JoVE Logo

로그인

JoVE 비디오를 활용하시려면 도서관을 통한 기관 구독이 필요합니다. 전체 비디오를 보시려면 로그인하거나 무료 트라이얼을 시작하세요.

기사 소개

  • 요약
  • 초록
  • 서문
  • 프로토콜
  • 결과
  • 토론
  • 공개
  • 감사의 말
  • 자료
  • 참고문헌
  • 재인쇄 및 허가

요약

The goal of this protocol is to use cationic/anionic liposomes with a neuro-targeting peptide as a CNS delivery system to enable siRNA to cross the BBB. The optimization of a delivery system for treatments, like siRNA, would allow for more treatment options for prion and other neurodegenerative diseases.

초록

Prion diseases result from the misfolding of the normal, cellular prion protein (PrPC) to an abnormal protease resistant isomer called PrPRes. The emergence of prion diseases in wildlife populations and their increasing threat to human health has led to increased efforts to find a treatment for these diseases. Recent studies have found numerous anti-prion compounds that can either inhibit the infectious PrPRes isomer or down regulate the normal cellular prion protein. However, most of these compounds do not cross the blood brain barrier to effectively inhibit PrPRes formation in brain tissue, do not specifically target neuronal PrPC, and are often too toxic to use in animal or human subjects.

We investigated whether siRNA delivered intravascularly and targeted towards neuronal PrPC is a safer and more effective anti-prion compound. This report outlines a protocol to produce two siRNA liposomal delivery vehicles, and to package and deliver PrP siRNA to neuronal cells. The two liposomal delivery vehicles are 1) complexed-siRNA liposome formulation using cationic liposomes (LSPCs), and 2) encapsulated-siRNA liposome formulation using cationic or anionic liposomes (PALETS). For the LSPCs, negatively charged siRNA is electrostatically bound to the cationic liposome. A positively charged peptide (RVG-9r [rabies virus glycoprotein]) is added to the complex, which specifically targets the liposome-siRNA-peptide complexes (LSPCs) across the blood brain barrier (BBB) to acetylcholine expressing neurons in the central nervous system (CNS). For the PALETS (peptide addressed liposome encapsulated therapeutic siRNA), the cationic and anionic lipids were rehydrated by the PrP siRNA. This procedure results in encapsulation of the siRNA within the cationic or anionic liposomes. Again, the RVG-9r neuropeptide was bound to the liposomes to target the siRNA/liposome complexes to the CNS. Using these formulations, we have successfully delivered PrP siRNA to AchR-expressing neurons, and decreased the PrPC expression of neurons in the CNS.

서문

프리온은 중추 신경계에 영향을 미치는 심각한 신경 퇴행성 질환이다. 프리온 질병은 PRP 해상도라는 감염 체에 의해 정상 세포 프리온 단백질 PRP C의 미스 폴딩 기인한다. 이 질병은 인간 1-3에서 소 해면상 소에 뇌증, 스크래피 양에, cervids 만성 소모성 질환, 및 크로이츠 펠트 - 야콥병 등 종의 다양한 영향을 미친다. 프리온은 시냅스 손실 시작하고, 공포 화하기 위해 진행 신경 퇴행, 신경교 증, 신경 세포의 손실 및 플라크 침착을 일으킬. 결국, 4 개인 동물 /의 죽음의 결과로. 수십 년 동안, 연구자들은 늦추거나 프리온 질병의 진행을 중지하는 것을 의미 화합물을 조사 하였다. 그러나 연구진은 성공적인 치료 또는 효과적인 전신 배달 차량 중 하나를 발견하지 않았습니다.

