This research was supported by Cleveland State University Faculty Development Funds.

기생충 세포 배양 1. 준비, 기생충 펠렛의 컬렉션 <ol><li> 1 L에 RPMI-1640 분말 10g, 겐타 마이신 황산염 66 ㎎, 2g 중탄산 나트륨, 5.9 g의 HEPES 완충액, 50 mg을 하이포크 산틴 3.8 g의 덱 스트로스를 추가하여 RPMI-1640-HEPES 매체를 준비 멸균 DH 2 O. 1 L의 증류수 모든 분말이 용해 될 때까지 테이블 마그네틱 교반기를 사용하여 혼합. 0.22 μm의 필터를 사용하여 미디어의 미세 여과를 수행합니다. 멸균 병에 미디어를 보관합니다. </li><li> 감염되지 않은 (신선한) 워시 RPMI를 사용하여 A + 적혈구를 입력합니다. 적혈구 용적률 5 % (9.5 ㎖의 RPMI + 10 % 인간 혈청 세척 신선한 적혈구 0.5 ml)로 준비한다. </li><li> 15 % 인간 혈청 + RPMI (인간 혈청 15 ㎖의 RPMI의 85 ml)을 기생충의 재배를 시작합니다. 10 % 인간 혈청 및 RPMI (인간 혈청 10 ㎖와 RPMI 90 ml)을 적혈구에서 기생충의 배양을 계속합니다. </li><li> 문화 P. 원충 (3D7 및 FCR-3 균주) 유형5 % 적혈구 용적률 20 %의 기생충 배양 접시에서 또는 75cm 3 문화 플라스크에서 A + 인간의 적혈구. 트레와 젠슨 촛불 항아리 (26)의 방법에 따라 체외에서 배양을 유지한다. 또는, 문화가 9.5 %의 CO 2 및 3.4 % N2 가스 유지 37 ° C에서 인큐베이터에 유지한다. 문화 P. 원충은 RPMI-1640 배지 HEPES 10 % 인간 혈청. </li><li> P. 동기화 65 % 퍼콜 문화 (퍼콜 + 인간 혈청이없는 RPMI-1640의 35 ㎖를 65 ㎖)에 추가하여 원충 문화 (27)을 집중한다. </li><li> 3 층 결과 5 분 2500 XG에서 퍼콜와 문화 농축 원심 분리기. 조심스럽게, 전송 피펫을 사용하여 무균 조건 (27)에서 별도의 튜브에 중간 계층 전송에서 schizonts을 격리 할 것. </li><li> 5 분 7500 XG에서 원심 분리하여 초과 퍼콜을 제거하기 위해 두 번 10 % 인간 혈청 + RPMI-1640와 고립 된 문화를 씻으십시오. 디상층 액을 무균 조건 (27)에서 각각의 시간을 scard. </li><li> 동기화 된 피를 배양 계속 10 % 인간 혈청 + 27 RPMI-1640 열대열 schizonts. </li><li> 10 mM 트리스 pH를 8.8로 변형체에게 -infected 적혈구를 치료하고 15 분 23 15000 XG에 원심 분리하여 schizonts를 수집합니다. 펠릿에 단백질 분해 효소 억제제 (아프로 티닌) 5 ㎕를 첨가 한 다음 -70 ℃에서 저장 기생충 펠렛. 단백질 추출, 게놈 DNA를 분리하고 RNA 분리에 대한 기생충 펠렛을 사용합니다. </li></ol> 2. 플라스미드 벡터를 준비 <ol><li> P.에서 게놈 DNA를 분리 약 20 %의 기생충의 문화에서 준비 원충 schizont 펠렛. </li><li> , microcentrifuge 관에서 펠렛하여 pH 7.6의 10 mM이 트리스 - 염산, 50 mM의 EDTA의 pH 8.0, 0.1 % SDS 1 ㎎ / ㎖ 프로 테 K, 600 μl를 추가 26 G 바늘에 부착 된 1 ML의 주사기를 사용하여 펠렛을 균질화. 주사기 충전 대체펠릿 혼합물 microcentrifuge 관으로 20 배와 비우기. 50 ° C의 물을 욕조에 튜브를 포함하는 균질의 O / N을 품어. </li><li> P + C 600 μL (페놀의 300 μL 클로로포름 300 μL) 균질 펠릿에 추가하여 클로로포름 (P + C) 추출 - 페놀을 수행합니다. 캡 튜브는 단단하고 튜브 종단을 반전시킴으로써, 혼합물을 격렬하게 흔들어. 2 분 동안 14,000 XG 및 원심 분리기 튜브 새로운 microcentrifuge 관에 마이크로 피펫을 이용하여 상부 수용액을 모은다. 두 번이 단계를 반복합니다. </li><li> 단계 2.1.2에서 새 튜브에 수성층에 클로로포름 600 μl를 추가합니다. 2 분 동안 14,000 XG에 10 초 원심 분리 용 튜브를 소용돌이. 마이크로 피펫으로 상부 수층을 측정 새로운 마이크로 원심 튜브로 옮긴다. </li><li> 수성 누워 (수층 300 μL를 5 M 아세트산 나트륨 pH를 이소프로판올 5.5 + 330 μL의 30 μL를 추가하는 경우) 5 M 아세트산 나트륨 pH가 5.5, 0.1 부피의 이소프로판올을 추가 한 권단계 2.1.3에서 어. 실온에서 15 분 동안 인큐베이션 튜브. </li><li> DNA 펠렛을 침전을 10 분 동안 14,000 XG에서 튜브를 원심 분리기. 뜨는을 취소하고 DNA로부터 과도한 소금을 제거하기 위해 70 % 에탄올 100 ㎕ (에탄올 70 μL와 DH 2 O 30 μL)와 펠렛을 씻는다. -20 ° C에서 DH 2 O 50 μL에 보관 된 DNA. </li><li> P.