水または生理食塩水でカテーテルの先端を事前に浸します。 <ol><li>ブリッジ·アンプのmillar1チャンネルにミラーセンサーを接続し、水柱にミラーセンサーチップを挿入します。 </li><li> 0 CMH 2 Oに水柱値を設定データ解析ソフトウェアのウィンドウでは、ブリッジは、それを増幅し、ゼロを選択します。ベースライン値0 CMH 2 Oを設定することができる。 </li><li> 20 CMH 2 Oに水柱値を設定データ解析ソフトウェアのウィンドウの進捗を実行し、停止します。増幅するブリッジの窓に「単位」を選択し、それに応じて0〜20 ​​CMH 2 Oのベースラインを設定。 &lt;CMHへの「ユニット」を調整サブ&gt; 2 O </li><li>同じように、CAPを測定するためのmillar2のキャリブレーション（2ベースライン90,110 CMH 2 Oを設定します）。 </li></ol> 1.2）血流プローブ較正<ol><li>脱イオン水にプローブを入れてください。遷音速流量プローブシステムとプローブを接続します。 </li><li>データ解析ソフトウェア]ウィンドウで、フロープローブをゼロに増幅する入力を選択します。単位を調整します。 </li><li>信号を収集するために「テストチャンネル」のボタンを押します。信号が3-4の棒を持っている場合は、信号が良好であることを意味します。良好な信号が取得された場合には、手順を継続することができる。 </li><li>値がキャリブレーションされているか否かを見るために「ゼロチャンネル」にあるボタンとスケールチャネルを押します。 </li><li>後で測定のための「測定チャネル」のボタンを押します。 </li></ol> 2外科的処置のためのマウスを準備<ol><li>誘導チャンバ内にマウスを置き、2％イソフルランでマウスを麻酔し、0.3ml /分の酸素。マウスの足指ピンチ引っ込め反射が存在しない場合に動作を行うことができる。 </li><li>左首と腹部を含む外科領域の毛皮を剃る。 </li><li>動作テーブルの上でマウスを置き、テープを使用して固定します。動作期間中の乾燥を防ぐために、目に獣医軟膏を使用してください。 </li><li>首のオペレーションフィールドの最適な露光のために首の下にガーゼクッションを配置します。 </li><li>演算フィールドを消毒し、唯一のオープン手術野を残して、マウスをカバーするために滅菌ガーゼを置きます。 </li></ol> 3バイタルパラメータ測定<ol><li>マウスの足に皮下心電図の針を挿入します。 </li><li>マウスの背中の下で呼吸センサーを配置します。 </li><li>マウスの直腸内に温度プローブを配置します。 </li><li>レコード温度、ECGおよびデータ解析ソフトウェアでのマウスの呼吸数。 </li></ol> Sに対する4。ネック運用ystemic心臓血管モニタリング 4.1）船舶郭清<ol><li>首の真ん中のライン、鎖骨の中間点、下顎の角度を特定します。 </li><li>中央の線の左側に0.5センチメートルで鎖骨の中間点に、下顎の角度から2センチメートル縦切開を加えます。 </li><li>顎下腺を解剖、それを裏返しし、生理食塩水に浸したガーゼでそれをカバーしています。 </li><li>頸静脈を特定し、それを分析し、それ以降の連結および固定のために静脈の下で3 6-0絹縫合糸を配置します。 </li><li>二腹筋の肩甲舌骨と後の腹の優れた腹から分離、胸鎖乳突筋を特定し、頸動脈を簡単に露出するためのリトラクターでそれを引き出します。 </li><li>頸動脈を解剖し、後で連結および固定のために動脈の下に3 6-0絹縫合糸を配置します。 </li></ol> 4.2）頸動脈の血流測定<ol><li>遷音速を配置、頸動脈を中心に探る安定し、それを維持し、超音波ゲルまた​​は生理食塩水を使用して連絡先を最適化します。 </li><li>データ分析ソフトウェアを用いて遷音速装置の小さな画面上に示されるように、頸動脈のレコード血流速度</li><li>測定が完了した後にプローブを削除</li></ol> 4.3）頸動脈動脈圧測定（CAP） <ol><li>頸動脈の遠位端部を連結し、その近位端部をクランプする。 </li><li>頸動脈の周囲2の固定縫合糸を配置します。滞在縫合のために10-0プロレンを使用してください。 </li><li>血管の前壁に小切開を加えます。 </li><li>ミラーカテーテルを挿入し、事前に配置された縫合糸で固定します。 </li><li>データ解析ソフトウェアで、CAPを記録します。 </li></ol> 4.4）頚静脈血流測定を<ol><li>頸静脈を持ち上げ、流量を測定するために、遷音速流量プローブを配置します。 </li><li>データ分析ソフトウェア内の流量を記録する。 </li></ol> 4.5）中心静脈圧測定（CVP） <ol><li>頸静脈の近位端をクランプと遠位端とを連結する。 </li><li>血管の前壁にmicroscissorsを使って小さな切開をカット。 </li><li>液体で満たされたカテーテルを挿入し、前に置か縫合線で固定します。 </li><li>データ解析ソフトウェアでCVPを記録します。 </li></ol>肝血行動態の取得のために5。開腹手術 5.1）船舶識別<ol><li>腹部に横切開を加えます。 </li><li>左側に腸をEventerateとウェットガーゼでカバーしています。 </li><li>下大静脈、門脈、肝動脈と固有肝動脈を識別します。 </li><li>全体監視手順の間、5分毎に腹部や腸の表面にいくつかの温かい生理食塩水をドロップします。 </li></ol> 5.2）門脈血流量の測定を<ol><li>門脈を解剖。 </li><li>フロープローブを配置するとき、容器の持ち上げを容易にするために、門脈の下に6-0絹を置きます。 </li><li>門脈の周り遷音速流量プローブを配置し、その血流量を測定します。 </li><li>門脈の血流量を記録します。 </li></ol>一般的な肝動脈の流れの5.3）測定<ol><li>慎重に総肝動脈を解剖。 </li><li>容器の持ち上げを容易にするために、容器の周りに1 6-0絹縫合糸を配置します。 </li><li>動脈周囲のフロープローブを配置します。 </li><li>その血流を測定し、データを取得する。 </li></ol>門脈圧力の5.4）測定（PVP） <ol><li>ストレート門脈に排出する、いくつかの側枝と腸間膜静脈、のいずれかのブランチを選択してください。 </li><li>選択した腸間膜静脈の遠位端部を連結する。ライゲーションは、腸管に近いことを確認してください。その小さな枝を結紮</li><li> 2 Fを配置静脈の周りに6-0プロレンを使用して縫合糸をixing。この手順の重要な点は、静脈を結紮する際腸間膜動脈に触れないようにすることです。 </li><li>門脈の近位端を固定します。 </li><li> 10-0プロレンを使用して2ステー縫合糸を配置します。ステー縫合糸が細い腸間膜静脈の血管壁を貫通必要があるため、一部の出血が発生します。 </li><li> 45度の角度で斜めにmicroscissorを使用して静脈に小さな切開を行います。 </li><li>門脈に腸間膜静脈ミラーカテーテルを挿入し、それを修正</li><li>門脈圧を記録します。手順の最後に、麻酔下で放血によってマウスを生け贄に捧げる。 </li></ol>

