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Method Article
여기에서는 커프 기법을 사용하여 조직 공학 혈관 이식편을 마우스 경동맥에 이식하기 위한 프로토콜을 제시하여 혈관 조직 재생 메커니즘을 조사하는 데 적합한 동물 모델을 제공합니다.
직경이 작은 혈관 이식편의 개발은 전 세계적인 노력이었으며 수많은 연구 그룹이 이 분야에 기여하고 있습니다. 동물 실험은 특히 임상적 적용이 없는 경우 혈관 이식편의 효능과 안전성을 평가하는 데 중추적인 역할을 합니다. 대체 동물 모델과 비교했을 때, 마우스 이식 모델은 잘 정의된 유전적 배경, 질병 모델 구축을 위한 성숙한 방법, 간단한 수술 절차 등 여러 가지 이점을 제공합니다. 이러한 장점을 바탕으로 본 연구는 쥐의 경동맥에 조직 공학적 혈관 이식편을 이식하기 위한 간단한 커프 기술을 고안했습니다. 이 기술은 정전기 방사를 통해 폴리카프로락톤(PCL) 소구경 혈관 이식편을 제작하는 것으로 시작되었으며, 그 후 관류 흡착을 통해 이식편에 대식세포를 파종하는 것으로 시작되었습니다. 그 후, 세포화된 조직 공학 혈관 이식편을 커프 기술을 사용하여 마우스 경동맥에 이식하여 개통성 및 재생 능력을 평가했습니다. 생체 내 이식 30일 후, 혈관 개통은 신조직 재생의 증거와 이식편의 내강 내에 내피층 형성과 함께 만족스러운 것으로 밝혀졌습니다. 모든 데이터는 통계 및 그래프 소프트웨어를 사용하여 분석되었습니다. 이 연구는 혈관 재생의 세포 원천과 활성 물질의 작용 메커니즘을 탐색하는 데 사용할 수 있는 마우스 경동맥 이식 모델을 성공적으로 확립했습니다. 또한, 새로운 소구경 혈관 이식편의 개발을 위한 이론적 지원을 제공합니다.
심혈관 질환의 유병률과 사망률은 전 세계적으로 증가하고 있으며, 이는 중대한 공중 보건 문제를 나타냅니다1. 혈관 우회술은 중증 관상 동맥 심장 질환 및 말초 혈관 질환에 효과적인 중재술이다2. 직경이 6mm를 초과하는 인공 혈관 이식편의 사용은 임상 환경에서 잘 문서화되어 있습니다. 반대로, 직경이 6mm 미만인 사람은 혈전증과 내막 증식증이 발생하기 쉬우며, 이는 상당한 재협착 위험으로 이어질 수 있다3. 최근 몇 년 동안 소구경 혈관 이식편의 연구 개발이 크게 발전했음에도 불구하고 여러 제품이 임상 적용에 접근함에 따라 여러 가지 과제가 남아 있습니다 4,5. 여기에는 상대적으로 낮은 장기 개통률, 제한된 혈관 재생, 재생 메커니즘에 대한 불충분한 이해 등이 포함됩니다.
새로운 소구경 혈관 이식편의 전임상 평가는 다양한 동물 모델에서의 생체 내 이식에 의존합니다. 가장 일반적으로 사용되는 모델에는 양 경동맥, 개 대퇴 동맥, 토끼 경동맥 및 쥐 복부 동맥 이식 모델 6,7,8,9가 포함됩니다. 혈관 이식편의 개통성은 양, 돼지, 개와 같은 중대형 동물에서 평가할 수 있습니다. 그러나 이러한 연구에는 필요한 전문 지식과 장비로 인해 상당한 비용이 듭니다. 또한 기술적 복잡성으로 인해 구현에 어려움이 있습니다. 대조적으로, 토끼 및 쥐와 같은 작은 동물 모델에는 명확하게 정의된 유전적 배경을 가진 잘 확립된 형질전환 종이 부족하여 혈관 재생 메커니즘을 연구하는 데 상당한 장애물이 있습니다.
