This work was funded by The National Centre for the Replacement, Refinement and Reduction of Animals in Research (G1000121 ID no.94513) and the Oracle Cancer Trust. SE is supported by The Institute of Cancer Research and Cancer Research UK (grant number C309/A8274). We acknowledge NHS funding to the NIHR Biomedical Research Centre.

再現性サイズの腫瘍球の1世代<ol><li>リン酸緩衝生理食塩水（PBS; 25 cm 2以上8用の5ミリリットル- 75cm 2のフラスコを10 ml）で洗浄する腫瘍細胞の単層を、（74 CMの25cm 2のまたは2ミリリットル1 mlで細胞解離酵素を追加フラスコ2）2、37℃で細胞をインキュベートする- 5分。 </li><li>顕微鏡下で細胞の剥離を確認し、完全増殖培地（75cm 2のフラスコ25 cm 2以上8ミリリットルのための5ml）で細胞解離酵素を中和します。 </li><li> 5分間500×gで遠心分離し細胞懸濁液。 </li><li> 、上清を除去し、チューブをタップし、P1000ピペットを用いて完全増殖培地1ml中に細胞ペレットを再懸濁します。これは、細胞クラスターことなく、単一細胞懸濁液を得るべきです。 </li><li> （最適な細胞密度がOで各細胞株について決定する必要が2×10 4細胞/ ml -血球計数器を用いて細胞を計数し、0.5を得るために、細胞懸濁液を希釈300の腫瘍スフェロイド取得するRDER - 4日間の細胞播種12,13の後に直径500μm）を。 </li><li>無菌の容器に細胞懸濁液を移し、マルチチャンネルピ ​​ペットを使用して、よく超低付着（ULA）を96ウェル丸底プレート12に200μL/を分注します。 </li><li>インキュベーター（37℃、5％CO 2、湿度95％）でプレートを移します。 4日後、視覚的に腫瘍スフェロイドの形成を確認し、3次元浸潤アッセイを進めます。 </li></ol> 2. 3D腫瘍スフェロイド浸潤アッセイ<ol><li>氷上でBMMを解凍します。 </li><li> -20℃でP10、P200およびP1000ピペットと滅菌チューブのために（必要な総容量に応じて、1.5ミリリットル容量以上）を滅菌フィルターチップのセットを保管してください。 </li><li>氷の上で4日目のスフェロイドを含むULA 96ウェルプレートを置きます。 </li><li>マルチチャンネルピペットを用いて、穏やかに回転楕円体プレートからの増殖培地100μl/ウェルを削除します。私に向かって、このステップ角のためのヒントウェルとスフェロイドの場所の底部との接触を回避U底ウェルのnside壁;スフェロイドの乱れを最小限に抑えることができます。 </li><li>氷のように冷たいのヒントを使用して、氷のように冷たいチューブにBMMを転送します。サイトカイン誘導侵攻や薬物評価研究のため、氷のように冷たいのヒントを使用してBMMに（2×最終濃度で）試薬を加えます。例えば、S CALおよびCAL R扁平上皮癌細胞の浸潤を刺激する上皮成長因子（EGF）を使用します。 、静かに渦巻く泡の形成を回避することによって十分に混合します。 </li><li>ゆっくりウェルの内壁に向かって先端を目指し、U底ウェルにBMMの100μLを分注します。最適な画像解析のために、スフェロイドは、ウェル12の中心部に残っている必要があり 、この工程が最も重要です。 </li><li> 6複製/条件 - 5を許可する必要なすべてのウェルについて繰り返し手順2.6。必要に応じて、新たにチルド先端に変更します。 注：経験のある、ディスペンマルチチャンネルピペットを使用してそれ自体BMM。 </li><li>存在する場合、滅菌針を使用して、気泡を除去。 <ol><li>顕微鏡を用いて、視覚的にスフェロイドが中央位置にあることを確認してください。ない場合は、4℃で3分間、300×gでプレートを遠心します。これは、スフェロイドを中心に、各ウェル内に配置されていることを確認します。 </li></ol></li><li> 37℃のインキュベーターにプレートを転送し、BMMを固化することができます。 </li><li> 1時間後、マルチチャンネルピペットを用いて、穏やかに完全成長培地100μl/ウェルを追加します。サイトカイン誘導浸潤または薬物評価研究のために、培地（1×最終濃度）中のサイトカインまたは阻害剤が含まれます。試薬は、ステップ2.5でBMMに追加されなかった場合あるいは、（所望の最終濃度を3倍）、この時点で培地に追加します。 </li></ol> 3.自動画像取得<ol><li>サイトメーター上でのスキャンプレート間隔の駅で（仕様については、 装置材料の表を参照してください）すぐに72時間、またはより遅い侵入腫瘍細胞株のための96時間までのステップ2.10の後にゼロ（T0 =セットアップ浸潤アッセイの日は、時間からrting。 </li><li> 「Confluenceの「アプリケーションを選択します。 </li><li>回転楕円体にフォーカスがあることを確認し、必要に応じて、手動で調整し、「 設定オフフォーカス」修正。 </li><li> 「 サンプリングの設定 」の下では、ビュー（FOV）の中央のフィールドをスキャンする]を選択します。 BMMの添加に続いて、腫瘍スフェロイドは、このようにウェル全体をスキャンする必要はありません、中央の位置に残っている必要があります。 </li><li>ソフトウェアでは、プレートマップ上に強調表示することによってスキャンする井戸を定義します。 「 スキャン開始 」をクリックします。 注：スキャンは自動的に保存され、後でオフラインで確認することができます。 </li></ol> 4.自動画像解析<ol><li> 「Confluenceの「アプリケーションを選択します。 </li><li> 「分析」タブでは、APPLICを調整エーションの設定が（ 例えば 、「精度」：低、通常、高、「強度閾値」：1 - 15）はBMM（ 図1参照）内に延びる細胞プロセスおよび浸潤突起を含む回転楕円体の周りに正確なセグメンテーションを生成します。および/または種々の時点で、各腫瘍細胞株のための設定を調整します。 「Confluenceの&#39;アプリケーション措置選択FOVで、浸潤細胞で覆われたウェル領域の％。 </li><li>解析設定が適切であることを確認し、いくつかの異なるウェルをクリックすることで、プレートの他のスフェロイドのために（ すなわち、セグメント化は正確です）。分割は正確に回転楕円体の概要を示していない場合は、さらにアプリケーションの設定を調整します。 </li><li> 「 分析の開始 」をクリックします。 </li><li> 「 結果」タブで、分析の品質を確認するために、複数のウェルを確認してください。スプレッドシートプログラムにエクスポート」まあレベルデータ」。 </li><li> Repea全ての時点のt分析。科学的なグラフと選択肢の統計ソフトウェアを使用して、棒グラフの時間に対する複製ウェルおよびプロット侵入の平均％のコンフルエンス（％コンフルエンス）を計算します。 </li></ol> 5.マニュアル画像取得<ol><li>倒立顕微鏡を用いて、当該細胞株の浸潤の速度に応じて、96時間（96ウェルプレートのために、これは、約20を取る - 72まではt = 0から始まる時間間隔で各腫瘍スフェロイドのための画像を記録します - 30分）。 10X対物レンズを使用してください。浸潤領域が完全にビューの10Xフィールド内に捕捉するには大きすぎるとき4Xの目的に使用します。 </li><li>取得した各個々の画像を保存します。 </li><li>キャリブレーションのために、両方の10倍と4倍の目標を使用して、ステージの目盛り（1ミリメートル）の画像を撮影（および画像を保存）。 </li></ol> 6.手動画像解析<ol><li>選択した画像解析ソフトにステージ目盛画像を開きます。 </li><li> GRATを入力してくださいicule測定、単位（μm）と、（10Xまたは4X）使用目的やキャリブレーションを行います。この手順は、一度だけ必要です。後続の画像分析のために、単純に必要なキャリブレーション設定を再ロードします。 </li><li>浸潤アッセイの画像を開き、画像を得るために使用される顕微鏡対物レンズ（10倍または4倍）に応じて、キャリブレーション設定を選択します。 <ol><li>また、インポート画像は、撮像サイトメーター（ステップ3）で得られた倒立顕微鏡を用いて得られた画像について説明したように、手動で分析する（ 図3及び図4に示した結果を参照）。 </li></ol></li><li>スフェロイドがカバーするエリアを測定します。 <ol><li>代表的な結果（仕様は装置材料の表を参照のこと）のために、ここで使用されるソフトウェアでは、「メジャー」に移動し、「カウント/サイズ」を選択します。 「ファイル」、次に「設定ロード」を選択し、予め定めASSAを選択Y設定。そして、「カウント」を選択します。回転楕円体は、その後、正確にセグメント化されるべきです。 </li><li>代わりに「魔法の杖/トレース]ウィンドウを開くには、「オブジェクトをマージ/描画&#39;を「編集」に移動します。回転楕円体画像をクリックするとセグメンテーションを得るために、ワンドのカーソルを使用してください。手動でマウスを使用して、回転楕円体の輪郭を描くために（「 魔法の杖」ウィンドウで）「トレース」を選択します。 </li></ol></li><li>スプレッドシートに異なるパラメータ（面積、直径、周囲など ）のエクスポート測定。スプレッドシート上のレコードの関連画像情報（ 例えば 、ウェル数、相対時点）。 </li><li>科学的なグラフや統計ソフトウェアを使用して、時間に対する複製スフェロイド（侵略）の平均面積をプロットします。あるいは、線形GRAとして対時間領域に対するT = 0そしてプロット浸潤（％のT0）において、各時点でスフェロイド面積の変化を計算しますペーハー。 </li></ol>