<ol>
	<li>Albuszies, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+increased+cardiac+output+on+hepatic+and+intestinal+microcirculatory+blood+flow,+oxygenation,+and+metabolism+in+hyperdynamic+murine+septic+shock.">Effect of increased cardiac output on hepatic and intestinal microcirculatory blood flow, oxygenation, and metabolism in hyperdynamic murine septic shock.</a> Crit Care Med. 33 (10), 2332-2338 (2005).</li><li>Bernhard, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Phosphatidylcholine+molecular+species+in+lung+surfactant:+composition+in+relation+to+respiratory+rate+and+lung+development.">Phosphatidylcholine molecular species in lung surfactant: composition in relation to respiratory rate and lung development.</a> Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 25 (6), 725-731 (2001).</li><li>Cheever, A. W., Warren, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Portal+vein+ligation+in+mice:+portal+hypertension,+collateral+circulation,+and+blood+flow.">Portal vein ligation in mice: portal hypertension, collateral circulation, and blood flow.</a> 18, 405-407 (1963).</li><li>Costa, G., Aguiar, B. G., Coelho, P. M., Cunha-Melo, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=On+the+increase+of+portal+pressure+during+the+acute+and+chronic+phases+of+murine+schistosomiasis+mansoni+and+its+reversibility+after+treatment+with+oxamniquine.">On the increase of portal pressure during the acute and chronic phases of murine schistosomiasis mansoni and its reversibility after treatment with oxamniquine.</a> Acta Trop. 89 (1), 13-16 (2003).</li><li>Cui, S., Shibamoto, T., Zhang, W., Takano, H., Kurata, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Venous+resistance+increases+during+rat+anaphylactic+shock.">Venous resistance increases during rat anaphylactic shock.</a> Shock. 29 (6), 733-739 (2008).</li><li>Geerts, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+three+research+models+of+portal+hypertension+in+mice:+macroscopic,+histological+and+portal+pressure+evaluation.">Comparison of three research models of portal hypertension in mice: macroscopic, histological and portal pressure evaluation.</a> Int. J. Exp. Pathol. 89 (4), 251-263 (2008).</li><li>Huang, H., Deng, M., Jin, H., Dirsch, O., Dahmen, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intraoperative+vital+and+haemodynamic+monitoring+using+an+integrated+multiple-channel+monitor+in+rats.">Intraoperative vital and haemodynamic monitoring using an integrated multiple-channel monitor in rats.</a> Lab Anim. 44 (3), 254-263 (2010).</li><li>Krege, J. H., Hodgin, J. B., Hagaman, J. R., Smithies, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+noninvasive+computerized+tail-cuff+system+for+measuring+blood+pressure+in+mice.">A noninvasive computerized tail-cuff system for measuring blood pressure in mice.</a> Hypertension. 25 (5), 1111-1115 (1995).</li><li>Kuga, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rapid+and+local+autoregulation+of+cerebrovascular+blood+flow:+a+deep-brain+imaging+study+in+the+mouse.">Rapid and local autoregulation of cerebrovascular blood flow: a deep-brain imaging study in the mouse.</a> J. Physiol.. 587 (Pt 4), 745-752 (2009).</li><li>Muraki, T., Strain Kato, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=difference+in+the+effects+of+morphine+on+the+rectal+temperature+and+respiratory+rate+in+male+mice.">difference in the effects of morphine on the rectal temperature and respiratory rate in male mice.</a> Psychopharmacology (Berl). 89 (1), 60-64 (1986).</li><li>Nielsen, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Left+ventricular+volume+measurement+in+mice+by+conductance+catheter:+evaluation+and+optimization+of+calibration.">Left ventricular volume measurement in mice by conductance catheter: evaluation and optimization of calibration.</a> Am. J. Physiol Heart Circ. Physiol. 293 (1), H534-H540 (2007).</li><li>Sakamoto, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improvement+of+portal+hypertension+and+hepatic+blood+flow+in+cirrhotic+rats+by+oestrogen.">Improvement of portal hypertension and hepatic blood flow in cirrhotic rats by oestrogen.</a> Eur. J. Clin. Invest. 35 (3), 220-225 (2005).</li><li>Reverter, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impact+of+deep+sedation+on+the+accuracy+of+hepatic+and+portal+venous+pressure+measurements+in+patients+with+cirrhosis.">Impact of deep sedation on the accuracy of hepatic and portal venous pressure measurements in patients with cirrhosis.</a> Liver Int. 34 (1), 16-25 (2014).</li></ol>

