وأيد هذا البحث من قبل Ministery الألمانية الاتحادية للتعليم والبحوث (BMBF) تمول &quot;الشبكة الافتراضية الكبد&quot;. أود أن أشكر فرانك شوبرت ورينيه غومبيرت من مركز إعلام مستشفى جامعة يينا لمساعدتهم في إنتاج الفيديو وخلق الرسوم المتحركة وإيزابيل جنك لتسجيل الصوت.

كان السكن وجميع الإجراءات التي نفذت وفقا للتشريعات رعاية الحيوان الألمانية. 1. مجسات معايرة (اتبع تعليمات المصنع لمعايرة أجهزة الاستشعار) 1.1) ميلار القسطرة المعايرة. قبل نقع طرف القسطرة في الماء المعقم أو محلول ملحي لمدة 30 دقيقة قبل موازنة (التصفير) والمعايرة. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ربط أجهزة الاستشعار ميلر لقناة millar1 من مكبر للصوت الجسر وإدراج غيض استشعار ميلر في عمود الماء. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تعيين قيمة عمود الماء إلى 0 CMH 2 O. في إطار البرنامج تحليل البيانات، واختيار جسر تضخيم والصفر عليه. يمكن تعيين قيمة خط الأساس 0 CMH 2 O. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تعيين قيمة عمود الماء إلى 20 CMH 2 O. تشغيل تحليل البيانات إطار البرنامج التقدم، ووقف. اختيار &quot;الوحدات&quot; في إطار من جسر تضخيم، تعيين خط الأساس من 0 و 20 CMH 2 O وفقا لذلك. ضبط &quot;وحدة&quot; لشركة بيت إدارة المال &lt;الفرعية&gt; 2 O. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> معايرة millar2 لقياس CAP بنفس الطريقة (تعيين اثنين خط الأساس 90 و 110 CMH 2 O). </li></ol> 1.2) معايرة التحقيق تدفق الدم <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع التحقيق في الماء منزوع الأيونات. تواصل التحقيق مع تدفق أسرع من الصوت نظام التحقيق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في إطار البرنامج تحليل البيانات، واختيار الإدخال تضخيم إلى الصفر التحقيق التدفق. ضبط وحدة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> اضغط على الزر لقناة &quot;اختبار&quot; لجمع إشارة: إذا كانت إشارة ديها 3-4 القضبان، فهذا يعني إشارة جيدة. في حال حصلت على إشارة جيدة، ويمكن أن يستمر هذا الإجراء. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> اضغط على الزر ل&quot;الصفر قناة&quot; وقناة النطاق لمعرفة ما إذا كان قد تم معايرة قيمة أم لا. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> اضغط على الزر ل&quot;اجراء قناة&quot; لقياس احق. </li></ol> 2. إعداد الماوس لإجراء جراحة <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ضع الماوس في غرفة الاستقراء وتخدير الفأر مع 2٪ الأيزوفلورين و0.3 مل / دقيقة الأوكسجين. العملية لا يمكن أن يؤديها إذا كان إصبع القدم قرصة الانسحاب المنعكس من الفأرة غائب. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> حلق الفراء من المناطق الجراحية، والتي تشمل الرقبة اليسرى والبطن. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ضع الماوس على الطاولة العملية واصلاحها باستخدام الأشرطة. استخدام مرهم الطبيب البيطري على العينين لمنع جفاف خلال فترة التشغيل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع وسادة تحت الرقبة الشاش التعرض الأمثل للمجال تشغيل الرقبة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تطهير مجال التشغيل ووضع الشاش المعقم لتغطية الفأرة وترك المجال مفتوحا الجراحية فقط. </li></ol> 3. معلمات الحيوية القياس <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إدراج الإبر تحت الجلد ECG في الكفوف من الماوس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع أجهزة الاستشعار في الجهاز التنفسي تحت الجزء الخلفي من الماوس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع مسبار درجة الحرارة في المستقيم من الفأرة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> درجة حرارة قياسية، تخطيط القلب ومعدل التنفس من الفأرة في برامج تحليل البيانات. </li></ol> 4. الرقبة عملية لSمراقبة القلب والأوعية الدموية ystemic 4.1) تشريح السفن <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> التعرف على خط الوسط من الرقبة، ونقطة وسطى من الترقوة، زاوية الفك السفلي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إجراء شق طولي 2CM من زاوية الفك السفلي إلى النقطة الوسطى من الترقوة وهو 0.5CM إلى الجانب الأيسر من خط الوسط. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تشريح الغدة تحت الفك السفلي، اقلبها وتغطية ذلك مع الشاش غارقة المالحة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تحديد الوريد الوداجي، تشريح ووضع ثلاثة خيوط الحرير 6-0 تحت الوريد لربط وتثبيت لاحق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تحديد عضلة القصية الترقوية الخشائية، تفصلها عن البطن متفوقة من بطن اللامية الكتفية والخلفي للعضلة ذات البطنين، وتسحبه مع ضام التعرض السهل للشريان السباتي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تشريح الشريان السباتي ووضع ثلاثة خيوط الحرير 6-0 تحت الشريان لربط وتثبيت لاحق. </li></ol> 4.2) قياس تدفق الدم الشريان السباتي <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع TRANSONICتحقيق حول الشريان السباتي، ويبقيه مستقرة، وتحسين الاتصال باستخدام الموجات فوق الصوتية هلام أو المالحة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> سجل سرعة تدفق الدم من الشريان السباتي كما هو مبين على الشاشة الصغيرة من الجهاز أسرع من الصوت باستخدام برمجيات تحليل البيانات </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة التحقيق بعد الانتهاء من قياس </li></ol> 4.3) قياس ضغط الشريان السباتي (CAP) <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Ligate نهاية القاصية من الشريان السباتي وكبح نهايته القريبة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 2 تحديد مكان الغرز حول الشريان السباتي. 10-0 استخدام البرولين للخياطة البقاء. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إجراء شق صغير في الجدار الأمامي للسفينة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ادخال القسطرة ميلار واصلاحها مع الغرز وضعت مسبقا. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تسجيل CAP في برنامج تحليل البيانات. </li></ol> 4.4) حبل الوريد قياس تدفق الدم <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> رفع حبل الوريد ووضع مسبار تدفق أسرع من الصوت لقياس معدل التدفق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تسجيل معدل التدفق في برامج تحليل البيانات. </li></ol> 4.5) قياس الضغط الوريدي المركزي (CVP) <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> المشبك نهاية القريبة من حبل الوريد وligate نهاية البعيدة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قطع شق صغير باستخدام microscissors على الجدار الأمامي للسفينة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ادخال القسطرة مملوءة بسائل واصلاحها مع خطوط خياطة صاحب المركز قبل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تسجيل CVP في برامج تحليل البيانات. </li></ol> 5. عملية في البطن لاكتساب كبدي ديناميكا الدم 5.1) هوية السفينة <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إجراء شق عرضية على البطن. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Eventerate الأمعاء إلى الجانب الأيسر، وتغطي مع الشاش الرطب. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> التعرف على الوريد الأجوف السفلي، الوريد البابي والشريان الكبدي المشترك والشريان الكبدي السليم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> التخلي عن بعض المالحة الدافئة في البطن وعلى سطح الأمعاء كل 5 دقائق أثناء إجراء الرصد كله. </li></ol> 5.2) قياس تدفق الدم البابي <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تشريح الوريد البابي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع 6-0 الحرير تحت الوريد البابي لتسهيل رفع السفينة عند وضع مسبار التدفق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع المسبار تدفق أسرع من الصوت حول الوريد البابي وقياس معدل تدفق الدم فيها. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تسجيل معدل تدفق الدم من الوريد البابي. </li></ol> 5.3) قياس المشترك تدفق الشريان الكبدي <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تشريح الشريان الكبدي المشترك بحذر. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مكان واحد 6-0 خياطة الحرير حول السفينة لتسهيل رفع السفينة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع التحقيق حول تدفق الشريان. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قياس تدفق الدم والحصول على البيانات. </li></ol> 5.4) قياس ضغط الوريد البابي (PVP) <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> اختيار فرع واحد من الوريد المساريقي مع عدد قليل من فروع جانبية، والتي تستنزف مباشرة في الوريد البابي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Ligate النهاية البعيدة من الوريد المساريقي المحدد. تأكد من أن ربط قريب من أنبوب الأمعاء. Ligate فروعها الصغيرة </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع 2 وixing باستخدام الغرز 6-0 البرولين حول الوريد. النقطة الرئيسية من هذا الإجراء هو تجنب لمس الشريان المساريقي عندما ligating الوريد. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> المشبك نهاية القريبة من الوريد البابي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 2 وضع الغرز إقامة باستخدام 10-0 البرولين. سوف يحدث بعض النزيف منذ خياطة إقامة يجب تخترق جدار الأوعية الدموية من الوريد المساريقي يرام. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إجراء شق صغير في الوريد باستخدام microscissor بشكل غير مباشر في زاوية 45 درجة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ادخال القسطرة ميلار عن طريق الوريد المساريقي في الوريد البابي وإصلاحه </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تسجيل ضغط الوريد البابي. في نهاية هذا الإجراء، التضحية الفئران عن طريق استنزاف تحت التخدير. </li></ol>