의 증폭을 위해 수동으로 앞으로 디자인과 소프트웨어를 사용하여 프라이머를 역 또는 표 2에 나타낸 바와 같이 원충 유전자 PF3D7_1361800, PF3D7_0925900, PF3D7_1436300 및 PF3D7_0114100 이전 프로테옴 연구 발현 플라스미드 pT7CFE1-CHis의 다중 클로닝 사이트 내로 유전자 서열의 복제를 허용하기 위해 적절한 제한 부위를 가진 (16, 18)에서 식별. </li><li> 추가하여 50 ㎕의 반응 혼합물을 만들기; 고립 P. 5 μL 원충 게놈 DNA, 10 배 버퍼의 5 μL,의 MgCl 2의 5μL, 정방향 프라이머의 1.5 μL, 1.5 μL역방향 프라이머, T7 DNA 중합 효소 0.5 μL와 DH 2 O 31.5 μL 및 변성 8 분 동안 94 ° C에서 중합 효소 연쇄 반응 (PCR)을 수행하는, 연장 된 1 분 30 초 동안 50 ° C 및도 9를 72 ° C 표 1에 기재된 유전자를 증폭하기위한 어닐링과 탈 변성 분. </li><li> 1 % 아가 로스 겔 (1 g의 아가 및 트리스 아세테이트 100 ml의 EDTA (TAE) 버퍼) (32)에 별도의 PCR 제품. </li><li> , 아가 로스 겔로부터 PCR 증폭 된 DNA 밴드를 잘라 DNA 겔 추출 스핀 컬럼에서 DNA를 함유하는 겔 슬라이스를 넣고 5 분 동안 -20 ℃에서 동결. 5 분 동안 14,000 XG에서 냉동 젤 슬라이스와 원심 분리기에 이소프로판올 100 μl를 추가합니다. </li><li> 마이크로 피펫을 사용하여, 수성 관류 단계 2.5에서 포집 관에서 필터링을 측정하고 새로운 튜브로 옮긴다. 5 분 동안 14,000 XG에서 5 M 아세트산 나트륨과 원심 분리기의 0.1 권을 추가합니다. 뜨는을 취소하고 토륨하는 DH 2의 O를 10 μl를 추가전자 DNA 펠릿. </li><li> 플라스미드 3 μL 각 튜브 PCR 유전자 제품의 5 μl를 첨가하여 두 가지 별개의 튜브 pT7CFE1-CHis 발현 벡터 및 (2.6)로 정제하여 DNA 단편 다이제스트. 각 튜브에 특정 제한 효소 1 μL, 반응 버퍼의 2 μL와 DH 2 O 14 μl를 추가 </li><li> 소화 플라스미드의 3 μL, 소화 DNA 단편의 5 μL, 10 배 리가 버퍼의 2 μL, 리가의 1 μL 및 microcentrifuge 관에서 DH 2 O 9 μl를 추가합니다. 12 ° CO / N에 품어. </li><li> pH가 5.5 에탄올 2 부피에서 3 M 아세트산 나트륨 0.1 부피 추가 단계 2.14에서 튜브 (검색 결찰 튜브 부피 인 경우 20 ㎕의 3 M 아세트산 나트륨 에탄올 + 44 μL의 2 μL를 추가). 잘 혼합하고 15 분 동안 -20 ° C에서 품어. </li><li> 15 분 동안 14,000 XG에서 튜브를 원심 분리기. 조심스럽게 펠렛을 방해하지 않고 마이크로 피펫을 사용하여 상층 액을 제거합니다. </li><li> 70 % 에탄올 (T)의 100 μl를 추가단계 2.10에서 펠렛 오. 5 분 동안 14,000 XG에서 튜브를 원심 분리기. 제거하고 상층 액을 버린다. DNA 펠릿에 뉴 클레아없는 물 10 μl를 추가합니다. </li></ol> 시험 관내 인간 무 세포 발현 시스템에서 사용하기 3. 단백질 발현 <ol><li> 재조합 pT7CFE1-CHis 플라스미드 DNA의 2 μL, 5 배의 전사 버퍼 4 μL, NTP 믹스의 4 μL, T7 RNA 중합 효소의 2 μL 및 뉴 클레아없는 물 8 μL 2 단계를 측정하여 전사 혼합물의 20 μl를 준비 DNA 템플릿을 사용하여 체외 단백질 발현에 인간. 마이크로 원심 튜브에 구성 요소를 혼합하고 수조에서 30 ° C에서 75 분 동안 배양한다. </li><li> 전사 액 2 μL를 취하여 헬라 세포 용 해물 12.5 μL, 부속 단백질 2.5 μL, 염 용액 1 ㎕를, 아미노산의 0.5 μL -Met, 아미노산의 0.5 μl를 함유 번역 액 23 μL에 추가 -Leu, 181]의 RNAse 억제제 (L), 에너지 믹스 1.25 μL 및 클레아없는 물 3.75 μL. </li><li> 90 분 동안 30 ° C에서 3.2 단계에서 번역 된 혼합물을 인큐베이션. 스토어 -20 ° C에서 제품을 번역했다. </li><li> 1 단계 재조합 pT7CFE1-CHis 플라스미드 DNA의 3 μL, 클레아없는 물 2 μL, 반응 혼합물의 5 μL, 헬라 해물 12.5 μL 소품 단백질, 2.5 μl를 첨가하여 전사 및 번역 혼합물 25 μl를 준비 DNA 템플릿에 대한 인간의 결합 IVT 단백질 발현. </li><li> 30 ° C에서 90 분 내지 6에 대한 3.4 단계에서 반응 혼합물을 인큐베이션. 번역 제품에서 보관 -20 ° C. </li></ol> 표현 (4) 재조합 단백질의 정제 <ol><li> 정화 혼합물 100 ㎕를 만들기 위해 번역 제품의 25 μL에 1X 정화 버퍼의 75 μl를 추가합니다. </li><li> 정화 mixt 100 ㎕에 니켈 킬레이트 수지 100 μl를 추가URE. 워시 니켈 수지를 두 번 DH 2 O의 300 μL와 결합 버퍼의 300 μl를 추가하여. 