내인성 PRP C 발현 프리온 질병 (5)의 발전에 필요한 입니다. 따라서, 감소 또는 제거 PRP C 표현이 지연 또는 질병의 경감 될 수 있습니다. 몇몇 그룹은 프리온 질환 PRP C 발현 수준의 역할을 조사하기 위해 쥐 뇌 조직에 직접 shRNA를 발현 PRP C의 감소 수준 또는 주입 lentivectors와 트랜스 제닉 마우스를 만들었다. 신경 PRP C의 양을 감소 발견 이들 연구자 프리온 질병의 병리학 시브를 중지 결과 및 6-9 동물의 수명을 연장. 우리는 마우스 신경 모세포종 세포 (10)의 PRP 해상도의 틈새에서 그 PRP C의 siRNA 처리 결과를보고했다. 이러한 연구는 치료의 사용은 작은 간섭 RNA (siRNA의) mRNA의 절단 같이 PRP C 발현 수준을 감소시키기에 충분히 프리온 질병의 진행을 지연시킬 수 있다는 것을 시사한다. 그러나 프리온 질환에 대한 조사 대부분의 치료는 실용적이지 않을 것입니다 방법으로 전달되었다임상있다. 따라서, siRNA의 치료는 CNS에 정맥 내 전달을 대상으로 전신 전달 시스템을 필요로한다.

연구자들은 유전자 치료제에 대한 전달 비히클로서 리포좀의 사용을 연구 하였다. 양이온 및 음이온 모두 지질 리포좀의 형성에 사용된다. 양이온 성 지질 및 DNA / RNA 사이의 전하의 차이를 효율적으로 포장 할 수 있기 때문에 양이온 성 지질 널리 음이온 지질 이상 사용된다. 양이온 성 지질의 또 다른 장점은 그들이 다른 지질 11-14보다 용이하게 세포막을 통과한다는 것이다. 그러나, 양이온 성 지질은 음이온 지질 (13, 14)보다 면역 원성 있습니다. 따라서 연구팀은 리포좀의 지질 음이온에 양이온을 사용하여 이동하기 시작했다. 유전자 치료 제품을 효율적으로 DNA / RNA 분자 15-19 집광 양전하 펩타이드 프로타민 설페이트를 사용하는 음이온 성 리포좀 내로 패키징 할 수있다. 음이온 LIPI 이후DS는 양이온 성 지질가 순환 시간을 증가 할 수 있으며, 더 많은 동물 모델 (13, 14)에서 허용 될 수보다 면역 원성 있습니다. 리포좀은 리포좀에 부착 된 펩티드를 대상으로 사용하여 특정 조직을 대상으로한다. 니코틴 성 아세틸 콜린 수용체에 결합하는 RVG-9R의 신경 펩타이드는 중추 신경계 17-20로의 siRNA와 리포좀을 대상으로 사용되어왔다.

이 보고서는 프로토콜은 세 가지의 siRNA 전달 비히클을 제조하고, 패키징하고 신경 세포 (도 1)에 siRNA를 전달하기 위해 설명. siRNA를 리포좀 - 펩티드 복합체 (LSPCs)의 siRNA를 리포좀으로 구성되는 펩티드 타겟팅 RVG-9R 정전 기적 리포솜의 외 표면에 부착. 펩티드 RVG-9R 공유 결합 지질 PEG 그룹에 결합하여 siRNA를 리포좀 내에 캡슐화 프로타민 구성되어 치료의 siRNA (PALETS)를 캡슐화 리포솜을 해결. 아래의 방법을 사용하고 LSPCs PALET를 생성S는 PRP C의 siRNA는 치료 또는 실질적으로 프리온 질병 병리학의 발병을 지연시키는 엄청난 약속을 보유하고 신경 세포의 90 %, 최대 PRP C의 발현을 감소시킨다.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

프로토콜

모든 마우스는 사육과 콜로라도 주립 대학에서 기관 애니멀 케어 및 사용위원회에 의해 승인 된 프로토콜에 따라 평가 및 실험 동물 관리 국제의 인증 협회의 인증을 받았으며 실험 동물 자원, 유지되었다.