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	<li>Astashkina, A., Mann, B., Grainger, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+critical+evaluation+of+in+vitro+cell+culture+models+for+high-throughput+drug+screening+and+toxicity.">A critical evaluation of in vitro cell culture models for high-throughput drug screening and toxicity.</a> Pharmacology &amp; therapeutics. 134 (1), 82-106 (2012).</li><li>Zimmermann, M., Box, C., Eccles, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Two-Dimensional+vs.+Three-Dimensional+In+Vitro+Tumor+Migration+and+Invasion+Assays.">Two-Dimensional vs. Three-Dimensional In Vitro Tumor Migration and Invasion Assays.</a> Methods and Protocols. 986, 227-252 (2013).</li><li>Hwang, Y. S., Park, K. K., Chung, W. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Invadopodia+formation+in+oral+squamous+cell+carcinoma:+the+role+of+epidermal+growth+factor+receptor+signalling.">Invadopodia formation in oral squamous cell carcinoma: the role of epidermal growth factor receptor signalling.</a> Arch. Oral. Biol. 57 (4), 335-343 (2012).</li><li>Wang, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Study+on+invadopodia+formation+for+lung+carcinoma+invasion+with+a+microfluidic+3D+culture+device.">Study on invadopodia formation for lung carcinoma invasion with a microfluidic 3D culture device.</a> PLoS One. 8 (2), e56448 (2013).</li><li>Friedl, P., Alexander, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cancer+invasion+and+the+microenvironment:+plasticity+and+reciprocity.">Cancer invasion and the microenvironment: plasticity and reciprocity.</a> Cell. 147 (5), 992-1009 (2011).</li><li>Brekhman, V., Neufeld, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+asymmetric+3D+in-vitro+assay+for+the+study+of+tumor+cell+invasion.">A novel asymmetric 3D in-vitro assay for the study of tumor cell invasion.</a> BMC Cancer. 9, 415 (2009).</li><li>Kleinman, H. K., Martin, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Matrigel:+basement+membrane+matrix+with+biological+activity.">Matrigel: basement membrane matrix with biological activity.</a> Semin. Cancer Biol. 15 (5), 378-386 (2005).</li><li>Boyden, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+chemotactic+effect+of+mixtures+of+antibody+and+antigen+on+polymorphonuclear+leucocytes.">The chemotactic effect of mixtures of antibody and antigen on polymorphonuclear leucocytes.</a> J. Exp. Med. 115, 453-466 (1962).</li><li>Nystrom, M. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+a+quantitative+method+to+analyse+tumour+cell+invasion+in+organotypic+culture.">Development of a quantitative method to analyse tumour cell invasion in organotypic culture.</a> The Journal of pathology. 205 (4), 468-475 (2005).</li><li>Deisboeck, T. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pattern+of+self-organization+in+tumour+systems:+complex+growth+dynamics+in+a+novel+brain+tumour+spheroid+model.">Pattern of self-organization in tumour systems: complex growth dynamics in a novel brain tumour spheroid model.</a> Cell Prolif. 34 (2), 115-134 (2001).</li><li>Harma, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comprehensive+panel+of+three-dimensional+models+for+studies+of+prostate+cancer+growth,+invasion+and+drug+responses.">A comprehensive panel of three-dimensional models for studies of prostate cancer growth, invasion and drug responses.</a> PLoS One. 5 (5), e10431 (2010).</li><li>Vinci, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Advances+in+establishment+and+analysis+of+three-dimensional+tumor+spheroid-based+functional+assays+for+target+validation+and+drug+evaluation.">Advances in establishment and analysis of three-dimensional tumor spheroid-based functional assays for target validation and drug evaluation.</a> BMC Biol. 10, 29 (2012).</li><li>Vinci, M., Zimmermann, M., Box, C., Eccles, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tumor+spheroid-based+migration+assays+for+evaluation+of+therapeutic+agents.">Tumor spheroid-based migration assays for evaluation of therapeutic agents.</a> Methods and Protocols. , 253-266 (2013).</li><li>Box, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+serum+protein+signature+associated+with+resistance+to+epidermal+growth+factor+receptor+tyrosine+kinase+inhibitors+in+head+and+neck+squamous+cell+carcinoma.">A novel serum protein signature associated with resistance to epidermal growth factor receptor tyrosine kinase inhibitors in head and neck squamous cell carcinoma.</a> Eur. J. Cancer. 49 (11), 2512-2521 (2013).</li><li>Khajah, M. A., Al Saleh, S., Mathew, S., M, P., Luqmani, Y. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+effect+of+growth+factors+on+invasion+and+proliferation+of+endocrine+resistant+breast+cancer+cells.">Differential effect of growth factors on invasion and proliferation of endocrine resistant breast cancer cells.</a> PLoS One. 7 (7), e41847 (2012).</li><li>Brosicke, N., van Landeghem, F. K., Scheffler, B., Faissner, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tenascin-C+is+expressed+by+human+glioma+in+vivo+and+shows+a+strong+association+with+tumor+blood+vessels.">Tenascin-C is expressed by human glioma in vivo and shows a strong association with tumor blood vessels.</a> Cell and tissue research. 354 (2), 409-430 (2013).</li><li>Cheung, K. J., Gabrielson, E., Werb, Z., Ewald, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Collective+invasion+in+breast+cancer+requires+a+conserved+basal+epithelial+program.">Collective invasion in breast cancer requires a conserved basal epithelial program.</a> Cell. 155 (7), 1639-1651 (2013).</li><li>Molina, J. R., Hayashi, Y., Stephens, C., Georgescu, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Invasive+glioblastoma+cells+acquire+stemness+and+increased+Akt+activation.">Invasive glioblastoma cells acquire stemness and increased Akt activation.</a> Neoplasia. 12 (6), 453-463 (2010).</li></ol>

