수목 균근(AM) 곰팡이 접종물 생산 및 식염수 조건에서 쌀과 AM 공생의 표현형 평가

요약

이 문서에서는 벼의 AM 강화 염분 스트레스 내성을 조사하기 위해 수목 균근(AM) 곰팡이 접종물을 생성하는 프로토콜에 대해 설명합니다.

초록

쌀(Oryza sativa L.)은 전 세계 인구의 절반 이상이 차지하는 필수 식량 작물입니다. 그러나 그 성장은 염분 토양에 의해 심각한 영향을 받아 전 세계적으로 작물 생산에 심각한 도전을 제시합니다. 농작물의 90% 이상과 육상 식물 종의 80%와 상호 공생 관계를 형성하는 수목 균근(AM) 곰팡이는 벼 식물의 염분 내성을 향상시키는 것으로 나타났습니다. AM 곰팡이는 숙주 뿌리 없이는 수명 주기를 완료할 수 없는 절대 공생체입니다. 따라서 식물을 효과적으로 활용하여 AM 곰팡이 접종물을 생산하는 것은 이 분야의 연구를 발전시키는 데 매우 중요합니다. 이 연구에서는 Allium tuberosum L을 사용하여 Rhizophagus irregularis의 포자를 포함하는 모래 접종물을 생성하는 것으로 시작하는 일련의 강력한 방법을 제시합니다. 이러한 방법에는 벼 묘목에 모래 접종, 균근 벼의 성장 표현형 분석, 염분 스트레스 하에서 트리판 블루 염색을 사용하여 곰팡이 집락 수준을 정량화하는 것이 포함됩니다. 이러한 접근 방식은 AM 공생이 쌀의 염분 내성을 향상시키는 방법에 대한 추가 조사를 위해 AM 곰팡이 접종을 효율적으로 생성할 수 있습니다.

서문

염분 토양은 전 세계적으로 작물 생산에 중요한 장애물입니다 ^1,2,3. 최근 연구에 따르면 2050년까지 경작지의 최대 50%가 염분화로 인해 황폐화될 것이라고 합니다⁴. 염분의 영향을 받는 토양은 주로 식물 조직에 나트륨(Na⁺) 및 염화물(Cl⁻) 이온이 축적되어 식물에 독성을 유발합니다. 염분 토양을 지배하는 이러한 이온은 또한 식물에 가장 해롭습니다 ^5,6,7. 예를 들어, 나트륨은 많은 세포질 효소 활성을 억제합니다⁸. 염분 스트레스는 또한 광합성 효율에 영향을 미치고 이온 독성, 삼투압 및 세포벽 구조의 변화를 유도하여 총체적으로 활성 산소 종(ROS)의 축적으로 이어집니다 9,10,11,12,13.

Arbuscular mycorrhizal (AM) 공생은 Glomeromycota 문의 곰팡이와 초기 육상 식물의 출현과 함께 약 4 억-4 억 5 천만 년 전에 진화 한 식물 뿌리 사이의 내부 공생 관계입니다^14,15. 관다발성 식물의 80% 이상이 AM 곰팡이¹⁶에 의해 군집화될 수 있습니다. 이러한 상호주의적 관계는 토양에서 식물의 영양 흡수를 향상시켜 성장과 스트레스 내성을 향상시킵니다 17,18,19,20. 예를 들어, 염분 스트레스 동안 AM 곰팡이는 이온 균형을 유지하고 식물의 물과 영양분 가용성, 항산화 활성, 광합성 효율 및 2차 대사 산물 생성을 향상시키는 데 도움이 될 수 있습니다 2,21,22,23. 또한 AM 공생은 과도한 Na+ 흡수와 뿌리에서 새싹으로의 이동을 방지하여 K⁺, Mg²⁺ 및 Ca²⁺와 같은 필수 양이온의 흡수를 촉진합니다. 이 과정은 식염수 조건 하에서 식물의 Mg^{2 +} / Na ⁺ 또는 K ⁺ / Na ⁺ 비율을 증가시킵니다 23,24,25,26,27,28,29.