LSPCs 1. 준비

  1. 1 DOTAP (1,2-dioleoyl -3- 트리메틸 프로판) : LSPCs을위한 콜레스테롤의 비율이 1을 사용합니다. 1 클로로포름 : 플라스크에 메탄올 용액을 4 nmol을 리포좀 제제의 경우, DOTAP 2 나노 몰과 (1) 10 ㎖에 콜레스테롤이 나노 몰을 혼합한다.
  2. 흄 후드에서 N 2 가스를 이용하여 메탄올 용액 : 클로로포름 9 ㎖에 증발. 가스없이 밤새 흄 후드에서 용매의 마지막 1 mL로 증발시켰다. 플라스크의 바닥에 얇은 지질막을 관찰한다.
  3. 55 ° C에 10 % 자당 용액의 열 10ml를.
  4. / 천천히 분, 즉 1 ml에 얇은 지질 필름 상에 가열 된 10 % 자당 용액을 붓고 GE 동안ntly 플라스크를 소용돌이. 지질 분자는 겔 액상으로 유지하도록 55 ° C에서 지질과 10 %의 자당과 플라스크를 유지한다. 다중 층 소포 (MLV) 형성에 재수 결과.
  5. 지질은 리포좀 크기를 조정하기 전에 적어도 한 시간 동안 55 ° C에서 재수 할 수 있습니다.
  6. 1.0 μm의 필터 제조업체의 지침에 따라 압출기를 조립 또는 크기 1.0 μm의 주사기 필터를 사용합니다.
  7. 11 번 압출기에 주사기 중 하나에 가열 된 리포좀 현탁액 1 ML을 추가하고, 두 주사기 사이의 정지를 전달합니다. 서스펜션은 (11)를 통과 한 후 시작 주사기보다 반대 주사기에 있는지 확인하십시오.
  8. 리포좀 크기는 다시 0.45 μm의 다음으로, 0.2 ㎛의 필터는 큰 단일 층 소포 (LUVs)를 생성한다. 쉽게 크기 조정 가열 리포좀 현탁액을 유지합니다.
  9. (4를 20 μM의 200 μL와 4 nmol을 리포좀 현탁액 (200 μM)의 20 μl를 품다nmol을 총)을 실온에서 10 분 동안 siRNA의 스톡 용액.
  10. 500 μM 실온에서 10 분 동안의 siRNA / 리포좀 용액 (40 nmol을 총) 주식 RVG-9R 솔루션의 80 μl를 품어. LSPCs는 가능한 빨리 사용되어야하지만, 제조 후 수 시간이 사용될 수있다. 준비 후 몇 시간 동안 4 ° C에서 보관 LSPCs.