<ol>
	<li>Albuszies, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+increased+cardiac+output+on+hepatic+and+intestinal+microcirculatory+blood+flow,+oxygenation,+and+metabolism+in+hyperdynamic+murine+septic+shock.">Effect of increased cardiac output on hepatic and intestinal microcirculatory blood flow, oxygenation, and metabolism in hyperdynamic murine septic shock.</a> Crit Care Med. 33 (10), 2332-2338 (2005).</li><li>Bernhard, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Phosphatidylcholine+molecular+species+in+lung+surfactant:+composition+in+relation+to+respiratory+rate+and+lung+development.">Phosphatidylcholine molecular species in lung surfactant: composition in relation to respiratory rate and lung development.</a> Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 25 (6), 725-731 (2001).</li><li>Cheever, A. W., Warren, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Portal+vein+ligation+in+mice:+portal+hypertension,+collateral+circulation,+and+blood+flow.">Portal vein ligation in mice: portal hypertension, collateral circulation, and blood flow.</a> 18, 405-407 (1963).</li><li>Costa, G., Aguiar, B. G., Coelho, P. M., Cunha-Melo, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=On+the+increase+of+portal+pressure+during+the+acute+and+chronic+phases+of+murine+schistosomiasis+mansoni+and+its+reversibility+after+treatment+with+oxamniquine.">On the increase of portal pressure during the acute and chronic phases of murine schistosomiasis mansoni and its reversibility after treatment with oxamniquine.</a> Acta Trop. 89 (1), 13-16 (2003).</li><li>Cui, S., Shibamoto, T., Zhang, W., Takano, H., Kurata, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Venous+resistance+increases+during+rat+anaphylactic+shock.">Venous resistance increases during rat anaphylactic shock.</a> Shock. 29 (6), 733-739 (2008).</li><li>Geerts, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+three+research+models+of+portal+hypertension+in+mice:+macroscopic,+histological+and+portal+pressure+evaluation.">Comparison of three research models of portal hypertension in mice: macroscopic, histological and portal pressure evaluation.</a> Int. J. Exp. Pathol. 89 (4), 251-263 (2008).</li><li>Huang, H., Deng, M., Jin, H., Dirsch, O., Dahmen, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intraoperative+vital+and+haemodynamic+monitoring+using+an+integrated+multiple-channel+monitor+in+rats.">Intraoperative vital and haemodynamic monitoring using an integrated multiple-channel monitor in rats.</a> Lab Anim. 44 (3), 254-263 (2010).</li><li>Krege, J. H., Hodgin, J. B., Hagaman, J. R., Smithies, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+noninvasive+computerized+tail-cuff+system+for+measuring+blood+pressure+in+mice.">A noninvasive computerized tail-cuff system for measuring blood pressure in mice.</a> Hypertension. 25 (5), 1111-1115 (1995).</li><li>Kuga, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rapid+and+local+autoregulation+of+cerebrovascular+blood+flow:+a+deep-brain+imaging+study+in+the+mouse.">Rapid and local autoregulation of cerebrovascular blood flow: a deep-brain imaging study in the mouse.</a> J. Physiol.. 587 (Pt 4), 745-752 (2009).</li><li>Muraki, T., Strain Kato, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=difference+in+the+effects+of+morphine+on+the+rectal+temperature+and+respiratory+rate+in+male+mice.">difference in the effects of morphine on the rectal temperature and respiratory rate in male mice.</a> Psychopharmacology (Berl). 89 (1), 60-64 (1986).</li><li>Nielsen, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Left+ventricular+volume+measurement+in+mice+by+conductance+catheter:+evaluation+and+optimization+of+calibration.">Left ventricular volume measurement in mice by conductance catheter: evaluation and optimization of calibration.</a> Am. J. Physiol Heart Circ. Physiol. 293 (1), H534-H540 (2007).</li><li>Sakamoto, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improvement+of+portal+hypertension+and+hepatic+blood+flow+in+cirrhotic+rats+by+oestrogen.">Improvement of portal hypertension and hepatic blood flow in cirrhotic rats by oestrogen.</a> Eur. J. Clin. Invest. 35 (3), 220-225 (2005).</li><li>Reverter, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impact+of+deep+sedation+on+the+accuracy+of+hepatic+and+portal+venous+pressure+measurements+in+patients+with+cirrhosis.">Impact of deep sedation on the accuracy of hepatic and portal venous pressure measurements in patients with cirrhosis.</a> Liver Int. 34 (1), 16-25 (2014).</li></ol>

تعلن الكتاب أنه ليس لديهم المصالح المالية المتنافسة.