과량의 에탄올을 제거하기 위해 1 분 동안 14,000 XG에서 수지와 원심 분리기를 다시 일시 중지합니다. </li><li> 단계에서 니켈 킬레이트 수지의 4.2-100 μl를 정화 혼합물의 100 μL를 추가하고 실온에서 60 분 동안 혼합물을 품어. </li><li> 1 분 14,000 XG에서 혼합물을 원심 분리기와 &quot;를 통해 흐름&quot;으로 표시 신선한 튜브에 뜨는를 수집합니다. </li><li> 1X 세척 버퍼 100 ㎕ (20 mM의 이미 다졸, 250의 pH 8에 mM의의 NaH 2 PO 4, 2.5 M의 NaCl과 DH 2 O)와 세척 수지. 1 분 14,000 XG에 원심 분리기와 &quot;세탁&quot;이라는 신선한 튜브에 뜨는를 수집합니다. 단계를 반복 4.5 배. </li><li> 1X 용출 완충액 100 μL 추가 (PH 8.0, 100 mM의 이미 다졸, 250 mM의 나트륨 2 PO 4, 2.5M 염화나트륨 및 DH 2 O)를 수지와 ​​15 분 동안 배양한다. 1 분 동안 14,000 XG에 원심 분리기. 두 번 용출 단계를 수행합니다. 각각의시간은 &quot;용출액&quot;신선한의 microcentrifuge 튜브 및 레이블에 상층 액을 수집합니다. </li><li> 4.5 단계에 설명 된대로 용출 후, 두 번 수지를 씻는다. 스토어는 -20 ° C 이하에서를 통해, 세척 및 용출 샘플 흐름. 수지는 4 ° C에서 저장해야합니다. SDS-PAGE 및 면역 분석을위한 각 샘플의 30 μl를 사용합니다. </li></ol> 5. 쿠마 (브래드 포드) 단백질 분석 (34) <ol><li> 농도 표준 소 혈청 알부민 (BSA) 용액 준비 20 ㎍ / ㎖를 40 ㎍ / ㎖ (BSA 20 μL를 혼합 (BSA (2 ㎎ / ㎖) 및 DH 2 O 90 μL의 10 μL를 혼합) (2 mg의 / ml) 및 DH 2 O) 80 μL, 60 ㎍ / ㎖ ((2 mg의 BSA (2 ㎎ / ㎖) 및 DH 2 O) 70 μL, 80 ㎍ / ㎖ (BSA 40 μL를 혼합하여 30 μL를 혼합 / ml) 및 DH 2 O) 60 μL를 100 μg의 / ㎖ (BSA (2 ㎎ / ㎖) 50 μL 및 DH 2 O) 50 μL, 160 ㎍ / ㎖ (BSA의 80 μL를 혼합하여 혼합 (2 mg의 / ml) 및 DH 20 μL2 O), 200 μg의 / ㎖ (100 ㎕ BSA (2 ㎎ / ㎖). </li><li> 측정 단계 4.7에서 흐르는, 세척 및 용출 샘플의 5 μL. DH 2 O의 95 μl를 추가 </li><li> 단계 5.1 및 5.2의 혼합물에 쿠마 푸른 시약의 5​​ ML을 추가합니다. 초 후 실온에서 20 분 동안 품어 10 파라 필름과 소용돌이 튜브를 커버. </li><li> 분광 광도계를 사용하여, 단계 5.3에서 단백질 튜브 650 nm의 파장에서의 광학 밀도 (OD)를 측정한다. OD 판독 대 플롯 농도는 단백질 농도를 결정한다 (34). </li></ol> 6. 웨스턴 블로 팅 <ol><li> P.에서 schizont 추출물의 5 μl를 추가 원충은 대장균 2㎕의 재조합 Rhop-3 단백질 (31)을 발현하는 재조합 단백질의 5 μL 튜브를 분리하는 친화 법을 이용 2 단계 및 시험 관내 인간 발현 시스템에서 1 단계와 단백질 제품의 10 μL로 정제하여 표현. </li&gt; <li> 용해 된 단백질 시료를 만들기 위해 20 μL의 최종 볼륨에 대한 각각의 튜브에 전기 영동 샘플 버퍼 포함 머 캅토 에탄올을 추가합니다. 2 분 동안 튜브를 끓인다. </li><li> 단백질을 분리하기 위해 10 % SDS-PAGE 젤 상에 가용화 된 단백질 시료를 적재. </li><li> 2 시간 반 건조 웨스턴 블로 팅 챔버에서 젤 당 35mA 전류에서 전기 영동에 의해 니트로 셀룰로오스 종이 (NCP)에 대한 SDS-PAGE 젤에서 분리 된 단백질을 전송합니다. </li><li> 2 % 무 지방 우유와 함께 전송 다음 블록의 NCP. </li><li> 품어 1 희석 한 다음 클론 항체와의 NCP를 차단 : 웨스턴 블롯을 수행하기 위해 2 % 우유 (100); 토끼 항체 (P)에 대한 특정 # 676 (21) 원충 merozoite rhoptries, P. 20 특정 마우스 항체 yoelii 및 P. 피에 대한 특정 berghei의 merozoite의 rhoptries, 항혈청의 # 685 마우어 특정 원충 parasitophorous 공포 단백질, 세라 (세린 풍부한 항원) (22)와 항체217;의 갈라진 단백질 PfMC-2TM (28). </li><li> 1도의 NCP을 품어 : 100 희석 정상 마우스와 토끼의 혈청 및 SP2 골수종 세포에서 소비 배양 상청 (SCS)와 같은 부정적인 컨트롤을. </li><li> 4 ºC O / N에서 항체와 컨트롤의 NCP를 품어. </li><li> 오 씻을의 NCP 배는 버퍼와 고추 냉이 퍼 옥시 다제 (HRP)에 결합 종 특정 차 항체와의 NCP를 품어 1 희석 : 2 % 우유 (1000). </li><li> 오 버퍼와 세척의 NCP 4 배. 인큐베이션은 발색 용액의 NCP 세정 + B (용액 A : 버퍼 1X 블롯 50ml를 추가하고 H 2 O (2)의 30 μL; 용액 B는 메탄올 10 ㎖ 및 3- 클로로 나프톨 30mg을 추가) 30 어둠 속에서 분. 비색 웨스턴 블롯 결과를 분석합니다. </li></ol>