전 세계 인구의 절반 이상이 중요한 식량 작물인 쌀(Oryza sativa L.)은 Gramineae (Poaceae)과에 속하며 염분 스트레스에 매우 취약합니다³⁰. 연구는 또한 쌀의 염분 스트레스 내성을 향상시키는 AM 곰팡이의 역할을 강조했습니다 31,32,33. 예를 들어, AM 곰팡이 Claroideoglomus etunicatum은 염분 스트레스 하에서 쌀(Oryza sativa L. cv. Puntal)의 CO₂ 고정 효율을 향상시킵니다³¹. 더욱이, 액포 나트륨 격리 및 새싹에서 뿌리로의 Na+ 재순환과 관련된 주요 쌀 수송체 유전자의 발현은 염분 스트레스 하에서 AM 집락화된 식물에서 향상됩니다³². 또한, Glomus etunicatum을 접종한 고지대 벼 식물은 염분 조건에서 향상된 광합성 능력, 높은 삼투압 생산, 향상된 삼투압 잠재력 및 더 큰 곡물 수확량을 나타냅니다³³. 우리의 이전 연구는 또한 균근 벼(Oryza sativaL. cv. Nipponbare)가 더 나은 싹 및 생식 성장, 싹에서 현저하게 더 높은 K⁺/Na⁺ 비율, AM 공생³⁴로 인해 활성 산소 종(ROS) 제거 능력을 향상시켰다는 것을 입증했습니다. 이러한 결과는 모두 현상학적 접근 방식을 통해 쌀의 소금 스트레스 내성에 대한 AM 공생의 긍정적인 영향을 보여줍니다. 그러나 실험 방법은 비디오 형식으로 발표되지 않았습니다.

AM 균류는 수명 주기를 완료하기 위해 숙주 뿌리가 필요한 절대 공생체이므로 식물을 사용하여 AM 진균 접종물을 생산하는 것은 연구 진행에 매우 중요합니다³⁵. AM 곰팡이가 질석 또는 모래와 같은 기판에서 성장하고 접종³⁶을 위해 포자를 수집하는 기판 기반 생산 시스템은 대규모 AM 곰팡이 접종 생산을 위한 비용 효율적인 솔루션을 제공합니다. 포자 생산의 효율성은 곰팡이 집락화와 번식에 영향을 미치는 식물 호환성과 성장에 달려 있습니다^37,38. 그러나 이 방법은 시간이 많이 소요되는 경우가 많으며 기존 접근 방식은 최대 120일이 걸리고 포자 생성량이 적습니다. 최근의 개선으로 LED 조명 조건에서 옥수수를 호스트 식물로 사용하여 생산 기간을 90일로 단축했습니다³⁹. 그러나 10주 이내에 Allium tuberosum L.을 사용하여 Rhizophagus irregularis의 포자를 포함하는 모래 접종물을 생성하기 위한 강력한 방법이 제시되어 있습니다. 이 모래 접종물은 균근 벼의 성장 표현형을 분석하고 염분 스트레스 하에서 트리판 블루 염색을 사용하여 곰팡이 집락화 수준을 정량화하는 데 사용할 수 있습니다. 이러한 접근 방식은 AM 공생이 쌀의 염분 내성을 향상시키는 방법에 대한 추가 조사를 위해 AM 곰팡이 접종을 효율적으로 생성합니다.

프로토콜

이 연구에 사용된 시약 및 장비의 세부 사항은 재료 표에 나열되어 있습니다.