رصد ديناميكا الدم الكبد هو أداة بحثية هامة في الكبد والجراحة الكبدية الصفراوية. الحصول على البيانات الدورة الدموية الكبدية يساعد على توصيف تأثير الإجراءات الكبدية الصفراوية على الدورة الدموية. هناك حاجة إلى الحصول على بيانات الدورة الدموية الكبدية أيضا لدراسة تأثير الأدوية التي تؤثر الضغط البابي وتدفق البوابة، على سبيل المثال، حسب الحاجة في دراسات تقييم العقاقير فعال في الأوعية. على الرغم من صغر حجمها، والمعلمات الحيوية، النظامية وديناميكا الدم الكبدية يمكن رصدها في الفئران. كانت الخطوات الحاسمة ضمن البروتوكول على النحو التالي: أولا، من المهم وضع الحيوان على وسادة الاحترار خلال الإجراء بأكمله لتجنب انخفاض حرارة الجسم مما قد يؤدي إلى ضعف الدورة الدموية. ثانيا، لا بد من توخي الحذر جدا عند تشريح الأوعية على فأرة الحاسوب، منذ جدار الوعاء الدموي من الماوس هش جدا ورقيقة. يبدو أفضل لإصلاح جدار الوعاء الدموي عن طريق الاستيلاء على بعض الأنسجة الدهنية على السطح البريد بدلا من الاستيلاء على جدار الوعاء نفسه. ثالثا، من المهم جدا لتجنب ربط الشريان المساريقي عرضي لعدم عرقلة إمدادات الشرايين عند وضع الغرز حول تحديد الوريد المساريقي. ومع ذلك، فإن تقنية التوجيه الغازية لديها بعض القيود. أول واحد هو الغزو بنفسها. هذه التقنية هي طريقة الرصد الغازية، الأمر الذي يتطلب التدخل الجراحي. وبالتالي فإن الإجراء مراقبة نفسها قد تتسبب في آثار جانبية للحيوانات. ومن هنا، استخدمنا فقط هذا الإجراء للحصول على المعلمات الدورة الدموية في الحيوانات العادية والحادة في التجارب، ولكن ليس في التجارب البقاء. في الخطوة التالية، ونحن نريد لتقييم هذه التقنية في التجارب البقاء. والقيد الثاني من هذا الإجراء هو أنه يتطلب خبرة كبيرة المجهرية. يجب فقط أن يتم تنفيذ مراقبة الدورة الدموية في الفئران عن طريق microsurgeons مدربين على وجه التحديد. قدم المساواة أصعبر من هذا الإجراء الرصد هو إدخال القسطرة ميلار في الوريد المساريقي صغيرة، لأن هذا المنوال لا يزال هشا للغاية. في أيدينا، هناك حاجة لحوالي 10 عمليات التدريب لmicrosurgeon ذوي الخبرة قبل التمكن من الناحية الفنية هذا الإجراء. وقد عرفت تجربة بعد أن أجريت بنجاح أكثر من 50 مفاغرة الأوعية الدموية (الشريان السباتي، الوريد الوداجي) في الجرذان أو الفئران. القيد الثالث هو أن الضغط البوابة التي تم الحصول عليها مع هذا الأسلوب قد يكون تحت نطاق الفسيولوجية للحيوان العادي. المساريقي ربط الوريد وإدخال القسطرة قد يقلل من الحجم الكلي للاستنزاف الدم في الوريد البابي بنسبة تقدر ب 10٪. ومع ذلك، هذا النطاق الفسيولوجية لا يمكن الحصول عليها باستخدام الأجهزة المتوفرة حاليا. وبالمثل، فإن تأثير التخدير نفسها على PVP لا يمكن استبعاد 13. ومع ذلك، منذ تخضع جميع الحيوانات إلى نفس التدخل، فإن الخطأ المحتمل أن يكون خطأ منهجي. وبالتالي، دينبغي أن يتم تفسير آتا بحذر تركز على التغيرات النسبية داخل حيوان وليس بالضرورة على الاختلافات المطلقة بين الحيوانات. ومع ذلك، هناك بدائل قليلة لرصد الدورة الدموية الغازية في القوارض. مراقبة غير الغازية يقتصر على الاستحواذ على ضغط الدم النظامية. الضغط البابي أو تدفق المدخل لا يمكن تحديد غير جراحية في الفئران. مراقبة القياس عن بعد ويقتصر أيضا إلى الاستحواذ على ضغط الدم النظامية. لا توجد تقارير بشأن حيازة القياس عن بعد من المعلمات الدورة الدموية الأخرى. هناك حاجة إلى هذا الإجراء مراقبة أثناء العملية الكاملة لفهم العمليات الفسيولوجية الكبدية مثل تنظيم التروية الكبد، وتجديد الكبد والجراحة الكبدية الصفراوية شامل. القدرة على رصد وجمع البيانات من حيوانات المختبر intraoperatively في الوقت الحقيقي مما يمثل تقدما كبيرا في دراسة دي الكبدsease وارتفاع ضغط الدم البابي.