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Y., Rio, D., Fujioka, H., Aikawa, M., Yang, J. C., Yakubu, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+of+merozoite+rhoptries,+identification+of+novel+rhoptry+associated+proteins+from+P.+yoelii.,+P.+chabaudi.,+P.+berghei.+and+conserved+interspecies+reactivity+of+organelles+and+proteins+with+P.+falciparum.+rhoptry-specific+antibodies.">Isolation of merozoite rhoptries, identification of novel rhoptry associated proteins from P. yoelii., P. chabaudi., P. berghei. and conserved interspecies reactivity of organelles and proteins with P. falciparum. rhoptry-specific antibodies.</a> Exp Parasitol. 89 (3), 271-284 (1998).</li><li>Sam-Yellowe, T. Y., Fujioka, H., Masamichi, A., Messineo, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Plasmodium+falciparum.+rhoptry+proteins+of+140/130/110kd+(Rhop-H)+are+located+in+an+electron+lucent+compartment+in+the+neck+of+the+rhoptries.">Plasmodium falciparum. rhoptry proteins of 140/130/110kd (Rhop-H) are located in an electron lucent compartment in the neck of the rhoptries.</a> J Euk Microbial. 42 (3), 224-231 (1995).</li><li>Sam-Yellowe, T. Y., Hishashi, F., Masamichi, A., Messineo, D. G., Leash, A. M., Hall, T., Drazba, J. A., Ndengele, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+Organization+and+cross+linking+analysis+of+the+Plasmodium+falciparum+erythrocyte+binding+proteins+Rhop-H+and+SERA.">Molecular Organization and cross linking analysis of the Plasmodium falciparum erythrocyte binding proteins Rhop-H and SERA.</a> J Protozool. Res. 10 (3), 128-154 (2000).</li><li>Sam-Yellowe, T. Y., Shio, H., Perkins, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Secretion+of+Plasmodium+falciparum.+rhoptry+protein+into+plasma+membrane+of+host+erythrocytes.">Secretion of Plasmodium falciparum. rhoptry protein into plasma membrane of host erythrocytes.</a> J Cell Biol. 106 (5), 1507-1513 (1988).</li><li>Sundaresh, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+humoral+immune+responses+in+protein+microarrays+using+DNA+microarray+data+analysis+techniques.">Identification of humoral immune responses in protein microarrays using DNA microarray data analysis techniques.</a> Bioinformatics. 22 (14), 1760-1766 (2006).</li><li>Terpe, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Overview+of+bacterial+expression+systems+for+heterologous+protein+production:+from+molecular+and+biochemical+fundamentals+to+commercial+systems.">Overview of bacterial expression systems for heterologous protein production: from molecular and biochemical fundamentals to commercial systems.</a> Appl. Microbiol. Biotechnol. 72 (2), 211-222 (2006).</li><li>Trager, W., Jensen, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+malaria+parasites+in+continuous+culture.">Human malaria parasites in continuous culture.</a> Science. 193 (4254), 673-675 (1976).</li><li>Tsarukyanova, I., Drazba, J. A., Fujioka, H., Yadav, S., Sam-Yellowe, T. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Proteins+of+the+Plasmodium+falciparum.+two+transmembrane+Maurer&#8217;s+cleft+protein+family,+PfMC-2TM+and+the+130+kDa+Maurer&#8217;s+cleft+protein+define+different+domains+of+the+infected+erythrocyte+intramembranous+network.">Proteins of the Plasmodium falciparum. two transmembrane Maurer&#8217;s cleft protein family, PfMC-2TM and the 130 kDa Maurer&#8217;s cleft protein define different domains of the infected erythrocyte intramembranous network.</a> Parasitol Res. 104 (4), 875-891 (2009).</li><li>Tsuboi, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Wheat+germ+cell-free+system-based+production+of+malaria+proteins+for+discovery+of+novel+vaccine+candidates.">Wheat germ cell-free system-based production of malaria proteins for discovery of novel vaccine candidates.</a> Infect. Immun. 76 (4), 1702-1708 (2008).</li><li>Tsuboi, T., Takeo, S., Sawasaki, T., Torii, M., Endo, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+efficient+approach+to+the+production+of+vaccines+against+the+malaria+parasite.">An efficient approach to the production of vaccines against the malaria parasite.</a> Methods in Mol. Biol. 607, 73-83 (2010).</li><li>Wang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+versatile+protein+microarray+platform+enabling+antibody+profiling+against+denatured+proteins.">A versatile protein microarray platform enabling antibody profiling against denatured proteins.</a> Proteomics Clin. Appl. 7 (5-6), 378-383 (2013).</li><li>Wang, T., Fujioka, H., Drazba, J. A., Sam-Yellowe, T. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rhop-3+protein+conservation+among+Plasmodium.">Rhop-3 protein conservation among Plasmodium.</a> species and induced protection against lethal. 99 (3), 238-252 (2006).</li><li>Yadavalli, R., Ledger, C., Sam Yellowe, T. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vitro+human+cell+free+expression+for+synthesis+of+malaria+proteins.">In vitro human cell free expression for synthesis of malaria proteins.</a> Parasitol Res. 111 (6), 2461-2465 (2012).</li><li>Machida, K., Masutan, M., Imataka, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protein+Synthesis+in+vitro.:+Cell-Free+Systems+Derived+from+Human+Cells.">Protein Synthesis in vitro.: Cell-Free Systems Derived from Human Cells.</a> Intech. , (2012).</li><li>Bradford, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+rapid+and+sensitive+method+for+the+quantification+of+microgram+quantities+of+protein+utilizing+the+principle+of+protein-dye+binding.">A rapid and sensitive method for the quantification of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding.</a> Anal Biochem. 72, 248-254 (1976).</li></ol>