著者は、彼らが競合する金融利害がないことを宣言します。

肝血行動態のモニタリングは、肝臓学及び肝胆道外科における重要な研究ツールである。肝血行動態データの取得は、循環系に肝胆手続きの効果を特徴づけるために役立ちます。血管作用薬を評価する研究では、必要に応じて肝血行動態データの取得はまた、 例えば、門脈圧とポータルの流れに影響を与える薬剤の効果を研究するために必要とされる。 小さなサ?...

このビデオの全体的な目標は、全身および肝臓の血行動態パラメータを取得するためのリアルタイム監視手順を実証することであった。この手順を開発するための理論的根拠は、全身および肝臓の血行動態パラメータを取得する必要とするマウスでの実験的介入のための大きな価値である。手順は、ナイーブ動物に、そのような部分肝切除などの与えられた肝胆実験的外科的介入、門脈結紮と肝移植の間または後に適用することができる。 げっ歯類における肝血行動態データの取得は、提案された侵襲的な処置を必要とします。肝灌流は非侵襲的に得ることができない。しかし、全身血圧を取得するための選択肢がある。このような尾カフ技法8として監視技術は、ラットとマウスの両方で血圧を取得するために利用されている。尾カフ技術はconsciで適用することができるOUの動物。血圧を測定する場合、動物は特定の不快な位置に配置して固定する必要がある。テールカフデバイスのマニュアルでは、製造業者は、マウスが神経質になって、尾部に循環を減少させる可能性があると強調してもよいと述べている。そのような状況下では、尾部で取得された末梢血圧は、中心血圧よりもはるかに低くてもよい。 完全な監視手順は、データ取得のための一連のセンサを使用して統合されたマルチチャネルモニタを用いて行った。血圧は、顕微鏡下で注意深く顕微解剖し、露光後のそれぞれの血管にカテーテルを挿入した。流量は、各容器の周囲に遷音速流プローブを配置することによって測定した。 すでにSINGLに匹敵する生理学的な血行動態データを総合的に直列に生じたラットでは、同様の術中監視手順を報告した他のグループ7から通知の電子データ。そこで私たちは、マウス、ラットよりも小さい10倍種にそれを適応させるための良い基盤を表現するには、次の手順を検討した。ラットの手順との重要な違いは、血圧データの代わりに、流体ベースのカテーテルシステムを取得するためのMillarカテーテルの使用である。フローデータは、遷音速流プローブを、対応するラットの血管よりもわずかはるかに小さいものと取得した。 による動物の小さなサイズのために、マウスの計測は、技術的に難しいが、実行可能である。インスツルメンテーションが完了すると、事前定義された設定ファイルを使用することができるので、データ取得および一次寿命データ解析は、簡単である。設定ファイルは、一連の実験の初めに一度定義されると、すべてのその後の実験のために保存して使用することができる有する。 今まで私たちは、急性実験で肝血行動態の影響を評価するには、この手順を適用した。私たちは、CAを測定し前と直後に70％部分肝切除（PH）後、および/デクランプ実験をクランプ中のPとPVP。私たちは、肝臓質量の完全90％に相当質量中央の短い（5分）、クランプと左側葉に続く肝臓の20％を代表する右葉の肝十二指腸靭帯をクランプ。デクランは中央値と左側葉を解放に続いて右葉からクランプを解除する作業を始めています。最大クランプ時間は10分未満であった。