وكان الهدف العام من هذا الفيديو لإظهار إجراء رصد في الوقت الحقيقي لاكتساب المعلمات الدورة الدموية الجهازية والكبد. الأساس المنطقي لتطوير هذا الإجراء هو قيمة كبيرة للتدخلات التجريبية في الفئران التي تتطلب الحصول على المعلمات الدورة الدموية الجهازية والكبد. يمكن تطبيق الإجراء للحيوانات ساذجة وأثناء أو بعد أمراض الكبد الصفراوي التدخل الجراحي تجريبي معين، مثل استئصال الكبد الجزئي، ربط الوريد البابي وزراعة الكبد. الحصول على البيانات الدورة الدموية الكبدية في القوارض يتطلب إجراء الغازية المقترحة. نضح الكبدي لا يمكن الحصول عليها غير جراحية. ومع ذلك، هناك بدائل لشراء ضغط الدم النظامية. وقد استخدمت تقنيات الرصد مثل تقنية ذيل صفعة 8 للحصول على ضغط الدم في كل من الفئران والجرذان. تقنية ذيل صفعة يمكن تطبيقها في consciالحيوانات الأوس. عند قياس ضغط الدم، ويحتاج الحيوان إلى وضعها وثابتة في موقف غير مريح معين. في دليل الجهاز الذيل صفعة، ينص الصانع ان الفئران قد تصبح العصبي وشدد والتي قد يقلل من الدورة الدموية في الذيل. تحت هذا الظرف، وضغط الدم المحيطي المكتسبة في الذيل قد يكون أقل بكثير من ضغط الدم المركزي. تم تنفيذ الإجراء الرصد الكامل مع شاشة متعددة القنوات متكامل باستخدام سلسلة من أجهزة الاستشعار للحصول على البيانات. تم الحصول على ضغط الدم عن طريق إدخال قسطرة في الإناء منهما بعد تشريح دقيق والتعرض المجهرية تحت المجهر. تم قياس معدل التدفق عن طريق وضع مسبار تدفق أسرع من الصوت حول كل سفينة. أبلغنا بالفعل إجراء مراقبة أثناء العملية مماثلة للفئران مما أدى إلى سلسلة شاملة من البيانات الدورة الدموية الفسيولوجية مماثلة لسينغلوذكرت البيانات الإلكترونية من المجموعات الأخرى 7. لذا اعتبرنا هذا الإجراء لتمثل أساسا جيدا لتكييفه مع الماوس، وهي من الأنواع 10 أضعاف أصغر من الفئران. الفرق الرئيسي إلى إجراء الفئران هو استخدام القسطرة ميلار للحصول على بيانات ضغط الدم بدلا من نظام القسطرة القائم على السائل. تم الحصول على بيانات التدفق أيضا مع تحقيقات تدفق أسرع من الصوت، فقط تلك أصغر بكثير من الأوعية الفئران المقابلة. نظرا لصغر حجم الحيوان، والأجهزة من الفئران يمثل تحديا من الناحية التقنية، ولكن ممكنا. بمجرد الانتهاء من الأجهزة، والحصول على البيانات وتحليل البيانات الحياة الأساسي هو بسيط، منذ إعداد ملف محدد مسبقا يمكن استخدامها. ملف الإعداد لابد من تعريف مرة واحدة في بداية سلسلة من التجارب، ويمكن تخزينها واستخدامها لجميع التجارب اللاحقة. حتى الآن طبقنا هذا الإجراء لتقييم آثار الدورة الدموية الكبدية الحادة في التجارب. قمنا بقياس CAP وPVP قبل ومباشرة بعد استئصال الكبد الجزئي 70٪ (PH) وتحامل / تجارب تحامل دي. نحن فرضت الرباط أمراض الكبد الاثني عشر من الفص الأيمن يمثل 20٪ من الكبد تليها كتلة بواسطة وجيزة (5MIN) لقط من الوسيط والفص الجانبي الأيسر يمثل تماما 90٪ من كتلة الكبد. بدأ دي لقط مع الافراج عن المشبك من الفص الأيمن تليها تحرير الوسيط والفص الجانبي الأيسر. كان الوقت القصوى لقط أقل من 10 دقيقة.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="606">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:104px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:167px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">PowerLab 16/30&#160;</td>
			<td style="width:104px;">ADInstruments</td>
			<td>PL3516</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Quad Bridge Amp</td>
			<td style="width:104px;">ADInstruments</td>
			<td>&#160;FE224</td>
			<td>Bridge amplifier&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Animal Bio Amp</td>
			<td style="width:104px;">ADInstruments</td>
			<td>&#160;FE136</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Needle Electrodes for FE136 (3 pk)</td>
			<td style="width:104px;">ADInstruments</td>
			<td>&#160;MLA1213</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Perivascular Flowmeter Module</td>
			<td style="width:104px;">Transonic</td>
			<td style="width:119px;">TS420&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Flowprobe MA0.5PSB/MA1PSB</td>
			<td style="width:104px;">Transonic</td>
			<td style="width:119px;">MA0.5PSB/MA1PSB</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">SPR-1000 Mouse Pressure Catheter</td>
			<td style="width:104px;">Millar instruments</td>
			<td>841-0001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">fluid filled catheter&#160;</td>
			<td>Terumo</td>
			<td style="width:119px;">SR+DU2619PX</td>
			<td>26G, 0.64&#215;19mm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;"></td>
			<td></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">micro scissors</td>
			<td>F&#183;S&#183;L</td>
			<td>No. 14058-09</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">micro serrefine</td>
			<td>F&#183;S&#183;L</td>
			<td>No.18055-05</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Micro clamps applicator</td>
			<td style="width:104px;">F&#183;S&#183;L</td>
			<td style="width:119px;">No. 18057-14</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Straight micro forceps</td>
			<td style="width:104px;">F&#183;S&#183;L</td>
			<td style="width:119px;">No. 00632-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Curved micro forceps</td>
			<td style="width:104px;">F&#183;S&#183;L</td>
			<td style="width:119px;">No. 00649-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">needle-holder</td>
			<td style="width:104px;">F&#183;S&#183;L</td>
			<td style="width:119px;">No. 12061-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;"></td>
			<td style="width:104px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">6-0 silk</td>
			<td style="width:104px;">ethicon</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">6-0 prolene</td>
			<td style="width:104px;">ethicon</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">7-0 prolene</td>
			<td style="width:104px;">ethicon</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">10-0 prolene</td>
			<td style="width:104px;">ethicon</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Tail cut-off device&#160;</td>
			<td style="width:104px;">Kent Scientific</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">www.kentscientific.com</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">LabChart7</td>
			<td style="width:104px;">ADInstruments</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">data&#160; analysis software&#160;</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

monitoring of systemic and hepatic hemodynamic parameters in mice

استخدام نماذج الماوس في البحث التجريبي هو من أهمية كبيرة لدراسة علم وظائف الأعضاء الكبد والاضطرابات المرضية في جسم المريض. ولكن نظرا لصغر حجم الماوس، ونادرا ما وصفه التفاصيل الفنية لإجراء مراقبة أثناء العملية مناسبة لالماوس. لقد ذكرت سابقا إجراء الرصد للحصول على المعلمات الدورة الدموية للفئران. الآن، نحن تكييفها الإجراء للحصول على المعلمات الدورة الدموية الجهازية والكبد في الفئران، وهي من الأنواع عشرة أضعاف أصغر من الفئران. يوضح هذا الفيلم الأجهزة من الحيوانات وكذلك عملية الحصول على البيانات اللازمة لتقييم ديناميكا الدم النظامية والكبد في الفئران. سجلت المعلمات الحيوية، بما في ذلك درجة حرارة الجسم ومعدل التنفس ومعدل ضربات القلب في جميع أنحاء الإجراء بأكمله. تتكون المعلمات الدورة الدموية الجهازية من ضغط الشريان السباتي (CAP) والضغط الوريدي المركزي (CVP). وتشمل المعلمات نضح الكبدية ضد البابيعين الضغط (PVP)، ومعدل تدفق المدخل وكذلك معدل تدفق الشريان الكبدي المشترك (الجدول 1). الأجهزة والحصول على البيانات لتسجيل تم الانتهاء من القيم العادية في غضون 1.5 ساعة. بقيت المعلمات الدورة الدموية الجهازية والكبد ضمن نطاقات العادية أثناء هذا الإجراء. هذا الإجراء هو تحدي ولكن ممكنا. نحن بالفعل بتطبيق هذا الإجراء لتقييم ديناميكا الدم في الكبد في الفئران العادية وكذلك أثناء استئصال الكبد الجزئي 70٪ في الفص الكبد وتحامل التجارب. يعني PVP بعد استئصال (ن = 20)، وكان 11.41 ± 2.94 CMH 2 O الذي كان أعلى بكثير (P &lt;0.05) من قبل الاستئصال (6.87 ± 2.39 CMH 2 O). أشارت نتائج الفص الكبد تحامل التجربة أن هذا الإجراء مراقبة حساس ومناسب للكشف عن تغيرات صغيرة في الضغط البابي ومعدل التدفق المدخل. في الختام، هذا الإجراء هو موثوق بها في أيدي ذوي الخبرة جراح الصغير ولكن ينبغي أن يقتصر على إكسبeriments حيث تكون هناك حاجة على الاطلاق الفئران.