앞서 언급한 동물 모델과 비교했을 때, 마우스 모델은 비교적 간단한 수술 절차, 유전자 조작 마우스를 생성하기 위한 잘 정립된 방법론 및 명확하게 정의된 유전적 배경을 제공합니다. 그러나 마우스 혈관의 직경이 작기 때문에 혈관 이식에서 종단 간 문합은 기술적으로 복잡하여 상당한 전문 지식이 필요하고 상대적으로 성공률이 낮습니다. 절차의 복잡성을 줄이고 혈관 이식 이식의 성공률을 높이기 위해 본 연구에서는 마우스 경동맥 이식 모델에서 커프 기술을 사용했습니다.
생체 내 이식 후, 혈관 이식편은 혈관 조직 재생에 기여하는 내인성 세포를 모집할 수 있습니다. 이러한 세포의 존재는 이식편의 평활근 층의 내피화와 재생을 촉진합니다. 10. 그러나 혈관 조직 재생에 관여하는 세포의 출처와 유형은 여전히 불분명하며, 여러 경쟁 이론이 연구 중이다11. 이 중 염증세포와 줄기세포의 역할에 대한 연구가 집중되어 있습니다. Breuer 등은 인간 골수 유래 단핵구(human bone marrow-derived monocytes, hBMC)를 혈관 이식편에 파종한 결과, 파종된 세포가 단핵구 화학유인 단백질-1(MCP-1)의 방출을 통해 숙주 세포를 이식벽으로 모집하여 혈관 조직 재생을 촉진한다는 사실을 발견했다12. 본 연구에서는 효율적인 관류 흡착 세포 파종(constructing method)을 제안하여 폴리카프로락톤(PCL) 소구경 혈관 이식편에 대식세포를 시딩하는 데 성공적으로 사용했습니다. 이식 후 이러한 세포는 지속적인 생존력을 보였습니다.
이 기사에서는 커프 기술을 사용하여 마우스에서 조직 공학 혈관 이식편과 경동맥 이식 절차를 준비하는 방법론에 대해 자세히 설명합니다. 이 공정은 정전기 방사를 통해 정의된 매개변수를 가진 PCL 소구경 혈관 이식편을 제작하는 것으로 시작됩니다. 그 후, 이식에 적합한 것으로 간주되는 이식편은 기계적 테스트를 거칩니다. 그런 다음 대식세포는 관류 흡착 방법을 사용하여 혈관 이식편에 파종됩니다. 마지막으로, 커프 기법을 사용하여 대식세포 파종 혈관 이식편을 마우스 경동맥에 이식하고, 생체 내 이식 1개월 후 개통 및 재생 특성을 분석합니다.
이 기술은 마우스 모델에서 혈관 이식의 효능과 성공률을 향상시킬 수 있는 잠재력을 가지고 있습니다. 또한, 이 모델은 혈관 재생의 세포 공급원, 중추 유전자 및 활성 인자의 기저에 있는 메커니즘을 조사하는 데 사용할 수 있으며, 새로운 소구경 혈관 이식편의 기능적 변형 및 개발에 대한 이론적, 방법론적 지원을 제공할 수 있습니다.
모든 동물 시술은 중국의학원(Chinese Academy of Medical Sciences) 방사선의학연구소(Institute of Radiation Medicine)의 동물실험윤리위원회(Animal Experiment Ethical Committee)의 승인을 받았으며 실험동물의 관리 및 사용에 대한 지침을 준수했습니다. 이 연구에는 체중이 25-30g인 6-8주 된 수컷 C57BL/6 마우스가 사용되었습니다. 이 연구에 사용된 시약 및 장비에 대한 자세한 내용은 재료 표에 나열되어 있습니다.
1. 소구경 혈관 이식편의 제작
참고: 전기방사 기법을 사용하여 소구경 PCL 혈관 이식편을 제작합니다13.