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="606">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:104px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:167px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">PowerLab 16/30&#160;</td>
			<td style="width:104px;">ADInstruments</td>
			<td>PL3516</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Quad Bridge Amp</td>
			<td style="width:104px;">ADInstruments</td>
			<td>&#160;FE224</td>
			<td>Bridge amplifier&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Animal Bio Amp</td>
			<td style="width:104px;">ADInstruments</td>
			<td>&#160;FE136</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Needle Electrodes for FE136 (3 pk)</td>
			<td style="width:104px;">ADInstruments</td>
			<td>&#160;MLA1213</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Perivascular Flowmeter Module</td>
			<td style="width:104px;">Transonic</td>
			<td style="width:119px;">TS420&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Flowprobe MA0.5PSB/MA1PSB</td>
			<td style="width:104px;">Transonic</td>
			<td style="width:119px;">MA0.5PSB/MA1PSB</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">SPR-1000 Mouse Pressure Catheter</td>
			<td style="width:104px;">Millar instruments</td>
			<td>841-0001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">fluid filled catheter&#160;</td>
			<td>Terumo</td>
			<td style="width:119px;">SR+DU2619PX</td>
			<td>26G, 0.64&#215;19mm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;"></td>
			<td></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">micro scissors</td>
			<td>F&#183;S&#183;L</td>
			<td>No. 14058-09</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">micro serrefine</td>
			<td>F&#183;S&#183;L</td>
			<td>No.18055-05</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Micro clamps applicator</td>
			<td style="width:104px;">F&#183;S&#183;L</td>
			<td style="width:119px;">No. 18057-14</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Straight micro forceps</td>
			<td style="width:104px;">F&#183;S&#183;L</td>
			<td style="width:119px;">No. 00632-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Curved micro forceps</td>
			<td style="width:104px;">F&#183;S&#183;L</td>
			<td style="width:119px;">No. 00649-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">needle-holder</td>
			<td style="width:104px;">F&#183;S&#183;L</td>
			<td style="width:119px;">No. 12061-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;"></td>
			<td style="width:104px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">6-0 silk</td>
			<td style="width:104px;">ethicon</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">6-0 prolene</td>
			<td style="width:104px;">ethicon</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">7-0 prolene</td>
			<td style="width:104px;">ethicon</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">10-0 prolene</td>
			<td style="width:104px;">ethicon</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Tail cut-off device&#160;</td>
			<td style="width:104px;">Kent Scientific</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">www.kentscientific.com</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">LabChart7</td>
			<td style="width:104px;">ADInstruments</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">data&#160; analysis software&#160;</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

monitoring of systemic and hepatic hemodynamic parameters in mice

実験的研究のマウスモデルを使用することは肝生理学および病態生理学的障害の研究のために莫大な重要なものである。しかし、マウスの小さなサイズのために、マウスに適した術中監視手順の技術的な詳細はほとんど記載されなかった。以前私達はラットの血行動態パラメータを取得するために監視手順を報告している。今、私たちは、ラットより10倍小さい種を、マウスにおける全身および肝臓の血行動態パラメータを取得するための手順を適合される。この映画は、動物の計装だけでなく、マウスでの全身および肝臓の血行動態を評価するために必要なデータ取得処理を示しています。体温、呼吸数および心拍数などのバイタルパラメータは、手順全体を通して記録した。全身の血行動態パラメータは、頸動脈圧（CAP）および中心静脈圧（CVP）で構成されています。肝灌流パラメータは、ポータルのVを含むアイン圧力（PVP）、ポータル流量ならびに肝動脈（表1）の流量。正常値を記録する計測機器とデータ取得は、1.5時間以内に完了した。全身および肝臓の血行動態パラメータは、この手順の間、正常範囲内であった。 この手順では、困難なく実現可能である。我々はすでにだけでなく、70％部分肝切除中および肝葉クランプ実験で、正常なマウスでは肝血行動態を評価するために、この手順を適用している。切除回（n = 20）、切除（6.87±2.39 CMH 2 O）前よりも有意に高かったCMH 2 O（P &lt;0.05）11.41±2.94であった後にPVPを意味する。肝葉クランプ実験の結果は、この監視手順は、機密と門脈圧とポータル流量の小さな変化を検出するのに適していることが示された。結論として、この手順は、経験豊富なマイクロ外科医の手の中に信頼性があるが、EXPに制限する必要がありますマウスは絶対的に必要とされているeriments。

このような呼吸数及び心拍数のようなマウスのバイタルパラメータは明らかにラットにおけるよりもはるかに高い。平均全身血圧および頚静脈圧は、ラット値に類似しており、ヒトのデータにでも同様である。 肝血行動態データは明らかに異なっている。私たちは、8匹のマウスから正常値を得た。正常マウスにおける門脈血流が1.6〜2.3ミリリットル/分の範囲であった。...

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Monitoring of Systemic and Hepatic Hemodynamic Parameters in Mice

このフィルムは、マウスにおける全身および肝臓の血行動態を取得する方法を示します。全体の監視は重要なパラメータは、全身血圧、中心静脈圧、総肝動脈流量、および門脈の圧力、ならびにマウスにおけるポータル流量の取得を含む。

マウスにおける全身および肝血行動態パラメータの監視

The use of mouse models in experimental research is of enormous importance for the study of hepatic physiology and pathophysiological disturbances. ...