المعلمات الحيوية للفئران مثل معدل التنفس ومعدل ضربات القلب ومن الواضح أن أعلى بكثير مما كان عليه في الفئران. يعني النظامية ضغط الدم وضغط الوريد الوداجي مماثلة لقيم الفئران وحتى مماثل للبيانات الإنسان. بيانات الدورة الدموية الكبدية مختلفة اضح. حصلنا على القيم العادية من 8 الفئران. تراوحت تدفق الدم البابي في الفئران العادية بين 1،6-2،3 مل / دقيقة. التدفق في الشريان الكبدي المشترك تراوحت 0،10-0،35 مل / دقيقة. كان ضغط الوريد البابي في الحيوانات الطبيعية في مجموعة واسعة 4،4 حتي 11،2 CMH 2 O مع قيمة متوسط ​​8.09 ± 2.47 CMH 2 O (الجدول 1). هذه مجموعة واسعة قد تؤدي إلى اختلافات صغيرة ولكنها لم تكن ذات دلالة عند مقارنة القيمة المتوسطة من مجموعات صغيرة من حيوانات طبيعية. منذ لاحظنا الفروق الفردية بين كبيرة وخصوصا في الضغط البابي، نحن اختبار ما إذا كان يمكن أن يتم الكشف عن الفروق الفردية داخل صغيرة مع هذه التكنولوجيايت ضمن. قمنا بتقييم هذا الإجراء في اثنين من إعدادات التجريبية المختلفة: جزئي استئصال الكبد والكبد الفص لقط / دي لقط. الضغط البابي قبل ومباشرة بعد استئصال الكبد الجزئي 70٪ (ن = 20) في نفس الحيوان (الشكل 1) بنسبة 2 أضعاف من 6.87 ± 2.39 و 11.41 ± 2.94 CMH 2 O (P = &lt;0.001). وكانت هذه النتائج في مجموعة مماثلة كما لوحظ في الأنواع الأخرى 5،12، وكذلك في البشر 7. تم الحصول عليها الطبيعي ضغط الوريد البابي والضغط البابي قبل الاستئصال من مجموعتين مختلفتين (واحد من مجموعة المعلمات المراقبة العادية، والآخر 70٪ من مجموعة PH). يرجع ذلك إلى مجموعة واسعة من الضغط البابي في الفئران العادية (من 4 إلى 11 CMH 2 O)، قد يكون متوسط ​​قيم مجموعات صغيرة من حيوانات مختلفة قليلا، كما لوحظ في تجربتنا (8.09 ± 2.47 CMH 2 O مقابل 6.87 ± 2.39 CMH 2 O). ومع ذلك، عند تحليل البيانات، وجدنا أنه لا يوجد statistically اختلاف كبير بين هاتين المجموعتين (P = 0.237). تم تصميم /-لقط لقط دي التجربة لإثبات أن هذا الإجراء هو حساسة بما يكفي لالتقاط التغيرات أصغر في الضغط البوابة. أدى لقط من الفص الأيمن يمثل 20٪ من كتلة الكبد في أي بزيادة قدرها حوالي 17٪. مزيد من تحامل من الوسيط والفص الجانبي الأيسر تسبب بزيادة قدرها على الأقل 2-3 أضعاف مقارنة مع ضغط بوابة الانطلاق. عاد الضغط البابي تدريجيا إلى ضغط البدء، عندما الافراج عن المشبك من الفص الأيمن مما أدى إلى لقط من 70٪ من الكبد. عاد الضغط إلى مستوى الانطلاق عند إزالة المشبك من الوريد البابي الأيسر توريد الوسيط والفص الجانبي الأيسر (الشكل 2 والجدول 2). ظلت MAP المجموعة عملية صورية ثابتة ضمن 1H بعد فتح البطن. خريطة الفئران في المجموعة الضابطة، التي تم الحصول عليها عند نقطة زمنية متماثلةكما هو الحال في التجربة لقط، كان لا يوجد فرق كبير مقارنة مع خطة عمل البحر المتوسط ​​من المجموعة التجريبية. كشفت نتائج كل التجارب أن التغييرات الصغيرة حتى داخل الفرد أقل من 20٪ يمكن أن يتم الكشف عن هذا الإجراء. المضاعفات نموذجية مثل نزيف حاد واحتقان قد تحدث أثناء العملية. منذ فقدان الدم الشديد قد يسبب انخفاضا كبيرا خطة عمل البحر المتوسط ​​وكذلك حماية الأصناف النباتية، ينبغي القضاء على الفئران مع نتائج هذا التعقيد. لتجنب الازدحام وتخثر وريدي عند تنفيذ التجربة الكبد الفص لقط، نقترح حقن الهيبارين جرعة صغيرة (500 U / كجم) داخل الجراحة قبل التثبيت. الشريان الكبدي شائع يمكن الخضوع لتشنج سفينة عابرة على التعامل مع مثل رفع السفينة، ووضع التحقيق. قد يؤدي ذلك إلى حدوث نقص تروية عابرة وجيزة من الكبد. بشكل عام، يمكن للتشنج تزول عفويا في غضون دقائق. وتشنج الأوعية الدموية قصيرة في CHA لا يطرح مشكلة خطيرةلحياة الحيوان، ولكن قد تتداخل مع النتائج التجريبية، وعندما تركز على إصابة الكبد نقص التروية ضخه. في الختام، هذا الإجراء هو تحدي ولكن ممكنا. فإنه يتطلب بعض التدريب حتى عن ذوي الخبرة الجراحين الدقيقة. بسبب المقارنة تقلب بين الفردية العالية للبيانات التي تم الحصول عليها ضغط في الحيوانات المختلفة قبل وبعد التدخل قد لا يؤدي إلى نتائج حاسمة. لذا نوصي هذا الإجراء لدراسة التنظيم على المدى القصير من ديناميكا الدم في الكبد الحادة التجارب من خلال الحصول على البيانات قبل وبعد تدخل ضمن نفس الحيوان. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr height="26"><td colspan="2"> المعلمات </td><td> حصلت على البيانات الخاصة </td><td> وذكرت المعلمات </td></tr><tr><td rowspan="3"> المعلمات الحيوية </td><td> معدل ضربات القلب (ن = 8) </td><td> 418 ± 55 BPM </td><td> 389 (353-566) BPM 1 </td></tr><tr><tد&gt; معدل التنفس (ن = 2) </td><td> 162 ± 11 BPM </td><td> 254 ± 2 BPM 28 </td></tr><tr><td> درجة الحرارة (ن = 8) </td><td> 33.56 ± 0.54 ° C </td><td> 36،1-36،6 ° C 11 </td></tr><tr><td colspan="2"> ضغط الدم النظامية (CAP) (ن = 8) </td><td> 130.54 ± 20.47 CMH 2 O (= 96.02 ± 15.06 ملم زئبقي) </td><td> 94 ± 15 مم زئبقي 9 </td></tr><tr><td colspan="2"> الضغط الوريدي المركزي (CVP) (ن = 2) </td><td> 8.90 ± 3.25 CMH 2 O </td><td> 5.9 ± 2.0 CMH 2 O 11 </td></tr><tr><td rowspan="6"> ديناميكا الدم الكبدية </td><td rowspan="2"> تدفق الوريد البابي (ن = 6) </td><td rowspan="2"> 2.03 ± 0.24 مل / دقيقة </td><td> 3.0 (2،5-3،1) مل / دقيقة 1 </td></tr><tr><td> 3.3 مل / دقيقة 1 </td></tr><tr><td> المشترك تدفق الشريان الكبدي (ن = 6) </td><td> 0.20 ± 0.09 مل / دقيقة </td><td> لا FOU<html> الثانية </td></tr><tr><td rowspan="3"> PVP (ن = 8) </td><td rowspan="3"> 8.09 ± 2.47 CMH 2 O (= 5.95 ± 1.82mmHg) </td><td> 5.3 ± 1.4 سم 3 المالحة </td></tr><tr><td> 8.7 ± 2.1 ملم زئبقي 4 </td></tr><tr><td> 4mmHg 6 </td></tr></tbody></table> الجدول 1. المعلمات الدورة الدموية الجهازية والكبد من الفئران العادية المكتسبة باستخدام هذا الإجراء مراقبة CAP: ضغط الشريان السباتي. MAP: يعني الضغط الشرياني. CVP: الضغط الوريدي المركزي؛ PVP: ضغط الوريد البابي. <img alt="الشكل 1" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51955/51955fig1highres.jpg" width="500" /> الشكل 1. PVP قبل وبعد 70٪ PH. البوابة ضغط الوريد قبل وبعد استئصال الكبد الجزئي 70٪ (ن = 20) كانت 6.87 ± 2.39 و 11.41 ± 2.94 CMH 2 O.www.jove.com/files/ftp_upload/51955/51955fig1highres.jpg &quot;الهدف =&quot; _ على بياض &quot;&gt; اضغط هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> المعلمات (cmH2O) </td><td> بعد فتح البطن </td><td> بعد تحامل 20٪ من الكبد (RL) </td><td> بعد تحامل 90٪ من الكبد (RL ML + + LLL) </td><td> بعد تحامل 70٪ من الكبد (ML + LLL) </td><td> في نهاية (إطلاق سراح جميع المشابك) </td></tr><tr><td> PVP - تحامل مجموعة إكسب (ن = 10) </td><td> 9.59 ± 4.00 </td><td> 10.45 ± 3.89 </td><td> 25.78 ± 8.99 </td><td> 16.91 ± 9.86 </td><td> 11.14 ± 4.48 </td></tr><tr><td> متوسط ​​CAP - مجموعة لقط إكسب (ن = 10) </td><td> 121.50 ± 18.67 </td><td> 95.89 ± 32.76 </td><td> 74.41 ± 35.35 </td><td> 93.88 ± 42.96 </td><td> 89.44 ± 44.20 </td></tr><tr><td> متوسط ​​CAP - الشام مجموعة (ن = 3) </td><td> 123.33 ± 12.42 </td><td> 121.0 ± 5.57 </td><td> 124.00 ± 8.66 </td><td> 127.33 ± 7.23 </td><td> 123.00 ± 8.89 </td></tr></tbody></table> الجدول 2. استجابة الدورة الدموية بعد لقط وإزالة الملقاط من فصوص الكبد المختلفة (ن = 10) RL: الفص الأيمن، ML: الفص الوسطي (بما في ذلك متوسط ​​الفص الأيمن والفص الأيسر وسيطة)، LLL: غادر الفص الجانبي. <img alt="الشكل 2" fo:content-width="7.18in" src="/files/ftp_upload/51955/51955fig2highres.jpg" width="675" /> الرقم 2. استجابة الدورة الدموية بعد لقط وإزالة الملقاط من فصوص الكبد المختلفة (ID الحيوان: CHI-108) A.. PVP الحق بعد إدخال القسطرة ميلار كان 8.8 CMH 2 O. PVP بعد تحامل 20٪ فص كبد كان 10.8 ارتفع CMH 2 OBPVP إلى 17.5 CMH 2 O بعد تحامل 90٪ فص الكبد. انخفضت C. PVP إلى 10.3 CMH 2 O عندما الافراج عن المشبك من الفص الأيمن. ذهب D.PVP إلى 8.7 CMH 2 </الفرعية&gt; O كما في البداية بعد الإفراج عن جميع المشابك. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51955/51955fig2highres.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Monitoring of Systemic and Hepatic Hemodynamic Parameters in Mice at JoVE.com