すべての著者は、利害の競合する競合を宣言しません。

（神経膠芽腫とSCCHN）ここで説明する2つの腫瘍モデルは、具体的には、それらが効果的な治療法12に対する満たされていない必要性と臨床的に関連する局所浸潤癌であるように私たちの3Dアッセイを例示するために選択しました。薬物治療、 インビトロ薬力学（PD）バイオマーカーの変化の評価BMMおよび/ ​​または全体によって腫瘍球の侵入の免疫蛍光分析からの細胞回復を可能にする具体的な市販の試薬 ​​を使用し、次のウェスタンブロットまたは溶解物の免疫アッセイによって容易に行うことができ、次の染色をマウントします。 この浸潤アッセイは、in vitro薬物スクリーニングでの将来のための半固形培地ので、特に適切なへの腫瘍細胞の浸潤の迅速かつ再現性の評価に有用な技術です。癌細胞は、それらが腫瘍スフェロイドで示される「マイクロ腫瘍」から広がるように、3Dのようにマトリックスに侵入し、extracellul内に延びますARマトリックスのような環境。アッセイの真の三次元性が平坦とは異なる細胞形態に明らかである固体基板上に移動させるとき、付着形態の細胞が前提としています。侵入の程度は容易に、または画像化ソフトウェアと組み合わせて、標準的な顕微鏡を用いて、自動読み出しを可能にする、イメージングサイトメーターのいずれかを使用して定量します。さらに、この方法は、（細胞株は、蛍光タンパク質を発現するか、蛍光色素で予め標識付き例えば）13蛍光イメージングに適しています。 U字型のウェル内に回転楕円体の中心位置を乱す恐れがある場合の方法は、BMMの添加によって表されるだけの重要なステップで実行するのは簡単です。これは、異なる焦点面におけるスフェロイドと、次善の画像解析をもたらすことができます。これは、各ウェルに慎重にゆっくりとBMMを追加することが重要です。 BMMの添加後に、プレートをチェックすることをお勧めします顕微鏡下およびローカリゼーションが許容できないとみなされた場合、これは穏やかな遠心分離によって改善することができます。経験では、これはほとんど必要ありません。この方法は、堅牢かつ非常に再現性であるが、実験間の変動は、BMMの異なるバッチで発生する可能性があります。これを回避するために、一連の研究を完了するために、単一バッチから十分BMMを購入することが望ましいです。 （そのようなアッセイのためのような）方法の限界は、腫瘍細胞は、おそらく、アッセイの時間枠の間に受ける浸潤および増​​殖を区別するのが困難です。細胞の倍加時間を考慮し、またはそのようなサイトカラシンDなどの細胞周期阻害剤を導入することができるが、制御または明らかに、特に急速に成長する腫瘍細胞を、それらのために、腫瘍進行のこれらの二つの異なる側面を区別することは容易ではないことより「広大」のではなく、浸潤、侵入パターンを持っています。このためにそれは並列3D増殖アッセイは、任意の阻害または刺激剤の具体的な効果を評価するために実行されることが示唆されます。注意深い用量応答研究が行われている場合、それは、増殖に対する影響を最小限の濃度を選択することも可能です。例えば、我々はHSP90は17-AAGは、24時間で、50％（GI 50）12によって3Dの成長を阻害する濃度以下の濃度ですでにU-87 MG 3D腫瘍スフェロイドの浸潤を阻害する阻害することを示しました。 一方、このアッセイの重要性は、他の標準的な浸潤アッセイ（ 例えば 、フィルタに基づくアッセイまたは3Dマトリックス1中に単一の細胞の浸潤）と比較して、腫瘍細胞が似ている、回転楕円体から周囲のマトリックスに侵入することです&quot;したがって、マイクロ腫瘍」または「マイクロ転移」、とは、アカウントに腫瘤の病態生理学の重要な側面を取ります。我々は、本発明の方法は、情報を提供します最初にスフェロイドを残し、また、個々に、単一細胞をBMMにより遠い領域に達すると、腫瘍細胞の集団行動。さらに、腫瘍球内の細胞は、遺伝子発現の変化を介して、移動および浸潤を促進することができ、低酸素および栄養枯渇が発生する可能性があり、このような特徴は、2Dのアッセイには存在しません。また、これのすべては、より複雑な3D分析が容易に標的検証および創薬に使用することができるように、具体的な96ウェルプレートを使用することにより、高スループットフォーマットと最新の画像技術で利用可能です。 我々は、本発明の方法は、腫瘍細胞の浸潤のさらなる側面に対処するためのさらなるアプリケーションを収容することができます。具体的には、余分な複雑さは、回転楕円体自体または周囲のマトリックスの中に、例えば、線維芽細胞および/または内皮細胞のような宿主細胞の添加によって想定され得ます。これはまた、異なる同時の使用により（剛性の観点からだけではなく、変更することができますBMMのncentrations）だけでなく、組成の点で（採用腫瘍モデルの特定の組織/器官に依存して、他の成分を添加することにより：乳癌17）のための脳の癌16とコラーゲン例えば、テネイシン。 同様のセットアップ（スフェロイド及びイメージングの発生）は、腫瘍スフェロイドは、複雑な組織12または他の細胞特異的オルガノイド（ 例えばためのアストロサイトとに似た胚様体と共培養され、3D、組織浸潤を評価するために適合させることができます神経膠腫消化管癌の18または陰窩の文化）が、さらなる作業が自動化された画像解析を有効にする必要があります。