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Research

JoVE Journal

Medicine

15.9K ビュー.  Jena University Hospital. このフィルムは、マウスにおける全身および肝臓の血行動態を取得する方法を示します。全体の監視は重要なパラメータは、全身血圧、中心静脈圧、総肝動脈流量、および門脈の圧力、ならびにマウスにおけるポータル流量の取得を含む。 

ビデオ: Monitoring of Systemic and Hepatic Hemodynamic Parameters in Mice

Assessing Changes in Volatile General Anesthetic Sensitivity of Mice after Local or Systemic Pharmacological Intervention

One desirable endpoint of general anesthesia is the state of unconsciousness, also known as hypnosis. Defining the hypnotic state in animals is less straightforward than it is in human patients. A widely used behavioral surrogate for hypnosis in rodents is the loss of righting reflex (LORR), or the point at which the animal no longer responds to their innate instinct to avoid the vulnerability of dorsal recumbency. We have developed a system to assess LORR in 24 mice simultaneously while carefully controlling for potential confounds, including temperature fluctuations and varying gas flows. These chambers permit reliable assessment of anesthetic sensitivity as measured by latency to return of the righting reflex (RORR) following a fixed anesthetic exposure. Alternatively, using stepwise increases (or decreases) in anesthetic concentration, the chambers also enable determination of a population's sensitivity to induction (or emergence) as measured by EC50 and Hill slope. Finally, the controlled environmental chambers described here can be adapted for a variety of alternative uses, including inhaled delivery of other drugs, toxicology studies, and simultaneous real-time monitoring of vital signs.

Loss of the righting reflex has long served as a standard behavioral surrogate for unconsciousness, also called hypnosis, in laboratory animals. Alterations in volatile anesthetic sensitivity caused by pharmacological interventions can be detected with a carefully controlled high-throughput assessment system, which may be adapted for delivery of any inhaled therapeutic.

局所または全身薬理学的介入後のマウスの揮発性全身麻酔の感度変化を評価する

One desirable endpoint of general anesthesia is  the state of unconsciousness, also known as hypnosis. Defining the hypnotic state in animals is  less ...

医学

Clinical Assessment of Spatiotemporal Gait Parameters in Patients and Older Adults

Spatial and temporal characteristics of human walking are frequently evaluated to identify possible gait impairments, mainly in orthopedic and neurological patients1-4, but also in healthy older adults5,6. The quantitative gait analysis described in this protocol is performed with a recently-introduced photoelectric system (see&#160;Materials table) which has the potential to be used in the clinic because it is portable, easy to set up (no subject preparation is required before a test), and does not require maintenance and sensor calibration. The photoelectric system consists of series of high-density floor-based photoelectric cells with light-emitting and light-receiving diodes that are placed parallel to each other to create a corridor, and are oriented perpendicular to the line of progression7. The system simply detects interruptions in light signal, for instance due to the presence of feet within the recording area. Temporal gait parameters and 1D spatial coordinates of consecutive steps are subsequently calculated to provide common gait parameters such as step length, single limb support and walking velocity8, whose validity against a criterion instrument has recently been demonstrated7,9. The measurement procedures are very straightforward; a single patient can be tested in less than 5 min&#160;and a comprehensive report can be generated in less than 1&#160;min.

This protocol is used to evaluate spatial and temporal gait variables of neurological/orthopedic patients and older persons by means of a recently-introduced floor-based photocell system.

患者と高齢者における時空間歩行パラメータの臨床的評価

Spatial and temporal characteristics of human walking are frequently evaluated to identify possible gait impairments, mainly in orthopedic and ...

Carotid Artery Infusions for Pharmacokinetic and Pharmacodynamic Analysis of Taxanes in Mice

When proposing the use of a drug, drug combination, or drug delivery into a novel system, one must assess the pharmacokinetics of the drug in the study model. As the use of mouse models are often a vital step in preclinical drug discovery and drug development1-8, it is necessary to design a system to introduce drugs into mice in a uniform, reproducible manner. Ideally, the system should permit the collection of blood samples at regular intervals over a set time course. The ability to measure drug concentrations by mass-spectrometry, has allowed investigators to follow the changes in plasma drug levels over time in individual mice1, 9, 10. In this study, paclitaxel was introduced into transgenic mice as a continuous arterial infusion over three hours, while blood samples were simultaneously taken by retro-orbital bleeds at set time points. Carotid artery infusions are a potential alternative to jugular vein infusions, when factors such as mammary tumors or other obstructions make jugular infusions impractical. Using this technique, paclitaxel concentrations in plasma and tissue achieved similar levels as compared to jugular infusion. In this tutorial, we will demonstrate how to successfully catheterize the carotid artery by preparing an optimized catheter for the individual mouse model, then show how to insert and secure the catheter into the mouse carotid artery, thread the end of the catheter out through the back of the mouse&#8217;s neck, and hook the mouse to a pump to deliver a controlled rate of drug influx. Multiple low volume retro-orbital bleeds allow for analysis of plasma drug concentrations over time.