Monitoring of Systemic and Hepatic Hemodynamic Parameters in Mice

هذا الفيلم يوضح كيفية الحصول على ديناميكا الدم النظامية والكبد في الفئران. رصد كامل يشمل اكتساب المعلمات الحيوية، النظامية ضغط الدم، الضغط الوريدي المركزي، معدل تدفق الشريان الكبدي المشترك، وضغط الوريد البابي وكذلك معدل تدفق المدخل في الفئران.

رصد معلمات الجهازية والكبد الدورة الدموية في الفئران

The use of mouse models in experimental research is of enormous importance for the study of hepatic physiology and pathophysiological disturbances. ...

monitoring-of-systemic-and-hepatic-hemodynamic-parameters-in-mice

Google

Research

JoVE Journal

Medicine

15.9K Views.  Jena University Hospital.  هذا الفيلم يوضح كيفية الحصول على ديناميكا الدم النظامية والكبد في الفئران. رصد كامل يشمل اكتساب المعلمات الحيوية، النظامية ضغط الدم، الضغط الوريدي المركزي، معدل تدفق الشريان الكبدي المشترك، وضغط الوريد البابي وكذلك معدل تدفق المدخل في ا?...

Video: Monitoring of Systemic and Hepatic Hemodynamic Parameters in Mice

The bm12 Inducible Model of Systemic Lupus Erythematosus (SLE) in C57BL/6 Mice

Systemic lupus erythematosus (SLE) is an autoimmune disease with diverse clinical and immunological manifestations. Several spontaneous and inducible animal models mirror common components of human disease, including the bm12 transfer model. Upon transfer of bm12 splenocytes or purified CD4 T cells, C57BL/6 mice rapidly develop large frequencies of T follicular helper cells (Tfh), germinal center (GC) B cells, and plasma cells followed by high levels of circulating anti-nuclear antibodies. Since this model utilizes mice on a pure C57BL/6 background, researchers can quickly and easily study disease progression in transgenic or knockout mouse strains in a relatively short period of time. Here we describe protocols for the induction of the model and the quantitation Tfh, GC B cells, and plasma cells by multi-color flow cytometry. Importantly, these protocols can also be used to characterize disease in most mouse models of SLE and identify Tfh, GC B cells, and plasma cells in other disease models.