古典的な抗癌剤の開発は、腫瘍細胞の増殖を阻害し、かつ/またはプログラムされた細胞死（アポトーシス）を促進する細胞毒性薬をスクリーニングするためのインビトロ細胞ベースアッセイの使用に大きく集中しています。より最近では、努力は、悪性細胞増殖の基礎となる分子原因の阻害剤の開発と標的療法に向かって移動しています。いくつかの見事な結果にもかかわらず、そのような薬剤は、多くの場合、薬剤耐性の急速な発達と関連しています。これは、癌死亡の大部分の原因である腫瘍細胞の浸潤性および転移能であり、その再発性疾患はしばしばより攻撃的な表現型を示すことを考えると、それは、新規に同定するために、インビトロ実験モデルにおいて 1,2相補考慮することも論理的です癌のこれらの追加キー「顕著な特徴」を阻害する薬剤。 悪性進行の間に、腫瘍細胞は、取得します周囲の組織に侵入および/または遠隔臓器（転移）に拡散する能力。癌細胞は浸潤突起3,4を形成することにより基底膜を貫通します。これらの構造は、アクチンフィラメント、特定の接着タンパク質およびプロテイナーゼで富化一括腫瘍細胞の運動性及び細胞外マトリックス（ECM）5の分解に関与しているされています。浸潤突起は、ECMに延び、腫瘍細胞の浸潤のために重要であり、また、血行性（またはリンパ）播種および転移を促進する、脈管に溢出すると考えられています。 インビトロでの腫瘍細胞の浸潤を評価するための現在の標準的な方法は、以下のものが挙げられます。トランスウェルベースまたはボイデンチャンバーアッセイ単一細胞懸濁液は、ECM由来タンパク質の厚い層で被覆されたフィルタの上に播種した2,6。次いで、細胞を侵入し、化学誘引物質に反応して、下部チャンバーに移動します。一般的に使用されるECMタンパク質は、I型コラーゲン、または基底膜の天然の組成を模倣する基底膜様マトリックス（EHS腫瘍7から派生BMM、 例えば 、マトリゲル、）です。 フィルタベースのボイデンチャンバー型アッセイ8の代わりに、細胞は、それらがゲルに侵入個別にまたは集合的に、次に単層を形成し、（線維芽細胞を添加してもよいた）ECMゲルの上に播種することができます。浸潤は、ゲル表面9から走行浸潤細胞および/ ​​または距離の数の点で測定することができます。通常、細胞は、周囲のマトリックス2,6,10,11に腫瘍塊から侵入することを可能にするECMのゲル状の2つの層の間に配置された-腫瘍細胞はまた、完全にマトリックス中にいずれかの単一細胞懸濁液として、またはスフェロイドとして埋め込 ​​むことができます。 ここで説明した3次元（3D）腫瘍スフェロイド浸潤アッセイはhighlを使用して迅速、自動化侵入システムを提供しますウェルあたり1スフェロイドと、96ウェルプレートフォーマットでY再現性、標準化された方法12。 BMMは、腫瘍細胞が、スフェロイド本体から侵入先の半固体マトリックスを提供するために、各ウェルに直接添加されます。 96時間 - 腫瘍細胞浸潤の程度は、72の期間にわたって間隔でモニターされます。この方法は、上記のインビトロ浸潤アッセイで過電流、次のような利点を提供します：腫瘍細胞は、腫瘍の微小領域またはミクロ転移を模倣3D構造に編成されています。腫瘍スフェロイドのサイズは非常に再現性があります。浸潤アッセイは、二次プレートに移動する必要なく、腫瘍スフェロイド開発同じプレート中でその場で行われます。自動画像解析の最新技術と組み合わせる方法は、高含有量と腫瘍細胞の浸潤のハイスループット分析の両方を可能にします。 画像分析は、96ウェルをスキャンイメージングサイトメーターを用いて行われます10分以内にプレート。合流アプリケーションを使用することにより、浸潤の程度および速度は、単一の細胞によって、または細胞クラスターは、腫瘍スフェロイドから拡散及びマトリックスに侵入するのいずれかによって達成動的に測定することができます。低いスループットのために、画像解析のための別の方法は、倒立顕微鏡と標準画像化ソフトウェアの使用に基づいて、提示されます。

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1218">
	<tbody>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;width:297px;">Name of Reagent/ Equipment</td>
			<td style="width:161px;">Company</td>
			<td style="width:135px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:227px;">Web address</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:297px;">Corning Matrigel Basement Membrane Matrix</td>
			<td style="width:161px;">Corning</td>
			<td style="width:135px;">354234</td>
			<td>http://www.corning.com 
			Keep at&#160; 4 &#176;C to&#160; prevent solidification and dispense using cooled pipette tips</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:297px;">Cultrex Basement Membrane Extract, PathClear</td>
			<td style="width:161px;">Trevigen</td>
			<td style="width:135px;">3432-005-01</td>
			<td>http://www.trevigen.com 
			Keep at&#160; 4 &#176;C to&#160; prevent solidification and dispense using cooled pipette tips</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:297px;">Ultra-low attachment 96-well plate</td>
			<td style="width:161px;">Corning</td>
			<td style="width:135px;">7007</td>
			<td>http://www.corning.com</td>
		</tr>
		<tr height="60">
			<td height="60" style="height:60px;width:297px;">EGF</td>
			<td style="width:161px;">Miltenyi Biotec</td>
			<td style="width:135px;">130-093-825</td>
			<td>http://www.miltenyibiotec.com 
			Add 100 &#181;l 1% BSA (w/v) in water to 100 &#181;g EGF. To 25 &#181;l of this, add 4,975 &#181;l RHB-A medium to give a 10 &#181;g/ml working stock. Aliquot and store at -20&#186;C</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:297px;">RHB-A medium</td>
			<td style="width:161px;">Stem Cells Inc.</td>
			<td style="width:135px;">SCS-SF-NB-01</td>
			<td>http://www.stemcellsinc.com 
			For diluting EGF</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:297px;">DMEM</td>
			<td style="width:161px;">GIBCO</td>
			<td style="width:135px;">31966-021</td>
			<td>http://www.lifetechnologies.com/ 
			Warm in 37 &#176;C waterbath before use</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:297px;">Fetal Bovine Serum</td>
			<td style="width:161px;">Biosera</td>
			<td style="width:135px;">1001/500</td>
			<td>http://www.biosera.com 
			Heat at 56 &#176;C to inactivate complement before use</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:297px;">TrypLE</td>
			<td style="width:161px;">GIBCO</td>
			<td style="width:135px;">12605</td>
			<td>http://www.lifetechnologies.com/ 
			Cell dissociation solution</td>
		</tr>
		<tr height="60">
			<td height="60" style="height:60px;width:297px;">Celigo cytometer</td>
			<td style="width:161px;">Nexcelom Bioscience</td>
			<td style="width:135px;">n/a</td>
			<td>http://www.nexcelom.com 
			Specialist equipment for image capture and analysis.&#160; Manual image capture by microscopy and independent image analysis software is an alternative</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:297px;">IX70 inverted microscope</td>
			<td style="width:161px;">Olympus</td>
			<td style="width:135px;">n/a</td>
			<td>http://www.olympus.co.uk/ 
			Used with camera for manual image capture</td>
		</tr>
		<tr height="26">
			<td height="26" style="height:26px;width:297px;">Retiga Exi Fast 1394 digital camera</td>
			<td style="width:161px;">Qimaging</td>
			<td style="width:135px;">n/a</td>
			<td>http://www.qimaging.com/ 
			Attached to microscope for manual image capture</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:297px;">Image-Pro Plus 7.0</td>
			<td style="width:161px;">Media Cybernetics</td>
			<td style="width:135px;">n/a</td>
			<td>http://www.mediacy.com/ 
			Software used to control camera and microscope for manual image capture</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:297px;">Image-Pro Analyzer 7.0</td>
			<td style="width:161px;">Media Cybernetics</td>
			<td style="width:135px;">n/a</td>
			<td>http://www.mediacy.com/ 
			Stand-alone image analysis software for manual measurment of spheroid size</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:297px;">Excel 2010</td>
			<td style="width:161px;">Microsoft</td>
			<td style="width:135px;">n/a</td>
			<td>http://www.microsoft.com/ 
			Scientific graphing and statistical software</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:297px;">Prism 6.0</td>
			<td style="width:161px;">GraphPad</td>
			<td style="width:135px;">n/a</td>
			<td>http://www.graphpad.com/ 
			Scientific graphing and statistical software</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