1. Allium tuberosum L을 사용하여 Rhizophagus irregularis의 포자를 포함하는 모래 접종물의 생성.

1. 수돗물로 모래를 씻고 오토클레이브합니다.
2. 냄비에 모래의 2/3를 추가합니다(상단 직경 14.7cm, 하단 직경 11.5cm, 높이 13cm). AM 곰팡이 Rhizophagus irregularis의 포자 1,000개를 추가합니다. 얇은 모래 층으로 덮으십시오. 마늘 쪽파(Allium tuberosum L.) 씨앗 30개를 넣고 씨앗을 모래로 덮습니다.
3. 마늘 쪽파를 23.5 ° C (상대 습도 55 %)에서 16 시간 / 8 시간 낮 / 밤 주기로 챔버에서 재배합니다. 첫 주(접종 후 1주, wpi) 동안은 마늘 쪽파를 알루미나 종이로 덮어 빛을 차단하고 일주일에 세 번 물을 줍니다.
4. 2 wpi에서 시작하여 25 μM KH₂PO₄를 함유 한 80 mL 절반 강도 Hoagland 용액으로 일주일에 두 번 마늘 쪽파를 비옥하게합니다. 일주일에 한 번 80mL의 물로 비료를 줍니다.
5. 10주 후, 트리판 블루 염색을 위해 마늘 쪽파의 뿌리를 수확하여 곰팡이 집락 수준을 평가합니다. 집락 수준이 70%를 초과하면 모래가 마를 때까지(약 5주) 마늘 쪽파에 물을 주지 마십시오. 모래 접종물은 모두 비닐봉지에 넣고 4°C의 냉장고에 보관한다.

2. 곰팡이 집락 수준을 확인하기 위한 Trypan blue 염색

1. 뿌리 조각을 >90 ° C에서 10 % KOH로 30 분 동안 배양합니다. KOH를 제거합니다.
2. 뿌리 조각을 이중 증류수(ddH₂O)로 세 번 헹굽니다.
3. 뿌리 조각을 0.3M HCl로 15분에서 2시간 동안 배양합니다. HCl을 제거합니다.
4. 0.1% 트리판 블루 1mL를 추가하고 >90°C에서 8분 동안 샘플을 배양합니다.
5. 뿌리 조각을 50% 산성 글리세롤로 씻으십시오. 10개의 뿌리 조각을 슬라이드에 옮기고 50% 산성 글리세롤 한 방울을 추가합니다.
6. 커버슬립을 밀봉하고 매니큐어를 바르십시오.
7. 현미경으로 각 뿌리의 10개 시야를 검사하여 곰팡이 구조의 존재를 기록합니다. 곰팡이 집락 수준을 백분율로 계산합니다.
   참고: 50% 산성 글리세롤: 글리세롤과 0.3M HCl을 1:1 비율로 혼합하여 준비합니다. 0.1% 트리판 블루: 트리판 블루 100mg을 2:1:1 젖산, 글리세롤 및 ddH₂O의 혼합물에 녹입니다.

3. 벼 묘목에 모래 접종 및 소금 스트레스 치료 접종

1. 벼 씨앗에서 껍질(껍질)을 제거합니다.
2. 씨앗을 70% 에탄올(EtOH)로 4분 및 30초 동안 살균합니다.
3. 쌀씨를 원심분리기 튜브에 넣습니다. 3% 표백제(멸균 dH_2O로 준비)를 넣고 30분 동안 흔듭니다.
4. 표백제를 제거하고 층류 후드 내부에서 멸균 dH₂O 3-4 회 씨앗을 씻으십시오.
5. 0.8% 한천을 함유한 절반 강도의 Murashige-Skoog(1/2MS) 배지에서 30일 동안 어둠 속에서 5일 동안 씨앗을 재배합니다.
6. 30/28 ° C에서 12 시간 낮 / 밤 주기로 2 일 동안 70 % 공기 습도로 벼 묘목을 재배합니다.
7. 벼 모종을 멸균 된 모래가 들어있는 플라스틱 튜브에 옮깁니다. 접종물이 없거나 Rhizophagus irregularis (Ri)의 포자가 포함된 모래 접종물 5mL를 추가합니다.
8. 접종 후 첫 주 동안 일주일에 7일 동안 dH₂O로 벼 식물에 물을 줍니다. 25μM의 KH₂PO₄를 함유 한 절반 강도의 Hoagland 용액으로 이틀에 한 번씩 식물을 비옥하게하십시오.
9. 접종 후 5주(wpi)에 한 배치를 150mM의 NaCl(식염수 상태)로 처리하고 다른 배치는 NaCl(비식염수 상태)을 사용하지 않습니다.
   1. 비 염분 상태의 경우 화요일에 25 μM의 KH₂PO₄를 함유 한 절반 강도의 Hoagland 용액으로 식물에 물을 주고 나머지 주에는 물을 줍니다.
   2. 식염수 상태의 경우 화요일에는 25μM의 KH₂PO₄ 를 함유 한 절반 강도의 Hoagland 용액으로, 월요일, 수요일, 금요일에는 150mM의 NaCl을 함유 한 식물에 물을 주거나 나머지 주에는 물을 공급합니다.
10. 8 wpi에서 식물을 수확하여 신선한 무게를 측정합니다. 식물을 70°C 오븐에 2일 동안 넣어 건조 중량을 측정합니다. 트리판 블루 염색으로 곰팡이 집락화 수준을 분석합니다.