We do not have any competing financial interests in this study.

체외 인간 세포 무료 발현 시스템 및 정제에 두 단계를 사용하여 단백질을 성공적으로 표현 중요한 단계는 다음과 같습니다 1) 성공적으로 증폭 및 pT7CFE-CHis 플라스미드 벡터로 유전자의 복제; 2) 30 ℃로 RNA를 전사; 의 RNAse 억제제의 존재하에 30 ℃에서 단백질 3) 번역; 4) 폴리 클로 날 및 모노클로 날 항체를 사용하여 수지 Ni 및 5로 코팅 된 비드)에 대한 웨스턴 블롯 분석 결과를 이용하여 ?...

말라리아 연구에서 원핵 또는 진핵 세포 기반 시스템을 사용하여 면역 원성 단백질의 발현 도전 남아있다. 변형체 게놈과 알 수없는 포스트 번역 메커니즘 14,7의 AT의 풍요 로움은 항체 생산 및 백신 연구에 적절하게 접어 면역 원성 단백질을 획득과 관련된 어려움에 기여한다. 대장균 등의 원핵 시스템은 재조합 단백질 발현을 위해 사용되어왔다. 원핵 생물 시스템은, 효과적인 저렴한 비용으로 재조합 단백질의 높은 수율을 생산 여러 클로닝 벡터를 가지고있다. E. 호스트 대장균 세포는 변형이 용이하고 신속하게 세포 성장. 그러나, 이러한 시스템은 원핵 아미노산 치환, 번역 후 변형, 봉입체 (24) 내의 오염, 제품 및 이종 재조합 단백질의 축적의 위험 부족 등 한계가있다. 안에Mehlin 등의 알에 의해 연구. (2006) 1000 오픈 리딩 프레임 (ORF)을 표현 하였다. 발현 된 단백질의 약 7 %가 용해 (14)이었다. 관찰 불용성 유전자의 바이어스 특성 및 풍부한 게놈 14의 변형체로 이상적으로 사용되는 코돈 고주파 때문이다. 이 문제를 극복하기위한 대안적인 전략은 플라스미드 또는 희귀 코돈 또는 3 주파수 일치 코돈 인식의 tRNA를 포함하는 숙주 세포를 사용하여 개발되었다. 비록 이러한 최적화를 수행 한 후, 단백질의 매우 작은 부분, 수용성 활성 면역 원성 및 14로 표현된다. 무 세포 발현 시스템은 리보솜, 개시 요인, 신장 요인 (번역 인자)의 tRNA 및 아미노 아실 tRNA의 합성 효소 등의 전사 및 번역에 필요한 모든 구성 요소가 포함되어 있습니다. 두 전사 및 번역 반응은 한 단계 절차 11,29에 결합된다. transcrimRNA의 적당량은 상이한 튜브 11,29 병진 기계와 함께 배양하기 전에 ption 반응 관에서 수행된다. 이러한 방법 변형체 SP. 단백질 발현에 성공하지만, 주요 단점은 약 22 시간이며 29 단백질 발현을위한 시간의 길이이다. 또한, 프로토콜들 (29)에 포함 용품의 고가 성분 제제에서 노동 집약적 파쇄의 제제와의 불일치는, 이러한 시스템은 얻기 어려운 만든다. 무 세포 발현 시스템의 개발을위한 연구의 주요 초점은 빠른 유전자 변형, 높은 농도 및 정직 해물 준비 1 빠른 수율 등의 요인에 따라 달라집니다. 효모, 포유 동물 세포주, 배큘로 바이러스 매개 된 발현 시스템, 테트라 하이 메나의 thermophilia, Dictyostelium의 discoideum 기생 발현 시스템 SU 진핵 시스템리 슈만 편모충 같은 CH 재조합 단백질 발현 7에 사용되어왔다. 