The bm12 Inducible Model of Systemic Lupus Erythematosus SLE in C57BL/6 Mice

The transfer of bm12 lymphocytes into a C57BL/6 recipient is an established model of systemic lupus erythematosus. Here we describe how to initiate disease using this model and how to characterize T follicular helper cells, germinal center B cells and plasma cells by flow cytometry.

ومحرض نموذج bm12 من الذئبة الحمامية الجهازية (SLE) في C57BL / 6 الفئران

Systemic lupus erythematosus (SLE) is an autoimmune disease with diverse clinical and immunological manifestations. Several spontaneous and inducible ...

Uncontrolled Hemorrhagic Shock Modeled via Liver Laceration in Mice with Real Time Hemodynamic Monitoring

Uncontrolled hemorrhage is an important cause of preventable deaths among trauma patients. We have developed a murine model of uncontrolled hemorrhage via a liver laceration that results in consistent blood loss, hemodynamic alterations, and survival.
Mice undergo a standardized resection of the left-middle lobe of the liver. They are allowed to bleed without mechanical intervention. Hemostatic agents can be administered as pre-treatment or rescue therapy depending on the interest of the investigator. During the time of hemorrhage, real-time hemodynamic monitoring via a left femoral arterial line is performed. Mice are then sacrificed, blood loss is quantified, blood is collected for further analysis, and organs are harvested for analysis of injury. Experimental design is described to allow for simultaneous testing of multiple animals.
Liver hemorrhage as a model of uncontrolled hemorrhage exists in the literature, primarily in rat and porcine models. Some of these models utilize hemodynamic monitoring or quantify blood loss but lack consistency. The present model incorporates quantification of blood loss, real-time hemodynamic monitoring in a murine model that offers the advantage of using transgenic lines and a high-throughput mechanism to further investigate the pathophysiologic mechanisms in uncontrolled hemorrhage.

Uncontrolled hemorrhage, an important cause of mortality among trauma patients, can be modeled using a standard liver laceration in a murine model. This model results in consistent blood loss, survival, and allows for testing hemostatic agents. This article provides the step-by-step process to perform this valuable model.

صدمة النزفية غير المنضبط نمذجة عبر الكبد تهتز في الفئران مع رصد الدورة الدموية في الوقت الحقيقي

Uncontrolled hemorrhage is an important cause of preventable deaths among trauma patients. We have developed a murine model of uncontrolled hemorrhage via ...

Invasive Hemodynamic Characterization of the Portal-hypertensive Syndrome in Cirrhotic Rats

This is a detailed protocol describing invasive hemodynamic measurements in cirrhotic rats for the characterization of portal hypertensive syndrome. Portal hypertension (PHT) due to cirrhosis is responsible for the most severe complications in patients with liver disease. The full picture of the portal hypertensive syndrome is characterized by increased portal pressure (PP) due to the increased intrahepatic vascular resistance (IHVR), hyperdynamic circulation, and increased splanchnic blood flow. Progressive splanchnic arterial vasodilation and increased cardiac output with elevated heart rate (HR) but low arterial pressure characterizes the portal hypertensive syndrome.
Novel therapies are currently being developed that aim to decrease PP by either targeting IHVR or increased splanchnic blood flow &#8212; but side effects on systemic hemodynamics may occur. Thus, a detailed characterization of portal venous, splanchnic, and systemic hemodynamic parameters, including measurement of PP, portal venous blood flow (PVBF), mesenteric arterial blood flow, mean arterial pressure (MAP), and HR is needed for preclinical evaluation of the efficacy of novel treatments for PHT. Our video article provides the reader with a structured protocol for performing invasive hemodynamic measurements in cirrhotic rats. In particular, we describe the catheterization of the femoral artery and the portal vein via an ileocolic vein and the measurement of portal venous and splanchnic blood flow via perivascular Doppler-ultrasound flow probes. Representative results of different rat models of PHT are shown.

Here we describe a detailed protocol for invasive measurements of hemodynamic parameters including portal pressure, splanchnic blood flow, and systemic hemodynamics in order to characterize the portal hypertensive syndrome in rats.

وصف متلازمة المدخل-ارتفاع ضغط الدم في الفئران Cirrhotic الفسيولوجية الغازية

This is a detailed protocol describing invasive hemodynamic measurements in cirrhotic rats for the characterization of portal hypertensive syndrome. ...

Invasive Hemodynamic Monitoring of Aortic and Pulmonary Artery Hemodynamics in a Large Animal Model of ARDS

One of the leading causes of morbidity and mortality in patients with heart failure is right ventricular (RV) dysfunction, especially if it is due to pulmonary hypertension. For a better understanding and treatment of this disease, precise hemodynamic monitoring of left and right ventricular parameters is important. For this reason, it is essential to establish experimental pig models of cardiac hemodynamics and measurements for research purpose. 
This article shows the induction of ARDS by using oleic acid (OA) and consequent right ventricular dysfunction, as well as the instrumentation of the pigs and the data acquisition process that is needed to assess hemodynamic parameters. To achieve right ventricular dysfunction, we used oleic acid (OA) to cause ARDS and accompanied this with pulmonary artery hypertension (PAH). With this model of PAH and consecutive right ventricular dysfunction, many hemodynamic parameters can be measured, and right ventricular volume load can be detected. 
All vital parameters, including respiratory rate (RR), heart rate (HR) and body temperature were recorded throughout the whole experiment. Hemodynamic parameters including femoral artery pressure (FAP), aortic pressure (AP), right ventricular pressure (peak systolic, end systolic and end diastolic right ventricular pressure), central venous pressure (CVP), pulmonary artery pressure (PAP) and left arterial pressure (LAP) were measured as well as perfusion parameters including ascending aortic flow (AAF) and pulmonary artery flow (PAF). Hemodynamic measurements were performed using transcardiopulmonary thermodilution to provide cardiac output (CO). Furthermore, the PiCCO2 system (Pulse Contour Cardiac Output System 2) was used to receive parameters such as stroke volume variance (SVV), pulse pressure variance (PPV), as well as extravascular lung water (EVLW) and global end-diastolic volume (GEDV). Our monitoring procedure is suitable for detecting right ventricular dysfunction and monitoring hemodynamic findings before and after volume administration.

We present a protocol of creating right ventricular dysfunction in a pig model by inducing ARDS. We demonstrate invasive monitoring of left and right ventricular cardiac output using flow probes around the aorta and the pulmonary artery, as well as blood pressure measurements in the aorta and pulmonary artery.

رصد الفسيولوجية الغازية من الهليوكبتر الشريان الاورطي والرئوي في نموذج حيوان كبير من الضائقة

One of the leading causes of morbidity and mortality in patients with heart failure is right ventricular (RV) dysfunction, especially if it is due to ...