결과

단계별 워크플로우는 그림 1에 나와 있습니다. 접종 후 10주(wpi)에 말기 및 AM 공생의 특징인 소포 및 포자와 같은 곰팡이 구조가 마늘 쪽파의 뿌리 내부에서 명확하게 관찰되었습니다(그림 2A). 근치내 균사, 수포, 소포, 근치외 균사 및 포자의 수치는 각각 80%, 47%, 63%, 4%, 1%로 마늘 쪽파의 뿌리 내에서 곰?...

토론

모래 접종물의 준비 및 사용에 관한 몇 가지 팁이 있습니다. 첫째, 우리의 경험에 비추어 볼 때 마늘 부추의 집락 수준은 70% 이상이어야 합니다(그림 2C). 그렇지 않으면 토마토 및 쌀과 같은 다른 식물에 대한 다음 접종은 접종 후 7주(wpi)에 50% 이상에 성공적으로 도달하지 못할 것입니다(그림 2E). 둘째, 모래 접종물은 보관 전에 ...

자료

Name	Company	Catalog Number	Comments
(NH4)6Mo7O24.4H2O	FERAK	12054-85-2	half-strength Hoagland solution
Bleach	Gaulix	Gaulix-2108	rice sterilization
Ca(NO3)2.4H2O	Sigma	13477-34-4	half-strength Hoagland solution
CuSO4.5H2O	Sigma	7758-99-8	half-strength Hoagland solution
EtOH	Honeywell	67-63-0	rice sterilization
Fe-citrate	Sigma	3522-50-7	half-strength Hoagland solution
Garlic chives seeds	KNOWN-YOU SEED Co., LTD.	V-015	Allium tuberosum L. seeds
Glycerol	J.T.Baker	56-81-5	Trypan blue staining
HCl	Sigma	7647-01-0	Trypan blue staining
KCl	Merck	7447-40-7	half-strength Hoagland solution
KH2PO4	Merck	7646-93-7	half-strength Hoagland solution
KNO3	Avantor	7757-79-1	half-strength Hoagland solution
KOH	Honeywell	1310-58-3	Trypan blue staining
Lactic acid	Sigma	50-81-7	Trypan blue staining
MgSO4.7H2O	Sigma	10034-99-8	half-strength Hoagland solution
MnSO4.H2O	Honeywell	10034-96-5	half-strength Hoagland solution
MS salts	PhytoTech	M404	half-strength Murashige–Skoog (1/2 MS) medium
Na2B4O7.10H2O	Sigma	1330-43-4	half-strength Hoagland solution
NaCl	Bioshop	7647-14-5	salt stress treatment
NaOH	J.T.Baker	1310-73-2	half-strength Murashige–Skoog (1/2 MS) medium
Rhizophagus irregularis spore	Premier Tech	L-ASP-A	AM fungal spore (MycoriseASP, Premier Tech, Rivière-du-Loup, Québec, Canada )
Sucrose	Bioshop	57-50-1	half-strength Murashige–Skoog (1/2 MS) medium
Trypan blue	Sigma	72-57-1	Trypan blue staining
ZnSO4.7H2O	Avantor	7446-20-0	half-strength Hoagland solution