PALETS 2. 준비

  1. 40 : DSPE (1,2- 디스 테아-SN 글리세로 3 phosphoethanolamine) 중 5 몰비 : 콜레스테롤 : DSPE-PEG 또는 DOTAP : 콜레스테롤 : DSPE-PEG PALETS위한 55을 사용합니다. 1 클로로포름 : 플라스크에 메탄올 용액을 4 nmol을 리포좀의 제조를 위해, DSPE 또는 DOTAP 중 2.2 나노 몰, 콜레스테롤의 1.6 나노 몰 및 2 10 ㎖에 DSPE-PEG 0.2 나노 몰을 혼합한다.
  2. 단계 1.1 이상 1.2에 설명 된대로 정확히 리포좀 현탁액을 준비합니다. 1X PBS 10 ㎖에 DSPE 리포좀을 재수 1 ㎖ / 분을 추가하여 75 ℃까지 가열 하였다. 지질가에서 75 ° C에서 재수 할 수 있도록 허용크기 전에 적어도 1 시간.
  3. 크기는 리포좀 현탁액을 정확히 같은 단계 1.6-1.8에서 설명.
  4. 피펫 DOTAP와 DSPE 리포좀 후 단일 사용 씩에 4 nmol을 (200 μM) 리포좀 현탁액의 각 20 μL은 크기되었습니다 및 벤치 탑 동결 건조기 (그림 2)를 사용하여 30 분 동안 동결 건조했다.
  5. 20 μM DSPE PALETS 리포좀으로 캡슐화하는 siRNA를 실온에서 10 분 동안 프로타민 설페이트 26.6 μM 용액 1.4 μL (4 nmol을 총) siRNA의 스톡 용액 200 μl를 부화.
  6. siRNA와의 4 nmol을 원액 200 μL로 PALETS DOTAP 리포좀을 재수 또는 siRNA의 / 프로타민 용액 201.4 μL와 DSPE PALETS 리포좀을 재수. RT에서 10 분 동안 리포좀 / siRNA의 용액을 인큐베이션.
  7. 두 DOTAP 및 DSPE PALETS위한 리포좀 / siRNA의 용액에 60 mM의 1- 에틸 -3- (3- 디메틸 아미노 프로필) 카 보디이 미드 히드로 클로라이드 (EDC) 용액 10 μL를 추가한다.
  8. 모두 DOTAP와 DSPE PALETS의 리포좀 / siRNA의 용액에 150 mM의 N 히드 록 (설포-NHS) 용액 10 μl를 추가합니다.
  9. RT에서 2 시간 동안 siRNA의 / 리포좀 현탁액과 EDC 및 NHS 술포 부화.
  10. 500 μM 실온에서 10 분 동안 솔루션을 가교의 siRNA / 리포좀과 (40 nmol을 총) 주식 RVG-9R 솔루션의 80 μl를 품어.
    참고 : EDC / 설포-NHS가 PEG 지질에 공유 결합에 RVG-9R 수 있습니다. 준비 후 몇 시간 내에 PALETS를 사용합니다. 준비 후 몇 시간 동안 4 ° C에서 보관 PALETS.
  11. PALETS의 siRNA를 캡슐화 효율을 확인하려면 :
    1. 이전과 프로타민 260 nm에서 설정된 분광 광도계 리포좀의 첨가 후에 siRNA의 농도를 측정한다.
    2. 50 kDa의 원심 필터를 사용하여 리포좀 / 캡슐화 된 siRNA의 서스펜션에서 캡슐화 된 siRNA를 필터링합니다. 20 분 동안 1,000 XG에 원심 분리기.
    3. 농도 측정봉입 여액 siRNA를 260 nm에서 분광 광도계를 사용하여 잔류 물로 캡슐화 된 siRNA의 농도.

3. LSPCs 또는 PALETS와 마우스를 주입

  1. 혈관을 팽창하기 위해 가열 램프에 5 ~ 10 분 동안 쥐를 노출.
  2. 2-3 %의 이소 플루오 란 / 산소와 마우스를 마취하여 주입 전에 주입시 5-10 분 흐른다. 동물이 더 이상 보행과 호흡이 발가락 핀치를 수행하여 감속 때 마취를 확인하지 않습니다. 꼬리 정맥에 액세스하기 위해 후면 또는 측면에 마우스를 놓습니다. 마취 동안 건조를 방지하기 위해 마우스의 눈에 수의사 연고를 사용합니다.
  3. / 지우기 70 % EtOH로 꼬리 뿌려 26 G 인슐린 주사기를 이용하여 마우스의 꼬리 정맥에 LSPCs 또는 PALETS 300 μL를 주입. 꼬리 정맥에 주입 말단 시작하고 정맥이 붕괴 또는 파열 경우 근위 이동합니다.
  4. 이 흉골 드러 누움을 유지 때까지 깨끗한 새장에 마우스를 놓습니다. 모 두지 마십시오완전히 회복 될 때까지 다른 케이지 동료와 함께 사용합니다. 마우스는 5 ~ 15 분에 복구해야합니다. 이들은 가열 패드 또는 회복이 오래 걸리는 경우 체온을 유지하기위한 가열 램프 아래에 배치 될 수있다. 마우스는 과열에 대한 보호하기 위해 면밀히 모니터링해야한다.
  5. 마취 기운이 떨어지기 보장하기 위해 주사 후 동물 몇 시간을 모니터하고 치료에는 부작용이 없습니다. LSPCs 또는 PALETS은 최소 24 시간 동안 순환 할 수 있습니다.