2. 혈관 이식편에 대식세포를 파종하는 것
알림: 모든 용액과 재료가 멸균되었는지 확인하십시오. 세포 배양실 내에서 모든 작업을 수행합니다.
3. 쥐 경동맥 이식 모형
참고: 동물 시술을 위해 멸균 수술 부위를 유지하십시오. 수술 전에 모든 수술 기구와 일회용품을 소독하십시오.
4. 시술 후 관리 및 분석
매개변수가 다른 작은 직경의 혈관 이식편은 전기 방사를 통해 성공적으로 준비되었습니다. SEM 이미지는 섬유가 균일하게 분포되어 있고 공극 구조의 존재와 함께 이식벽 내에서 불규칙한 배열을 나타내는 것을 보여주었습니다(그림 4). PCL의 농도가 증가함에 따라 섬유 직경과 기공 크기가 모두 증가했습니다. 각 혈관 이식 그룹에 대한 구체?...
쥐의 경동맥에 조직 공학적 혈관 이식편을 이식하기 위한 커프 기술의 사용은 심혈관 연구에서 중요한 진전을 나타냅니다15. 이 기술의 중요한 단계에는 세포 파종 및 이식 이식이 포함됩니다. 이 연구에서는 불균일한 세포 파종 및 낮은 세포 생존율과 관련된 문제를 해결하기 위해 대식세포 파종 밀도를 향상시키기 위해 관류 흡착 접근법을 사용했습니...
저자는 상충되는 재정적 이해관계가 없습니다.
이 연구를 위한 자금은 중국 국립 자연과학 재단 프로젝트(no. 32101098, 32071356 및 82272158)와 CAMS 의료 과학 혁신 기금(no. 2022-I2M-1-023)에서 제공했습니다.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
1% penicillin-streptomycin | Solarbio | P1400 | |
10% fetal bovine serum | Gibco | A5256701 | |
4% paraformaldehyde | Solarbio | P1110 | |
4',6-Diamidino-2-Phenylindole (DAPI) | SouthernBiotech | 0100-20 | |
Alcohol | Tianjin Chemical Reaggent Company | 1083 | |
Anti-Mouse CD31 primary antibody | BD Bioscience | 553370 | |
Arterial clips | RWD Life Science | R31005-06 | |
C57BL/6 mice | Beijing Vital River Laboratory Animal Technology Company | ||
Dulbecco's modified eagle medium (DMEM) | Gibco | 11966025 | |
Electrostatic spinning machine | Yunfan Technology | DP30 | |
Goat anti-rat IgG (Alexa Fluor 555) | Invitrogen | A-21434 | |
Hematoxylin and eosin (H&E) | Solarbio | G1120 | |
Hexafluoroisopropanol (HFIP) | McClean | H811026 | |
Iodophor | LIRCON | V273068 | |
Microscissors | World Precision Instruments | 14124 | |
Microtweezers | World Precision Instruments | 500338 | |
Normal goat serum | Boster | AR0009 | |
Normal saline | Cisen Pharmaceutical company | H20113369 | |
Nylon tube for cuff | Portex | ||
Optimal cutting temperature compound (OCT) | Sakara | 4583 | |
Pentobarbital sodium | Sigma | P3761 | |
Phosphate Buffered Saline (PBS) | Solarbio | P1003 | |
Poly(ε-caprolactone) (PCL) pellets (Mn = 80,000) | Sigma | 704067 | |
RAW264.7 macrophages | Biyuntian Biotechnology | ||
Scanning electron microscope (SEM) | Zeiss | PHENOM-XL-G2 | |
Surgical sutures 6-0 | Ningbo Chenghe microapparatus factory | 220919 | |
Surgical sutures 9-0 | Ningbo Chenghe microapparatus factory | 221006 | |
Syringe | Changqiang Medical Devices | 0197 | |
Tensile testing machine | Instron | WDW-5D |
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