three-dimensional (3d) tumor spheroid invasion assay

周囲の正常組織の浸潤は、一般に、腫瘍（良性とは対照的に）、悪性の主要な特徴であると考えられています。特に、いくつかの癌（ 例えば 、 多形性膠芽腫および頭頸部の扁平上皮癌などの脳腫瘍- SCCHN）のためには、深刻な罹患率の原因であり、生命を脅かすでも遠隔転移の不存在下であることができます。また、再発した癌は、残念ながら、多くの場合、現在より攻撃的な表現型での処理を以下に示します。したがって、標準的な抗増殖剤に対して相補的であり得る新規治療法を提供するために、侵入のプロセスを標的とする機会があります。今まで、この戦略は、侵入の詳細な分析および薬物スクリーニングに適した強固な、再現可能なアッセイの欠如によって妨げられてきました。ここでは、単純なマイクロプレート法を提供する（均一に基づいて、自己組織化3D腫瘍スフェロイド）のようなSTUのための大きな可能性を秘めています死にます。我々はまた、ヒト神経膠芽腫細胞株とターゲットと上皮成長因子受容体（EGFR）阻害剤に対する耐性の発達を強化マトリックス浸潤能と関連しているSCCHNモデルを使用してアッセイプラットフォームを例示します。単にデジタル画像解析を標準顕微鏡および画像キャプチャを必要とするイメージングサイトメーターおよび秒を使用して、1：我々はまた、半自動定量の二つの代替方法を提供します。

3Dスフェロイド腫瘍の浸潤が図1に概略的に示した単純な、再現可能な、自動化された方法を用いて評価する：再現可能なサイズの腫瘍スフェロイドをULA 96ウェル丸底プレートに細胞をプレーティングすることによって得られます。 4日後に開始スフェロイドはBMMに埋め込まれています。これは、腫瘍細胞が侵入し、回転楕円体の外に広がっているに半固体の構造を提供します。スフェロイドは、各ウェルの底に、中央に配置され、BMMへの侵入を容易に72まではt = 0から開始した間隔で監視されている - イメージングサイトメーターを用いて96時間。これは完全に自動化された画像解析を提供することができます。 癌細胞の浸潤の異なるタイプの例は、 図2に示されている- 。4極めて悪性のヒト多形性膠芽腫 （GBM）細胞株U-87 MGは、タイト、球状三次元構造を形成し、その中のローカル脳腫瘍を例示するためにここで使用されます侵略は、キー生命を脅かすです特徴。一度BMMに埋め込 ​​まれた、典型的な「スターバースト」侵入パターン12で拡散U-87 MGスフェロイドからの細胞。腫瘍細胞は、半径方向にそれらが3次元の形状を維持したマトリックス内に延びます。 BMM中に延びる細胞プロセスの詳細および浸潤突起による腫瘍細胞浸潤の程度は、明らかであるとき、U-87 MGスフェロイドについては、図2に示すように、プロセスは、72時間の期間にわたって続きます。画像を使用して完全に自動化された画像解析は、フローサイトメーター、経時的腫瘍細胞の浸潤の正確な定量を可能にします。自動分析がU-87 MG回転楕円体からBMMに伸びる細胞突起の周りにセグメンテーションを生成し、図1に示すように、図2の定量化が得られます。この細胞株について、腫瘍スフェロイド体が侵入面積の測定から除外されることに注意してください。 invasの異なるパターンイオンは、人間の頭頸部扁平上皮癌細胞株によって表示されました。 CAL SおよびCAL Rは同質であるが、CAL Sに対しては敏感であり、EGFRチロシンキナーゼ阻害剤に耐性の14 CAL R。 EGF、EGFの濃度（2.5 ngの/ mlまで）増加させたとして、しかしBMM（ 図3）に侵入も細胞株の非存在下では、スフェロイドは「芽」に見えます。 EGFのより高い濃度（40及び80 ngの/ mlで）での浸潤の程度が低下しました。これは、以前15を報告された侵入の点でEGFに対する古典ベル型用量応答と一致しています。 20 ngの/ mlのEGFで、CAL S細胞ながらCAL Rスフェロイドの本体から押し出され、指状突起は、72時間（ 図3）の後に、低侵襲性でした。スフェロイドは、細胞株との間の最大の違いのために20ng / mlのEGFを含む（BMMに入れた後に、この差動侵入は48時間明らかでした）および72時間後に最大（ 図4）。これらの画像は、U-87 MGに関しては、イメージングサイトメーターを使用して迅速に取得しました。しかし、この場合には、別の方法を例示するために、侵入の程度は、スタンドアローンの画像解析ソフトウェアを用いて手作業で定量し、グラフィカルに提示されている（ 図3及び4）。これらの結果は、具体的には、薬剤耐性、浸潤性の表現型に拮抗します化合物をスクリーニングするために利用することができる薬剤感受性と耐性細胞間の表現型の違いを示します。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/52686/52686fig1.jpg" /> 3D腫瘍スフェロイド浸潤アッセイの1概観図 。ワークフローはちょうどBMMへの埋め込み後の方法は、U-87 MG神経膠芽腫スフェロイドの代表画像を含むことを含むステップを示している（上のパネルを、T = 0）および浸潤した後<html> BMMへ（下のパネル; tは72時間を=）浸潤細胞によって覆われた面積を測定し、セグメンテーションとありません。バー=100μmである。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52686/52686fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、こちらをクリックしてください。</a> <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/52686/52686fig2.jpg" /> 図BMMへのU-87 MG神経膠芽腫の回転楕円体の侵入の2時間コース。U-87 MGはBMMに3Dの侵入を監視し、イメージングサイトメーターを用いて72時間まで定量した回転楕円体。（A）代表的な画像との（B）定量腫瘍細胞浸潤を示しています。バー=500μmの。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52686/52686fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、こちらをクリックしてください。</a> 3再 &quot;SRC =&quot; /ファイル/ ftp_upload / 52686 / 52686fig3.jpg &quot;/&gt; 図3. CAL R（抵抗性）とCAL S（敏感）腫瘍スフェロイド侵入。（A）代表的な画像とEGFの用量依存的なCALのRおよびCAL S腫瘍スフェロイド侵入の（B）手動定量化が示されています。バー=500μmの。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52686/52686fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、こちらをクリックしてください。</a> <img alt="図4" src="/files/ftp_upload/52686/52686fig4.jpg" /> 図4。Bに配置された場合、CAL R（耐性）スフェロイドからの細胞は、CAL S（敏感）腫瘍スフェロイドより侵襲的ですEGF刺激CAL R腫瘍スフェロイドがCAL Sより顕著侵攻。（A）代表的な画像と、（B）浸潤を手動で定量化を示す時には、MM。示されています。バー=500μmの。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52686/52686fig4large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、こちらをクリックしてください。</a>