유동 세포 계측법을 통해 단백질 발현 4. 분석

  1. 15 분 동안 20 % CO 2 유량 쥐를 안락사.
  2. 가위를 사용하여 마우스의 피부와 두개골을 멀리 절단하여 뇌의 반 반구를 해부하다. 껍질 멀리 반 거리에 집게 나 가위의 끝 부분을 사용하여 두개골에서 뇌의 반구.
  3. FACS 완충액 2.5 mL로하여 40 ㎛의 메쉬 셀 스트레이너를 통해 각 마우스에서 뇌 눌러 반 구체 (1X; 주사기의 플런저 페트리 접시에 PBS, 1 % 소 태아 혈청, 10 mM의 EDTA).
  4. FACS 버퍼의 추가 2.5 ml의 셀 스트레이너와 페트리 접시를 씻어. 얼음에 15 ml의 원뿔 관에서 단일 세포 현탁액을 넣습니다.
  5. 피펫 350 x g에서 5 분 동안 1.5 ml의 마이크로 원심 분리기 튜브에 5 ㎖ 단일 세포 현탁액 100 ㎕. FACS 완충액 1 ㎖에 재현 탁 상등액과 세포 펠렛을 버린다. 5 분 동안 350 XG 스핀. FACS 버퍼의 또 다른 1 ㎖로 반복합니다. 얼음에 세포 현탁액을 유지합니다.
  6. (1) 100 ㎕의 세포를 품어 : FACS 버퍼에 0.5 ㎎ / ㎖ 쥐 항 - 마우스의 Fc 블록 (100) 희석을 얼음에 30 ~ 60 분. 펠렛 단계 4.5로 세포를 씻어. 얼음에 세포 현탁액을 유지합니다.
  7. 30 ~ 60 분 동안 얼음에 FACS 버퍼에 7 % 마우스 혈청에서 마우스 PRP C에 대해 20 μg의 / ㎖ 형광 항체 100 ㎕의 세포를 품어. 펠렛 단계 4.5로 세포를 씻어. 세포 현탁액을 유지얼음 에다가요.
  8. 펠릿 1 분간 적혈구 용해 완충액 1 ㎖ (1X PBS 155 mM의 NH 4 CL, 12 mM의 NaHCO3을 0.1 mM의 EDTA)으로 세포를 재 - 보류. 단계 4.5에서와 같이 펠릿은 FACS 완충액 1 ml의 세포를 재현 탁. 얼음에 세포 현탁액을 유지합니다.
  9. 앞서 설명한 바와 같이 (10) 플로우 사이토 미터를 사용하여 C PRP 발현을 분석한다. 게이트는 총 세포 집단에서 세포를 살고 있습니다. 게이트 PRP C + 라이브 세포 집단에서 세포 MFI (평균 형광 강도)를 결정합니다.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

결과

음이온 PALETS 내의 siRNA의 캡슐화의 효율성을 증가시키기 위해, siRNA의 프로타민을 혼합 하였다. 1 (그림 3A) : 1 2 : siRNA를위한 최선의 프로타민의 농도를 결정하기 위해, siRNA를 1에서, 프로타민의 서로 다른 농도로 혼합 하였다. 프로타민을 사용하지 않고 음이온 성 리포좀에 60~65% siRNA의 캡슐화 효율이 있었다. 프로타민과 샘플 : 1 ~ 1.5 : 1에서 siRNA의 몰비 1 (133-266...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

토론

이 보고서는 효율적으로 CNS에의 siRNA를 전송이 표적 전달 시스템을 만들 수있는 프로토콜을 설명합니다. 중추 신경계에의 siRNA를 전달하는 이전 방법은 뇌, 대상의 siRNA의 정맥 주사, 또는 비 대상 리포좀의 siRNA 복합체의 정맥 주사에​​ 직접 siRNA를 /의 shRNA 벡터를 주입 포함되어 있습니다. 중추 신경계로의 siRNA / shRNA를 벡터의 주입은 목적 단백질의 발현 수준의 감소를 야기 않는다. 그러나, siRNA...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

공개

The authors declare that they have no competing financial interests.