This method was developed with the goal of delivering a steady drug solution via the carotid artery, to assess the pharmacokinetics of novel drugs in mouse models.

マウスにおけるタキサンの薬物動態学的および薬力学的分析のための頸動脈煎茶

When proposing the use of a drug, drug combination, or drug delivery into a novel system, one must assess the pharmacokinetics of the drug in the study ...

Early Detection of Drug-Induced Renal Hemodynamic Dysfunction Using Sonographic Technology in Rats

The kidney normally functions to maintain hemodynamic homeostasis and is a major site of damage caused by drug toxicity. Drug-induced nephrotoxicity is estimated to contribute to 19- 25% of all clinical cases of acute kidney injury (AKI) in critically ill patients. AKI detection has historically relied on metrics such as serum creatinine (sCr) or blood urea nitrogen (BUN) which are demonstrably inadequate in full assessment of nephrotoxicity in the early phase of renal dysfunction. Currently, there is no robust diagnostic method to accurately detect hemodynamic alteration in the early phase of AKI while such alterations might actually precede the rise in serum biomarker levels. Such early detection can help clinicians make an accurate diagnosis and help in in decision making for therapeutic strategy. Rats were treated with Cisplatin to induce AKI. Nephrotoxicity was assessed for six days using high-frequency sonography, sCr measurement and upon histopathology of kidney. Hemodynamic evaluation using 2D and Color-Doppler images were used to serially study nephrotoxicity in rats, using the sonography. Our data showed successful drug-induced kidney injury in adult rats by histological examination. Color-Doppler based sonographic assessment of AKI indicated that resistive-index (RI) and pulsatile-index (PI) were increased in the treatment group; and peak-systolic velocity (mm/s), end-diastolic velocity (mm/s) and velocity-time integral (VTI, mm) were decreased in renal arteries in the same group. Importantly, these hemodynamic changes evaluated by sonography preceded the rise of sCr levels. Sonography-based indices such as RI or PI can thus be useful predictive markers of declining renal function in rodents. From our sonography-based observations in the kidneys of rats that underwent AKI, we showed that these noninvasive hemodynamic measurements may consider as an accurate, sensitive and robust method in detecting early stage kidney dysfunction. This study also underscores the importance of ethical issues associated with animal use in research.

Early stage hemodynamic dysfunction is critical to the development of kidney disease. Yet, detection methodologies are limited. Recent advances in sonography provide a noninvasive, accurate option for early detection of kidney injury. This study outlines a step-by-step, sonographic methodology for detecting kidney dysfunction using a drug-induced nephrotoxicity rat model.

ラットにおける超音波検査技術を用いた薬剤誘発性腎血行動態機能障害の早期発見

The kidney normally functions to maintain hemodynamic homeostasis and is a major site of damage caused by drug toxicity. Drug-induced nephrotoxicity is ...

The bm12 Inducible Model of Systemic Lupus Erythematosus (SLE) in C57BL/6 Mice

Systemic lupus erythematosus (SLE) is an autoimmune disease with diverse clinical and immunological manifestations. Several spontaneous and inducible animal models mirror common components of human disease, including the bm12 transfer model. Upon transfer of bm12 splenocytes or purified CD4 T cells, C57BL/6 mice rapidly develop large frequencies of T follicular helper cells (Tfh), germinal center (GC) B cells, and plasma cells followed by high levels of circulating anti-nuclear antibodies. Since this model utilizes mice on a pure C57BL/6 background, researchers can quickly and easily study disease progression in transgenic or knockout mouse strains in a relatively short period of time. Here we describe protocols for the induction of the model and the quantitation Tfh, GC B cells, and plasma cells by multi-color flow cytometry. Importantly, these protocols can also be used to characterize disease in most mouse models of SLE and identify Tfh, GC B cells, and plasma cells in other disease models.

The bm12 Inducible Model of Systemic Lupus Erythematosus SLE in C57BL/6 Mice

The transfer of bm12 lymphocytes into a C57BL/6 recipient is an established model of systemic lupus erythematosus. Here we describe how to initiate disease using this model and how to characterize T follicular helper cells, germinal center B cells and plasma cells by flow cytometry.

C57BL / 6マウスにおける全身性エリテマトーデス（SLE）のBM12誘導モデル

Systemic lupus erythematosus (SLE) is an autoimmune disease with diverse clinical and immunological manifestations. Several spontaneous and inducible ...