진핵 시스템 계통 관계를 공유하고, 따라서 또한 글리코 실화, 아 실화, 이황화 결합 형성, 샤페론 상호 작용, 단백질 분해 및 서브 셀룰러 구획화 등의 특성을 공유한다. 진핵 생물의 단백질 분비 이벤트는 축적을 방지하고 발현 시스템 (13)에 대한 독성을 감소시킨다. 그들은 대규모 단백질 발현 및 높은 수율을 얻는 4에 적합한 효모 시스템을 사용하는 것이 바람직하다. 두 P. 원충의 단백질 PfCP-29과 Pvs25는 효모 시스템 (4)를 사용하여 제작되었다. 그러나, 대부분의 단백질의 합성에 중요한 결점이 불규칙 N과 O 글리코 실화 패턴, 부적절한 폴딩과 그 나라의 형태 4에서 단백질을 절단했다. 재조합 단백질의 합성을위한 포유 동물 세포의 사용은 노동 집약적이며 expen되고안정적인 재조합 세포주 4 유지 시브. 따라서, 포유 동물 세포는 단백질 시그널링 단백질 상호 작용 및 기생충 호스트 상호 작용 분석을 위해 한정되고, 또한 DNA 백신 4를 테스트. 본원에 기술 된 인간 DNA와 mRNA의 생체 외 단백질 발현 무 세포계는 3 시간에 단백질을 발현하는 헬라 세포 유래 포유류 기반 시스템이다. 단백질 식별 및 정화를 촉진 C- 말단 태그를 pT7CFE1-cHis 발현 벡터를 사용하여 표현했다. 헬라 기반 시스템함으로써 번역 시스템의 효율 향상, 번역 개시 인자 및 번역 조절로 보충된다. 단백질은 빠르게 번역 스크리닝 검증 및 다양한 면역 및 구조 (15) 애플리케이션에서 사용하기 위해 처리 될 수있다. 밀 배아와 토끼 망상과 같은 진핵 세포 - 표현의 자유 시스템은 현재 VAR의 표현에 사용되는변형체 단백질 11,29 포함 빚을내는 진핵 세포 단백질. 또한, E. 대장균 계 무 세포 시스템은 또한 진핵 단백질 발현을 위해 사용된다 (11). 표 1은 시스템의 기능뿐만 아니라 단백질 발현 시스템을 사용의 용이성을 비교함으로써 다른 무 세포 발현 시스템을 요약 한 것이다. 다른 사람들에 비해 인간의 무 세포계 포스트 공동 번역 후 변형을 수행 할 수있는 능력을 보유하고 덜 비싸다. 코돈 최적화가 가능하며, 모든 반응은 3 시간으로 수행 될 수있다. 헬라 시스템은 실험실 설정에서 단백질 합성을위한 번역 시스템에 이상적이다. 다른 무 세포 시스템에 비해 인간의 무 세포 발현 시스템의 큰 장점은 다른 기관 및 조직에서 유래 된 여러 세포주의 이용이다. 셀 무료 시스템의 여러 종류는 셀 라인에 따라 설계 할 수있다. 추출물포유 동물 세포 유래의 S는 다른 무 세포 발현 시스템보다 많은 단백질을 합성하기 위해 더 높은 효율을 갖는다. 이 무 세포 발현 시스템은 또한 마이크로 어레이 (30)로 진단 및 단백질 특성 애플리케이션에 사용될 수있다. 인기 인 HeLa 세포주는 가장 널리 단백질 33의 발현을 수행하기 위해 사용된다. 된 HeLa 세포주에서 소포체는 번역 후 변형 글리코 실화 활성 (33)의 부재를 초래 낙후이다. 그러나,이 시스템은 또한 글리코 실화 변형체 포스트 번역 변형 29 부족으로 변형체 단백질 합성에 유리할 것으로 생각된다. 헬라 세포 자유로운 전사 번역 프로토콜 저렴 수행하기 쉬운 단백질 정제 및 하류 어플리케이션을위한 준비, 90 분으로 표현 될 수있다.