감사의 말

We would like to acknowledge the following funding sources: the CSU Infectious Disease Translational Research Training Program (ID:TRTP) and the NIH research grant program (R01 NS075214-01A1). We would like to thank the Telling lab for the use of their monoclonal antibody PRC5. We would also like to thank the Dow lab for DOTAP liposomes, and for sharing their expertise in generating liposomes.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

자료

NameCompanyCatalog NumberComments
DOTAP lipidAvanti Lipids890890
CholesterolAvanti Lipids700000
DSPEAvanti Lipids850715
DSPE-PEGAvanti Lipids880125
ChloroformFisher ScientificAC268320010
MethanolEMD Millipore113351
N2 GasAirGas
SucroseFisher ScientificS5-500
ExtruderAvanti Lipids610023
1.0, 0.4, and 0.2 μm filtersAvanti Lipids610010, 610007, 610006
PBSLife Technologies70011-044
Protamine sulfateFisher ScientificICN10275205
EDCThermo Scientific22980Aliquoted for single use
Sulfo-NHSThermo Scientific24510Aliquoted for single use
40 μm Cell StrainerFisher Scientific08-771-1
Rat anti-mouse CD16/CD32 Fc blockBD Pharmigen553141
Anti-PrP antibody (PRC5)Proprietary - PRC