Optimized Analysis of In Vivo and In Vitro Hepatic Steatosis

Establishing a system of procedures to qualitatively and quantitatively characterize in vivo and in vitro hepatic steatosis is important for metabolic study in the liver. Here, numerous assays are described to comprehensively measure the phenotype and parameters of hepatic steatosis in mouse and hepatocyte models. 
Combining the physiological, histological, and biochemical methods, this system can be used to assess the progress of hepatic steatosis. In vivo, the measurements of body weight and nuclear magnetic resonance (NMR) provide a general understanding of mice in a non-invasive manner. Hematoxylin and Eosin (H&amp;E) and Oil Red O staining determine the histological morphology and lipid deposition of liver tissue under nutrient overload conditions, such as high-fat diet feeding. Next, the total lipid contents are isolated by chloroform/methanol extraction, which are followed by a biochemical analysis for triglyceride and cholesterol. Moreover, mouse primary hepatocytes are treated with high glucose plus insulin to stimulate lipid accumulation, an efficient in vitro model to mimic diet-induced hyperglycemia and hyperinsulinemia in vivo. Then, the lipid deposition is measured by Oil Red O staining and chloroform/methanol extraction. Oil Red O staining determines intuitive hepatic steatotic phenotypes, while the lipid extraction analysis determines the parameters that can be analyzed statistically. The present protocols are of interest to scientists in the fields of fatty liver diseases, insulin resistance, and type 2 diabetes.

Optimized Analysis of In Vivo and In Vitro Hepatic Steatosis

Here, optimized methods to generate in vivo and in vitro models of hepatic steatosis and to analyze the steatotic phenotypes and related physiological parameters are described.

の最適化分析<em&gt;インビボ</em&gt;と<em&gt;インビトロ</em&gt;脂肪肝

Establishing a system of procedures to qualitatively and quantitatively characterize in vivo and in vitro hepatic steatosis is important for metabolic ...

Uncontrolled Hemorrhagic Shock Modeled via Liver Laceration in Mice with Real Time Hemodynamic Monitoring

Uncontrolled hemorrhage is an important cause of preventable deaths among trauma patients. We have developed a murine model of uncontrolled hemorrhage via a liver laceration that results in consistent blood loss, hemodynamic alterations, and survival.
Mice undergo a standardized resection of the left-middle lobe of the liver. They are allowed to bleed without mechanical intervention. Hemostatic agents can be administered as pre-treatment or rescue therapy depending on the interest of the investigator. During the time of hemorrhage, real-time hemodynamic monitoring via a left femoral arterial line is performed. Mice are then sacrificed, blood loss is quantified, blood is collected for further analysis, and organs are harvested for analysis of injury. Experimental design is described to allow for simultaneous testing of multiple animals.
Liver hemorrhage as a model of uncontrolled hemorrhage exists in the literature, primarily in rat and porcine models. Some of these models utilize hemodynamic monitoring or quantify blood loss but lack consistency. The present model incorporates quantification of blood loss, real-time hemodynamic monitoring in a murine model that offers the advantage of using transgenic lines and a high-throughput mechanism to further investigate the pathophysiologic mechanisms in uncontrolled hemorrhage.

Uncontrolled hemorrhage, an important cause of mortality among trauma patients, can be modeled using a standard liver laceration in a murine model. This model results in consistent blood loss, survival, and allows for testing hemostatic agents. This article provides the step-by-step process to perform this valuable model.

リアルタイム血行動態モニタリングを用いたマウスの肝梗塞モデルによる制御不能出血性ショック

Uncontrolled hemorrhage is an important cause of preventable deaths among trauma patients. We have developed a murine model of uncontrolled hemorrhage via ...

A Detailed Protocol for Physiological Parameters Acquisition and Analysis in Neurosurgical Critical Patients

Intracranial pressure (ICP) monitoring is now widely used in neurosurgical critical patients. Besides mean ICP value, the ICP derived parameters such as ICP waveform, amplitude of pulse (AMP), the correlation of ICP amplitude and ICP mean (RAP), pressure reactivity index (PRx), ICP and arterial blood pressure (ABP) wave amplitude correlation (IAAC), and so on, can reflect intracranial status, predict prognosis, and can also be used as guidance of proper treatment. However, most of the clinicians focus only on the mean ICP value while ignoring these parameters because of the limitations of the current devices. We have recently developed a multimodality monitoring system to address these drawbacks. This portable, user-friendly system will use a data collecting and storing device to continuously acquire patients&#39; physiological parameters first, i.e., ABP, ICP, and oxygen saturation, and then analyze these physiological parameters. We hope that the multimodality monitoring system will be accepted as a key measure to monitor physiological parameters, to analyze the current clinical status, and to predict the prognosis of the neurosurgical critical patients.

Recently, we have developed a portable multimodality monitoring system for the monitoring of various physiological parameters in neurosurgical critical patients. Detailed protocols on how to use this multimodality monitoring system are presented here.

生理学的パラメーターの詳細なプロトコル獲得と脳神経外科の重要な患者の分析

Intracranial pressure (ICP) monitoring is now widely used in neurosurgical critical patients. Besides mean ICP value, the ICP derived parameters such as ...