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Three-Dimensional 3D Tumor Spheroid Invasion Assay

Invasion of surrounding normal tissues is a defining characteristic of malignant tumors. We provide here a simple, semi-automated micro-plate assay of invasion into a natural 3D biomatrix that has been exemplified with a number of models of advanced human cancers.

三次元（3D）腫瘍スフェロイド浸潤アッセイ

Invasion of surrounding normal tissues is generally considered to be a key hallmark of malignant (as opposed to benign) tumors. For some cancers in ...

three-dimensional-3d-tumor-spheroid-invasion-assay

Research

JoVE Journal

Medicine

Three-Dimensional (3D) Tumor Spheroid Invasion Assay

56.5K ビュー.  The Institute of Cancer Research. Invasion of surrounding normal tissues is a defining characteristic of malignant tumors. We provide here a simple, semi-automated micro-plate assay of invasion into a natural 3D biomatrix that has been exemplified with a number of models of advanced human cancers.

ビデオ: Three-Dimensional 3D Tumor Spheroid Invasion Assay

Spheroid Assay to Measure TGF-&#946;-induced Invasion

TGF-&beta; has opposing roles in breast cancer progression by acting as a tumor suppressor in the initial phase, but stimulating invasion and metastasis at later stage1,2. Moreover, TGF-&beta; is frequently overexpressed in breast cancer and its expression correlates with poor prognosis and metastasis 3,4. The mechanisms by which TGF-&beta; induces invasion are not well understood.
TGF-&beta; elicits its cellular responses via TGF-&beta; type II (T&beta;RII) and type I (T&beta;RI) receptors. Upon TGF-&beta;-induced heteromeric complex formation, T&beta;RII phosphorylates the T&beta;RI. The activated T&beta;RI initiates its intracellular canonical signaling pathway by phosphorylating receptor Smads (R-Smads), i.e. Smad2 and Smad3. These activated R-Smads form heteromeric complexes with Smad4, which accumulate in the nucleus and regulate the transcription of target genes5. In addition to the previously described Smad pathway, receptor activation results in activation of several other non-Smad signaling pathways, for example Mitogen Activated Protein Kinase (MAPK) pathways6.
To study the role of TGF-&beta; in different stages of breast cancer, we made use of the MCF10A cell system. This system consists of spontaneously immortalized MCF10A1 (M1) breast epithelial cells7, the H-RAS transformed M1-derivative MCF10AneoT (M2), which produces premalignant lesions in mice8, and the M2-derivative MCF10CA1a (M4), which was established from M2 xenografts and forms high grade carcinomas with the ability to metastasize to the lung9. This MCF10A series offers the possibility to study the responses of cells with different grades of malignancy that are not biased by a different genetic background.
For the analysis of TGF-&beta;-induced invasion, we generated homotypic MCF10A spheroid cell cultures embedded in a 3D collagen matrix in vitro (Fig 1). Such models closely resemble human tumors in vivo by establishing a gradient of oxygen and nutrients, resulting in active and invasive cells on the outside and quiescent or even necrotic cells in the inside of the spheroid10. Spheroid based assays have also been shown to better recapitulate drug resistance than monolayer cultures11. This MCF10 3D model system allowed us to investigate the impact of TGF-&beta; signaling on the invasive properties of breast cells in different stages of malignancy.

Spheroid Assay to Measure TGF-&amp;#946;-induced Invasion

An assay to quantitatively measure Transforming Growth Factor (TGF)-&#x03B2;-induced invasion in 3-dimensional collagen gels is described. This assay takes advantage of the MCF10A series of cell lines, which represent different stages of breast cancer development. This method can be adopted to be used with other cell lines and might be used to investigate other potential activators or inhibitors of invasion.

TGF -β誘発性浸潤を測定する回転楕円体アッセイ

TGF-&beta; has opposing roles in breast cancer progression by acting as a tumor suppressor in the initial phase, but stimulating invasion and metastasis ...

医学

Human Neuroendocrine Tumor Cell Lines as a Three-Dimensional Model for the Study of Human Neuroendocrine Tumor Therapy

Neuroendocrine tumors (NETs) are rare tumors, with an incidence of two per 100,&#x200A;000 individuals per year, and they account for 0.5% of all human malignancies.1 Other than surgery for the minority of patients who present with localized disease, there is little or no survival benefit of systemic therapy. Therefore, there is a great need to better understand the biology of NETs, and in particular define new therapeutic targets for patients with nonresectable or metastatic neuroendocrine tumors. 3D cell culture is becoming a popular method for drug screening due to its relevance in modeling the in vivo tumor tissue organization and microenvironment.2,3 The 3D multicellular spheroids could provide valuable information in a more timely and less expensive manner than directly proceeding from 2D cell culture experiments to animal (murine) models.
To facilitate the discovery of new therapeutics for NET patients, we have developed an in vitro 3D multicellular spheroids model using the human NET cell lines. The NET cells are plated in a non-adhesive agarose-coated 24-well plate and incubated under physiological conditions (5% CO2, 37 &deg;C) with a very slow agitation for 16-24 hr after plating. The cells form multicellular spheroids starting on the 3rd or 4th day. The spheroids become more spherical by the 6th day, at which point the drug treatments are initiated. The efficacy of the drug treatments on the NET spheroids is monitored based on the morphology, shape and size of the spheroids with a phase-contrast light microscope. The size of the spheroids is estimated automatically using a custom-developed MATLAB program based on an active contour algorithm. Further, we demonstrate a simple method to process the HistoGel embedding on these 3D spheroids, allowing the use of standard histological and immunohistochemical techniques. 
This is the first report on generating 3D spheroids using NET cell lines to examine the effect of therapeutic drugs. We have also performed histology on these 3D spheroids, and displayed an example of a single drug's effect on growth and proliferation of the NET spheroids. Our results support that the NET spheroids are valuable for further studies of NET biology and drug development.