참고문헌

  1. Bolton, D. C., Mckinley, M. P., Prusiner, S. B. Identification of a protein that purifies with the scrapie prion. Science. 218 (4579), 1309-1311 (1982).
  2. McKinley, M. P., Bolton, D. C., Pruisner, S. B. A protease-resistant protein is a structural component of the scrapie prion. Cell. 35 (1), 57-62 (1983).
  3. Pruisner, S. B. Novel proteinaceous infectious particles cause scrapie. Science. 216 (4542), 136-144 (1982).
  4. Jeffrey, M., McGovern, G., Sisò, S., González, L. Cellular and sub-cellular pathology of prion diseases: relationship between morphological changes, accumulation of abnormal prion protein and clinical disease. Acta Neuropathologica. 121 (1), 113-134 (2011).
  5. Büeler, H., et al. Mice devoid of PrP are resistant to scrapie. Cell. 73 (7), 1339-1347 (1993).
  6. Pfeifer, A., et al. Lentivector-mediated RNAi efficiently suppresses prion protein and prolongs survival of scrapie-infected mice. J Clin Invest. 116 (12), 3204-3210 (2006).
  7. White, M., Farmer, M., Mirabile, I., Brandner, S., Collinge, J., Mallucci, G. Single treatment with RNAi against prion protein rescues early neuronal dysfunction and prolongs survival in mice. Proc Natl Acad Sci. 105 (29), 10238-10243 (2008).
  8. Gallozzi, M., et al. Prnp knockdown in transgenic mice using RNA interference. Transgenic Research. 17 (5), 783-791 (2008).
  9. Mallucci, G., et al. Targeting cellular prion protein reverses early cognitive deficits and neurophysiological dysfunction in prion-infected mice. Neuron. 53 (3), 325-335 (2007).
  10. Pulford, B., et al. Liposome-siRNA-peptide complexes cross the blood-brain barrier and significantly decrease PrPC on neuronal cells PrPRes in infected cultures. PLoS One. 5 (6), (2010).
  11. Malone, R. W., Felgner, P. L., Verma, I. M. Cationic liposome-mediated RNA transfection. Proc Natl Acad Sci. 86, 6077-6081 (1989).
  12. Liu, Y., et al. Factors influencing the efficiency of cationic liposome-mediated intravenous gene delivery. Nat Biotechnol. 15, 167-173 (1997).
  13. Freimark, B. D., et al. Cationic lipids enhance cytokine and cell influx levels in the lung following administration of plasmid: cationic lipid complexes. J Immunol. 160 (9), 4580-4586 (1998).
  14. Balzas, D. A., Godbey, W. T. Liposomes for use in gene delivery. J Drug Deliv. , (2011).
  15. Srinivasan, C., Burgess, D. J. Optimization and characterization of anionic lipoplexes for gene delivery. J Control Release. 136 (1), 62-70 (2009).
  16. Lakkaruju, A., Dubinsky, J. M., Low, W. C., Rahman, Y. Neurons are protected from excitotoxic death by p53 antisense oligonucleotides delivered in anionic liposomes. J Biol Chem. 276 (34), 32000-32007 (2001).
  17. Tao, Y., Han, J., Dou, H. Brain-targeting gene delivery using a rabies virus glycoprotein peptide modulated hollow liposomes: bio-behavioral study. J Mater Chem. 22, 11808-11815 (2012).
  18. Li, S., Huang, L. In vivo gene transfer via intravenous administration of cationic lipid-protamine-DNA (LPD) complexes. Gene Ther. 4 (9), 891-900 (1997).
  19. Li, S., Rizzo, M. A., Bhattacharya, S., Huang, L. Characterization of cationic lipid-protamine-DNA (LPD) complexes for intravenous gene delivery. Gene Ther. 5 (7), 930-937 (1998).
  20. Kumar, P., et al. Transvascular delivery of small interfering RNA to the central nervous system. Nature. 448, 39-43 (2007).
  21. Voinea, M., Simionescu, M. Designing of 'intelligent' liposomes for efficient delivery of drugs. J Cell Mol Med. 6 (4), 465-474 (2002).
  22. Lakkaraju, A., et al. Neurons are protected from excitotoxic death by p53 antisense oligonucleotides delivered in anionic liposomes. J. Biol. Chem. 276 (34), 32000-32007 (2001).
  23. Li, S., Huang, L. In vivo gene transfer via intravenous administration of cationic lipid-protamine-DNA (LPD) complexes. Gene Ther. 4 (9), 891-900 (1997).
  24. Büeler, H., et al. Normal development and behaviour of mice lacking the neuronal cell-surface PrP protein. Nature. 356 (6370), 577-582 (1992).
  25. Dykxhoorn, D., Novina, C., Sharp, P. Killing the messenger: short RNAs that silence gene expression. Nat Rev Mol Cell Bio. 4 (6), 457-467 (2003).
  26. Graham, A., Ray, M., Perry, E., Jaros, E. Differential nicotinic acetylcholine receptor subunit expression in the human hippocampus. J Chem Neuroanat. 25 (2), 97-113 (2003).
  27. Kretzschmar, H. A., Prusiner, S. B., Stowring, L. E. Scrapie prion proteins are synthesized in neurons. Am J Pathol. 122 (1), 1-5 (1986).
  28. Moser, M., Colello, R., Pott, U., Oesch, B. Developmental expression of the prion protein gene in glial cells. Neuron. 14 (3), 509-517 (1995).
  29. Cronier, S., Laude, H., Peyrin, J. M. Prions can infect primary cultured neurons and astrocytes and promote neuronal cell death. Proc Natl Acad Sci. 101 (33), 12271-12276 (2004).
  30. Diedrich, J., Bendheim, P., Kim, Y. Scrapie-associated prion protein accumulates in astrocytes during scrapie infection. Proc Natl Acad Sci. 88 (2), 375-379 (1991).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

재인쇄 및 허가

JoVE'article의 텍스트 или 그림을 다시 사용하시려면 허가 살펴보기

허가 살펴보기

더 많은 기사 탐색

113siRNA

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

개인 정보 보호

이용 약관

정책

연구

교육

JoVE 소개

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. 판권 소유