The Pilocarpine Model of Temporal Lobe Epilepsy and EEG Monitoring Using Radiotelemetry System in Mice

Temporal lobe epilepsy (TLE) is a common neurological disorder in adulthood. For translational studies of chronic epilepsy, pilocarpine-induced status epilepticus (SE) is frequently selected to recapitulate spontaneous recurrent seizures (SRS). Here we present a protocol of SE induction by intraperitoneal (i.p.) injection of pilocarpine and monitoring of chronic recurring seizures in live animals using a wireless telemetry video and electroencephalogram (EEG) system. We demonstrated notable behavioral changes that need attention after pilocarpine injection and their correlation with hippocampal neuronal loss at 7 days and 6 weeks post-pilocarpine. We also describe the experimental procedures of electrode implantation for video and EEG recording, and analysis of the frequency and duration of chronic recurrent seizures. Finally, we discuss the possible reasons why the expected results are not achieved in each case. This provides a basic overview of modeling chronic epilepsy in mice and guidelines for troubleshooting. We believe this protocol can serve as a baseline for suitable models of chronic epilepsy and epileptogenesis.

This manuscript describes a method of inducing status epilepticus by systemic pilocarpine injection and of monitoring spontaneous recurrent seizures in live animals using a wireless telemetry video and electroencephalogram system. This protocol can be utilized for studying the pathophysiologic mechanisms of chronic epilepsy, epileptogenesis, and acute seizures.

側頭葉てんかんと脳波監視テレメーター システムを使用してマウスのピロカルピン モデル

Temporal lobe epilepsy (TLE) is a common neurological disorder in adulthood. For translational studies of chronic epilepsy, pilocarpine-induced status ...

Invasive Hemodynamic Characterization of the Portal-hypertensive Syndrome in Cirrhotic Rats

This is a detailed protocol describing invasive hemodynamic measurements in cirrhotic rats for the characterization of portal hypertensive syndrome. Portal hypertension (PHT) due to cirrhosis is responsible for the most severe complications in patients with liver disease. The full picture of the portal hypertensive syndrome is characterized by increased portal pressure (PP) due to the increased intrahepatic vascular resistance (IHVR), hyperdynamic circulation, and increased splanchnic blood flow. Progressive splanchnic arterial vasodilation and increased cardiac output with elevated heart rate (HR) but low arterial pressure characterizes the portal hypertensive syndrome.
Novel therapies are currently being developed that aim to decrease PP by either targeting IHVR or increased splanchnic blood flow &#8212; but side effects on systemic hemodynamics may occur. Thus, a detailed characterization of portal venous, splanchnic, and systemic hemodynamic parameters, including measurement of PP, portal venous blood flow (PVBF), mesenteric arterial blood flow, mean arterial pressure (MAP), and HR is needed for preclinical evaluation of the efficacy of novel treatments for PHT. Our video article provides the reader with a structured protocol for performing invasive hemodynamic measurements in cirrhotic rats. In particular, we describe the catheterization of the femoral artery and the portal vein via an ileocolic vein and the measurement of portal venous and splanchnic blood flow via perivascular Doppler-ultrasound flow probes. Representative results of different rat models of PHT are shown.

Here we describe a detailed protocol for invasive measurements of hemodynamic parameters including portal pressure, splanchnic blood flow, and systemic hemodynamics in order to characterize the portal hypertensive syndrome in rats.

肝硬変ラットにおけるポータル高血圧症侵襲血行動態評価

This is a detailed protocol describing invasive hemodynamic measurements in cirrhotic rats for the characterization of portal hypertensive syndrome. ...

マウスにおける全身および肝血行動態パラメータの監視

要約

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局所または全身薬理学的介入後のマウスの揮発性全身麻酔の感度変化を評価する

患者と高齢者における時空間歩行パラメータの臨床的評価

マウスにおけるタキサンの薬物動態学的および薬力学的分析のための頸動脈煎茶

ラットにおける超音波検査技術を用いた薬剤誘発性腎血行動態機能障害の早期発見

C57BL / 6マウスにおける全身性エリテマトーデス（SLE）のBM12誘導モデル

の最適化分析

リアルタイム血行動態モニタリングを用いたマウスの肝梗塞モデルによる制御不能出血性ショック

生理学的パラメーターの詳細なプロトコル獲得と脳神経外科の重要な患者の分析

側頭葉てんかんと脳波監視テレメーターシステムを使用してマウスのピロカルピンモデル

肝硬変ラットにおけるポータル高血圧症侵襲血行動態評価

マウスにおける全身および肝血行動態パラメータの監視

要約

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局所または全身薬理学的介入後のマウスの揮発性全身麻酔の感度変化を評価する

患者と高齢者における時空間歩行パラメータの臨床的評価

マウスにおけるタキサンの薬物動態学的および薬力学的分析のための頸動脈煎茶

ラットにおける超音波検査技術を用いた薬剤誘発性腎血行動態機能障害の早期発見

C57BL / 6マウスにおける全身性エリテマトーデス（SLE）のBM12誘導モデル

の最適化分析

リアルタイム血行動態モニタリングを用いたマウスの肝梗塞モデルによる制御不能出血性ショック

生理学的パラメーターの詳細なプロトコル獲得と脳神経外科の重要な患者の分析

側頭葉てんかんと脳波監視テレメーター システムを使用してマウスのピロカルピン モデル

肝硬変ラットにおけるポータル高血圧症侵襲血行動態評価

側頭葉てんかんと脳波監視テレメーターシステムを使用してマウスのピロカルピンモデル