Measurement of the Hepatic Venous Pressure Gradient and Transjugular Liver Biopsy

Here we provide a detailed protocol describing the clinical procedure of hepatic venous pressure gradient (HVPG) measurement in patients with advanced chronic liver disease followed by an instruction for transjugular biopsy. Under local anesthesia and ultrasound guidance, a catheter introducer sheath is placed in the right internal jugular vein. Using&#160;fluoroscopic guidance, a balloon catheter is advanced into the inferior vena cava (IVC) and inserted into a large hepatic vein. Correct and sufficient wedge position of the catheter is ensured by injecting contrast media while the balloon is blocking the outflow of the cannulated hepatic vein. After calibrating the external pressure transducer, continuous pressure recordings are obtained with triplicate recordings of the wedged hepatic venous pressure (WHVP) and free hepatic venous pressure (FHVP). The difference between FHVP and WHVP is referred to as HVPG, with values &#8805;10 mm Hg indicating clinically significant portal hypertension (CSPH). Before removing the catheter, pressure readings obtained in the IVC at the same level, as well as the right atrial pressure are recorded.
Finally, a transjugular liver biopsy can be obtained via the same vascular route. Different systems are available; however, core biopsy needles are preferred over aspiration needles, especially for cirrhotic livers. Again, under fluoroscopic guidance a biopsy needle introducer sheath is advanced into an hepatic vein. Next, the transjugular biopsy needle is gently advanced through the introducer sheath: (i) in case of aspiration biopsy, the needle is advanced into the liver parenchyma under aspiration and then removed quickly, or (ii) in case of a core biopsy, the cutting-mechanism is triggered inside the parenchyma. Several separate passages can be safely performed to obtain sufficient liver specimens via transjugular biopsy. In experienced hands, the combination of these procedures takes about 30-45 min.

Here, we present a protocol for measurement of hepatic venous pressure gradient (HVPG),the gold standard to diagnose clinically significant portal hypertension. Moreover, we describe how to perform a transjugular liver biopsy within the same session.

قياس التدرج الضغط الوريدي الكبدي وخزعة الكبد عبرة

Here we provide a detailed protocol describing the clinical procedure of hepatic venous pressure gradient (HVPG) measurement in patients with advanced ...

Standardized Hemorrhagic Shock Induction Guided by Cerebral Oximetry and Extended Hemodynamic Monitoring in Pigs

Hemorrhagic shock ranks among the main reasons for severe injury-related death. The loss of circulatory volume and oxygen carriers can lead to an insufficient oxygen supply and irreversible organ failure. The brain exerts only limited compensation capacities and is particularly at high risk of severe hypoxic damage.This article demonstrates the reproducible induction of life-threatening hemorrhagic shock in a porcine model by means of calculated blood withdrawal. We titrate shock induction guided by near-infrared spectroscopy&#160;and extended hemodynamic monitoring to display systemic circulatory failure, as well as cerebral microcirculatory oxygen depletion. In comparison to similar models that primarily focus on predefined removal volumes for shock induction, this approach highlights a titration by means of the resulting failure of macro- and microcirculation.

Hemorrhagic shock is a severe complication in seriously injured patients, which leads to life-threatening oxygen undersupply. We present a standardized method to induce hemorrhagic shock via blood withdrawal in pigs that is guided by hemodynamics and microcirculatory cerebral oxygenation.

الحث الموحد للصدمات النزفية مسترشداً بالقياس الأكسجة الدماغية والرصد الهيمودينامي الموسع في الخنازير

Hemorrhagic shock ranks among the main reasons for severe injury-related death. The loss of circulatory volume and oxygen carriers can lead to an ...

تحريض الدم الداخلي المعتمد على الجرعة في الخنازير عن طريق ضخ LPS

Lipopolysaccharide Infusion as a Porcine Endotoxemic Shock Model

Sepsis and septic shock are frequently encountered in patients treated in intensive care units (ICUs) and are among the leading causes of death in these patients. It is caused by a dysregulated immune response to an infection. Even with optimized treatment, mortality rates remain high, which makes further insights into the pathophysiology and new treatment options necessary. Lipopolysaccharide (LPS) is a component of the cell membrane of gram-negative bacteria, which are often responsible for infections causing sepsis and septic shock. 
The severity and high mortality of sepsis and septic shock make standardized experimental studies in humans impossible. Thus, an animal model is needed for further studies. The pig is especially well suited for this purpose as it closely resembles humans in anatomy, physiology, and size. 
This protocol provides an experimental model for endotoxemic shock in pigs by LPS infusion. We were able to reliably induce changes frequently observed in septic shock patients, including hemodynamic instability, respiratory failure, and acidosis. This will allow researchers to gain valuable insight into this highly relevant condition and evaluate new therapeutic approaches in an experimental setting.

تسليط الضوء على المؤلف: تحريض صدمة التسمم الداخلي التجريبية في الخنازير لدراسة الدورة الدموية وفشل الجهاز التنفسي

We provide a protocol for an experimental endotoxemic shock model in pigs by infusion of lipopolysaccharide.

تسريب عديد السكاريد الشحمي كنموذج صدمة للسموم الداخلية للخنزير

Sepsis and septic shock are frequently encountered in patients treated in intensive care units (ICUs) and are among the leading causes of death in these ...

<meta charset="utf8"></head><body>المعاوضة التنفسية الحادة الناجمة عن حمض الأوليك في الخنازير

A Porcine Model of Acute Respiratory Failure with a Continuous Infusion of Oleic Acid

This protocol outlines an acute respiratory distress model utilizing centrally administered oleic acid infusion in Yorkshire pigs. Prior to experimentation, each pig underwent general anesthesia, endotracheal intubation, and mechanical ventilation, and was equipped with bilateral&#160;jugular vein central vascular access catheters. Oleic acid was administered through a dedicated pulmonary artery catheter at a rate of 0.2 mL/kg/h. The infusion lasted for 60-120 min, inducing respiratory distress. Throughout the experiment, various parameters including heart rate, respiratory rate, arterial blood pressure, central venous pressure, pulmonary artery pressure, pulmonary capillary wedge pressure, end-tidal carbon dioxide, peak airway pressures, and plateau pressures were monitored. Around the 60 min mark, decreases in partial arterial oxygen pressure (PaO2) and fraction of oxygen-saturated hemoglobin (SpO2) were observed. Periodic hemodynamic instability, accompanied by acute increases in pulmonary artery pressures, occurred during the infusion. Post-infusion, histological analysis of the lung parenchyma revealed changes indicative of parenchymal damage and acute disease processes, confirming the effectiveness of the model in simulating acute respiratory decompensation.

<meta charset="utf8"></head><body>تسليط الضوء على المؤلف: استكشاف الأشكال الموجية الوريدية لمراقبة الجهاز التنفسي غير الغازية في الخنازير

Infusing oleic acid continuously into the pulmonary artery of an anesthetized adult pig induces acute respiratory failure, enabling controlled experimentation during acute respiratory decompensation.