We present a simple agarose overlay platform to grow 3D multicellular spheroids using neuroendocrine cancer cell lines. This method provides a very convenient way to examine the effect of therapeutic drugs on the neuroendocrine tumor cells. It could also help us establish human neuroendocrine tumor spheroids for cancer therapy.

人間の神経内分泌腫瘍療法の研究のための三次元モデルとしての人間の神経内分泌腫瘍細胞株

Neuroendocrine tumors (NETs) are rare tumors, with an incidence of two per 100,&#x200A;000 individuals per year, and they account for 0.5% of all human ...

Coculture System with an Organotypic Brain Slice and 3D Spheroid of Carcinoma Cells

Patients with cerebral metastasis of carcinomas have a poor prognosis. However, the process at the metastatic site has barely been investigated, in particular the role of the resident (stromal) cells. Studies in primary carcinomas demonstrate the influence of the microenvironment on metastasis, even on prognosis1,2. Especially the tumor associated macrophages (TAM) support migration, invasion and proliferation3. Interestingly, the major target sites of metastasis possess tissue-specific macrophages, such as Kupffer cells in the liver or microglia in the CNS. Moreover, the metastatic sites also possess other tissue-specific cells, like astrocytes. Recently, astrocytes were demonstrated to foster proliferation and persistence of cancer cells4,5. Therefore, functions of these tissue-specific cell types seem to be very important in the process of brain metastasis6,7.
Despite these observations, however, up to now there is no suitable in vivo/in vitro model available to directly visualize glial reactions during cerebral metastasis formation, in particular by bright field microscopy. Recent in vivo live imaging of carcinoma cells demonstrated their cerebral colonization behavior8. However, this method is very laborious, costly and technically complex. In addition, these kinds of animal experiments are restricted to small series and come with a substantial stress for the animals (by implantation of the glass plate, injection of tumor cells, repetitive anaesthesia and long-term fixation). Furthermore, in vivo imaging is thus far limited to the visualization of the carcinoma cells, whereas interactions with resident cells have not yet been illustrated. Finally, investigations of human carcinoma cells within immunocompetent animals are impossible8.
For these reasons, we established a coculture system consisting of an organotypic mouse brain slice and epithelial cells embedded in matrigel (3D cell sphere). The 3D carcinoma cell spheres were placed directly next to the brain slice edge in order to investigate the invasion of the neighboring brain tissue. This enables us to visualize morphological changes and interactions between the glial cells and carcinoma cells by fluorescence and even by bright field microscopy. After the coculture experiment, the brain tissue or the 3D cell spheroids can be collected and used for further molecular analyses (e.g. qRT-PCR, IHC, or immunoblot) as well as for investigations by confocal microscopy. This method can be applied to monitor the events within a living brain tissue for days without deleterious effects to the brain slices. The model also allows selective suppression and replacement of resident cells by cells from a donor tissue to determine the distinct impact of a given genotype. Finally, the coculture model is a practicable alternative to in vivo approaches when testing targeted pharmacological manipulations.

The organotypic brain slice coculture with carcinoma cells enables visualizing morphological changes by fluorescence as well as bright field (video) microscopy during the process of carcinoma cell invasion of brain tissue. This model system also allows for cell exchange and replenishment approaches and offers a wide variety of manipulations and analyses.

器官型脳スライスと癌細胞の3Dスフェロイドとの共培養システム

Patients with cerebral metastasis of carcinomas have a poor prognosis. However, the process at the metastatic site has barely been investigated, in ...

Quantification of Breast Cancer Cell Invasiveness Using a Three-dimensional (3D) Model

It is now well known that the cellular and tissue microenvironment are critical regulators influencing tumor initiation and progression. Moreover, the extracellular matrix (ECM) has been demonstrated to be a critical regulator of cell behavior in culture and homeostasis in vivo. The current approach of culturing cells on two-dimensional (2D), plastic surfaces results in the disturbance and loss of complex interactions between cells and their microenvironment. Through the use of three-dimensional (3D) culture assays, the conditions for cell-microenvironment interaction are established resembling the in vivo microenvironment. This article provides a detailed methodology to grow breast cancer cells in a 3D basement membrane protein matrix, exemplifying the potential of 3D culture in the assessment of cell invasion into the surrounding environment. In addition, we discuss how these 3D assays have the potential to examine the loss of signaling molecules that regulate epithelial morphology by immunostaining procedures. These studies aid to identify important mechanistic details into the processes regulating invasion, required for the spread of breast cancer.

Quantification of Breast Cancer Cell Invasiveness Using a Three-dimensional 3D Model

This article provides detailed methodologies for the use of three-dimensional (3D) assays to quantify breast cancer cell invasion. Specifically, we discuss the procedures required to set up such assays, quantification, and data analysis, as well as methods to examine the loss of membrane integrity that occurs when cells invade.

3次元（3D）モデルを用いた乳癌細胞浸潤の定量化

It is now well known that the cellular and tissue microenvironment are critical regulators influencing tumor initiation and progression. Moreover, the ...

Assessment of Ovarian Cancer Spheroid Attachment and Invasion of Mesothelial Cells in Real Time

Ovarian cancers metastasize by shedding into the peritoneal fluid and dispersing to distal sites within the peritoneum. Monolayer cultures do not accurately model the behaviors of cancer cells within a nonadherent environment, as cancer cells inherently aggregate into multicellular structures which contribute to the metastatic process by attaching to and invading the peritoneal lining to form secondary tumors. To model this important stage of ovarian cancer metastasis, multicellular aggregates, or spheroids, can be generated from established ovarian cancer cell lines maintained under nonadherent conditions. To mimic the peritoneal microenvironment encountered by tumor cells in vivo, a spheroid-mesothelial co-culture model was established in which preformed spheroids are plated on top of a human mesothelial cell monolayer, formed over an extracellular matrix barrier. Methods were then developed using a real-time cell analyzer to conduct quantitative real time measurements of the invasive capacity of different ovarian cancer cell lines grown as spheroids. This approach allows for the continuous measurement of invasion over long periods of time, which has several advantages over traditional endpoint assays and more laborious real time microscopy image analyses. In short, this method enables a rapid, determination of factors which regulate the interactions between ovarian cancer spheroid cells invading through mesothelial and matrix barriers over time.

Ovarian cancer cell invasion into the mesothelial lining of the peritoneum is a dynamic process over time. Utilizing a real time analyzer, the invasive capacity of ovarian cancer cells in a spheroid-mesothelial cell co-culture model can be quantified over prolonged time periods, providing insights into factors regulating the metastatic process.

リアルタイムで中皮細胞の卵巣癌スフェロイドアタッチメントおよび浸潤の評価

Ovarian cancers metastasize by shedding into the peritoneal fluid and dispersing to distal sites within the peritoneum. Monolayer cultures do not ...