<table><tbody><tr><td>2-step &lt;em&gt;in vitro&lt;/em&gt; human cell free expression system</td><td>Thermo Fisher</td><td>88856</td><td>Discontinued. Always store at -80 &amp;deg;C. Do not thaw in warm water</td></tr><tr><td>1-step &lt;em&gt;in vitro&lt;/em&gt; coupled translation system</td><td>Thermo fischer</td><td>88860</td><td>Always store at -80 &amp;deg;C. Do not thaw in warm water</td></tr><tr><td>ProBond Purification system</td><td>Invitrogen</td><td>K850-01</td><td>Store at RT</td></tr><tr><td>Probond Nickel-Chelating Resin</td><td>Invitrogen</td><td>R801-01</td><td>Store at 4&lt;sup&gt;o&lt;/sup&gt;C.</td></tr><tr><td>A+ Human Blood</td><td>Interstate Blood Bank</td><td></td><td>Store at 4 &amp;deg;C.</td></tr></tbody></table>

hela based cell free expression systems for expression of plasmodium rhoptry proteins

말라리아는 중요한 글로벌 이환율과 사망률을 발생합니다. 어떤 일상적인 백신은 현재 사용할 수 없습니다. 백신의 부족에 대한 주요한 이유 중 하나는 적합한 백신 후보를 식별하는 도전이다. 말라리아 단백질은 원핵 생물과 진핵 세포 기반 발현 시스템이 제대로 감소 면역 원성에 이르는 부적절한 폴딩, 일반적으로 불용성 당화 및 겪게된다 사용하여 표현. 밀 배아, 토끼 망상 적혈구 용 해물 및 대장균 파쇄 무 세포 발현 시스템은 현재 말라리아 단백질의 발현을 위해 사용된다. 그러나, 발현 시간과 단백질의 부적절한 당화의 길이는 여전히 과제로 남아. 우리는 &quot;시험 관내 인간 무 세포 발현 시스템&quot;이라 헬라 계 무 세포 발현 시스템을 이용하여 시험 관내에서 변형체 단백질의 발현을 보여준다. 2 헬라 세포 기반 표현의 자유 시스템은 75 분, transcrib의 3 μL에서의 mRNA를 전사ED의 mRNA는 90 분에 단백질을 변환하기에 충분하다. 1 단계의 발현 시스템은 전사 및 번역에 결합 발현 시스템이고; 전사 및 공동 번역은 3 시간에 발생합니다. 프로세스는 추가적인 에너지를 제공하여 6 시간 동안 연장 될 수있다. 2 단계 발현 시스템에서 mRNA를 먼저 전사 된 후 단백질 발현을위한 번역, 혼합 하였다. 우리는 말라리아 단백질을 표현하는 방법에 대해 설명합니다; 소수성 PF3D7_0114100 마우어의 갈라진 - 2 트랜스 (PfMC-2TM) 단백질, 친수성 ​​PF3D7_0925900 단백질 및 헬라 계 무 세포 발현 시스템을 이용하여 단백질을 함유 PF3D7_1361800 딜 반복. 단백질은 2 단계 및 1 단계 식 전략을 이용한 마이크로 부피로 표현된다. 친 화성 정제 방법이 또한 기재되어있는 시험 관내 인간 무 세포 발현 시스템을 이용하여 발현 된 단백질의 25 μL를 정화한다. 단백질의 수율은 브래드 포드 분석에 의해 결정되고 표현정제 된 단백질은 웨스턴 블롯 분석에 의해 확인 될 수있다. 표현 재조합 단백질은 면역, 면역 분석 및 단백질 서열 분석에 사용될 수있다.

특정 항체와의 반응성을 통해 발현 된 재조합 단백질의 유효성이 발현 된 단백질의 적당한 폴딩을 확인하는 중요한 첫 단계이다. 재조합 말라리아 단백질은 하나의 단계 및 시험 관내 인간 세포 무료 발현 시스템의 두 단계를 사용하여 표현 하였다. 재조합 단백질 정제 니켈 킬레이트 친 화성 방법입니다. 우리는 다음 SDS-PAGE 분리 된 재조합 단백질의 서쪽 블로 팅에서 전체 merozoite의 rhoptries에 대?...

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HeLa Based Cell Free Expression Systems for Expression of Plasmodium Rhoptry Proteins

셀 기반 시스템에서 말라리아 단백질의 발현은 도전 남아있다. 우리는 HeLa 세포에서 말라리아 재조합 rhoptry 단백질을 표현하는 두 단계 및 (체외 번역) 한 단계 IVT 세포 무료 발현 시스템을 보여줍니다. 우리 rhoptry 단백질을 정제하는 니켈 계 수지 친화 정제 시스템을 사용한다.

의 발현에 대한 헬라 세포를 기반으로 무료 발현 시스템<em&gt; 변형체</em&gt; Rhoptry 단백질

Malaria causes significant global morbidity and mortality. No routine vaccine is currently available. One of the major reasons for lack of a vaccine is ...

hela-based-cell-free-expression-systems-for-expression-plasmodium

Research

JoVE Journal

Biology

HeLa Based Cell Free Expression Systems for Expression of Plasmodium Rhoptry Proteins

12.0K 조회수.  Cleveland State University.  셀 기반 시스템에서 말라리아 단백질의 발현은 도전 남아있다. 우리는 HeLa 세포에서 말라리아 재조합 rhoptry 단백질을 표현하는 두 단계 및 (체외 번역) 한 단계 IVT 세포 무료 발현 시스템을 보여줍니다. 우리 rhoptry 단백질을 정제하는 니켈 계 수지 친화 정제 시스템을 사용한다. 