Three-dimensional Co-culture Model for Tumor-stromal Interaction

Cancer progression (initiation, growth, invasion and metastasis) occurs through interactions between malignant cells and the surrounding tumor stromal cells. The tumor microenvironment is comprised of a variety of cell types, such as fibroblasts, immune cells, vascular endothelial cells, pericytes and bone-marrow-derived cells, embedded in the extracellular matrix (ECM). Cancer-associated fibroblasts (CAFs) have a pro-tumorigenic role through the secretion of soluble factors, angiogenesis and ECM remodeling. The experimental models for cancer cell survival, proliferation, migration, and invasion have mostly relied on two-dimensional monocellular and monolayer tissue cultures or Boyden chamber assays. However, these experiments do not precisely reflect the physiological or pathological conditions in a diseased organ. To gain a better understanding of tumor stromal or tumor matrix interactions, multicellular and three-dimensional cultures provide more powerful tools for investigating intercellular communication and ECM-dependent modulation of cancer cell behavior. As a platform for this type of study, we present an experimental model in which cancer cells are cultured on collagen gels embedded with primary cultures of CAFs.

Here we present a protocol to co-culture in three-dimensions, which is useful for investigating multicellular interactions and extracellular matrix-dependent modulation of cancer cell behavior. In this experimental model, cancer cells are cultured on collagen gels embedded with human cancer-associated fibroblasts.

腫瘍間質相互作用のための三次元共培養モデル

Cancer progression (initiation, growth, invasion and metastasis) occurs through interactions between malignant cells and the surrounding tumor stromal ...

A Cancer Cell Spheroid Assay to Assess Invasion in a 3D Setting

The invasive nature of cancer cell lines is thought to correlate with their metastatic potential. Most traditional assays, however, do not examine these invasive features in a three-dimensional environment and the resulting data suffer from reduced biological applicability. Here an approach is presented to visualize the invasive ability of cell lines in a physiologically relevant setting. The cancer cell spheroid invasion assay first utilizes gravity to generate spheroids within drops of media that hang from the lid of a cell culture dish. Next, these spheroids are embedded in a 3D matrix consisting of a mixture of basement membrane materials and type I collagen. Cancer cell egression from the spheroids into the surrounding matrix is then monitored over time. The method described here can be modified to examine invasion after coculture of different cell types, inclusion of drugs/inhibitors, or alterations in extracellular matrix (ECM) constituents.

This method evaluates cancer cell invasion from spheroids into a surrounding 3D matrix. Spheroids are generated via the hanging drop culture method and then embedded in a matrix comprised of basement membrane materials and type I collagen. Invasion out of the spheroids is subsequently monitored.

3Dの設定で侵略を評価するために、癌細胞スフェロイドアッセイ

The invasive nature of cancer cell lines is thought to correlate with their metastatic potential.  Most traditional assays, however, do not examine these ...

Three-dimensional Alginate-bead Culture of Human Pituitary Adenoma Cells

A three-dimensional culture method is described in which primary pituitary adenoma cells are grown in alginate beads. Alginate is a polymer derived from brown sea algae. Briefly, the tumor tissue is cut into small pieces and submitted to an enzymatic digestion with collagenase and trypsin. Next, a cell suspension is obtained. The tumor cell suspension is mixed with 1.2% sodium alginate and dropped into a CaCl2 solution, and the alginate/cell suspension is gelled on contact with the CaCl2 to form spherical beads. The cells embedded in the alginate beads are supplied with nutrients provided by the culture media enriched with 20% FBS. Three-dimensional culture in alginate beads maintains the viability of adenoma cells for long periods of time, up to four months. Moreover, the cells can be liberated from the alginate by washing the beads with sodium citrate and seeded on glass coverslips for further immunocytochemical analyses. The use of a cell culture model allows for the fixation and visualization of the actin cytoskeleton with minimal disorganization. In summary, alginate beads provide a reliable culture system for the maintenance of pituitary adenoma cells.

Three-dimensional culture in alginate beads, due to its simplicity and reproducibility, was chosen to maintain the pituitary adenoma cells. The procedures included an initial enzymatic digestion and mechanical dissociation of the tumor tissue, and the subsequent cell suspension was encapsulated in alginate beads.

ヒト下垂体腺腫細胞の三次元アルギン酸ビーズ文化

A three-dimensional culture method is described in which primary pituitary adenoma cells are grown in alginate beads. Alginate is a polymer derived from ...

Three-Dimensional Culture Assay to Explore Cancer Cell Invasiveness and Satellite Tumor Formation

Mammalian cell culture in monolayers is widely used to study various physiological and molecular processes. However, this approach to study growing cells often generates unwanted artifacts. Therefore, cell culture in a three-dimensional (3D) environment, often using extracellular matrix components, emerged as an interesting alternative due to its close similarity to the native in vivo tissue or organ. We developed a 3D cell culture system using two compartments, namely (i) a central compartment containing cancer cells embedded in a collagen gel acting as a pseudo-primary macrospherical tumor and (ii) a peripheral cell-free compartment made of a fibrin gel, i.e. an extracellular matrix component different from that used in the center, in which cancer cells can migrate (invasion front) and/or form microspherical tumors representing secondary or satellite tumors. The formation of satellite tumors in the peripheral compartment is remarkably correlated to the known aggressiveness or metastatic origin of the native tumor cells, which makes this 3D culture system unique. This cell culture approach might be considered to assess cancer cell invasiveness and motility, cell-extracellular matrix interactions and as a method to evaluate anti-cancer drug properties.

Cancer cells are embedded in a collagen gel and then sandwiched in an acellular fibrin gel to generate a 3D culture system in which the invasiveness and formation of satellite tumors may be monitored.

癌細胞の浸潤や衛星腫瘍形成を探検するための三次元培養アッセイ

Mammalian cell culture in monolayers is widely used to study various physiological and molecular processes. However, this approach to study growing cells ...

Three-Dimensional Printing of a Complex Aortic Anomaly

Complex congenital aortic anomalies include diverse types of malformations that may be clinically asymptomatic or present with respiratory or esophageal symptoms. These anomalies may be associated with other congenital heart diseases. It is hard to identify the accurate anatomic vessel location from two-dimensional imaging data, such as computed tomography. As an additive manufacturing method, three-dimensional (3-D) printing can covert the acquired imaging data into 3-D physical models. This protocol describes the procedure for modeling the volumetric DICOM imaging into 3-D data and printing it as an anatomically realistic 3-D model. Using this model, surgeons can identify the vessel location of complex aortic anomalies, which is helpful for pre-operative planning and intra-operative guidance.

Here, we present a protocol to use three dimensional printed models for pre-operative planning and intra-operative reorganization of complicated vascular locations when handling a congenital aortic anomaly.

複雑な大動脈の異常の三次元印刷

Complex congenital aortic anomalies include diverse types of malformations that may be clinically asymptomatic or present with respiratory or esophageal ...