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Modifying Baculovirus Expression Vectors to Produce Secreted Plant Proteins in Insect Cells

It has been a challenge for scientists to express recombinant secretory eukaryotic proteins for structural and biochemical studies. The baculovirus-mediated insect cell expression system is one of the systems used to express recombinant eukaryotic secretory proteins with some post-translational modifications. The secretory proteins need to be routed through the secretory pathways for protein glycosylation, disulfide bonds formation, and other post-translational modifications. To improve the existing insect cell expression of secretory plant proteins, a baculovirus expression vector is modified by the addition of either a GP67 or a hemolin signal peptide sequence between the promoter and multiple-cloning sites. This newly designed modified vector system successfully produced a high yield of soluble recombinant secreted plant receptor proteins of Arabidopsis thaliana. Two of the expressed plant proteins, the extracellular domains of Arabidopsis TDR and PRK3 plasma membrane receptors, were crystallized for X-ray crystallographic studies. The modified vector system is an improved tool that can potentially be used for the expression of recombinant secretory proteins in the animal kingdom as well.

Here, we present the protocols for utilizing the insect cell and baculovirus protein expression system to produce large quantities of plant secreted proteins for protein crystallization. A baculovirus expression vector has been modified with either GP67 or insect hemolin signal peptide for plant protein secretion expression in insect cells.

식물 단백질 곤충 세포에서 분 비 생산 잠재 식 벡터를 수정

It has been a challenge for scientists to express recombinant secretory eukaryotic proteins for structural and biochemical studies. The ...

연구

생화학

High Yield Purification of Plasmodium falciparum Merozoites For Use in Opsonizing Antibody Assays

Plasmodium falciparum merozoite antigens are under development as potential malaria vaccines. One aspect of immunity against malaria is the removal of free merozoites from the blood by phagocytic cells. However assessing the functional efficacy of merozoite specific opsonizing antibodies is challenging due to the short half-life of merozoites and the variability of primary phagocytic cells. Described in detail herein is a method for generating viable merozoites using the E64 protease inhibitor, and an assay of merozoite opsonin-dependent phagocytosis using the pro-monocytic cell line THP-1. E64 prevents schizont rupture while allowing the development of merozoites which are released by filtration of treated schizonts. &#160;Ethidium bromide labelled merozoites are opsonized with human plasma samples and added to THP-1 cells. Phagocytosis is assessed by a standardized high throughput protocol. Viable merozoites are a valuable resource for assessing numerous aspects of P. falciparum biology, including assessment of immune function. Antibody levels measured by this assay are associated with clinical immunity to malaria in naturally exposed individuals. The assay may also be of use for assessing vaccine induced antibodies. &#160;

High Yield Purification of Plasmodium falciparum Merozoites For Use in Opsonizing Antibody Assays

Measuring antibody function is key to understanding immunity to Plasmodium falciparum malaria. This method describes the purification of viable merozoites, and measurement of opsonization-dependent phagocytosis by flow cytometry.

높은 수익률 정화<em&gt; 변형체 falciparum의</emOpsonizing 항체 분석 실험에 사용하기 위해&gt; Merozoites

Plasmodium falciparum merozoite antigens are under development as potential malaria vaccines. One aspect of immunity against malaria is the removal of ...

면역학 및 감염병학

Methods to Investigate the Regulatory Role of Small RNAs and Ribosomal Occupancy of Plasmodium falciparum

The genetic variation responsible for the sickle cell allele (HbS) enables erythrocytes to resist infection by the malaria parasite, P. falciparum. The molecular basis of this resistance, which is known to be multifactorial, remains incompletely understood. Recent studies found that the differential expression of erythrocyte microRNAs, once translocated into malaria parasites, affect both gene regulation and parasite growth. These miRNAs were later shown to inhibit mRNA translation by forming a chimeric RNA transcript via 5&#39; RNA fusion with discreet subsets of parasite mRNAs. Here, the techniques that were used to study the functional role and putative mechanism underlying erythrocyte microRNAs on the gene regulation and translational potential of P. falciparum, including the transfection of modified synthetic microRNAs into host erythrocytes, will be detailed.&#160; Finally, a polysome gradient method is used to determine the extent of translation of these transcripts. Together, these techniques allowed us to demonstrate that the dysregulated levels of erythrocyte microRNAs contribute to cell-intrinsic malaria resistance of sickle erythrocytes.

Methods to Investigate the Regulatory Role of Small RNAs and Ribosomal Occupancy of Plasmodium falciparum

Human microRNAs translocate from host erythrocytes to Plasmodium falciparum parasites. Here, the techniques used to transfect synthetic microRNAs into host erythrocytes and isolate all RNAs from P. falciparum are described. In addition, this paper will detail a method of polysome isolation in P. falciparum to determine the ribosomal occupancy and translational potential of parasite transcripts.

방법은 작은 RNA를과의 리보솜 점유 규제 역할을 조사하기 위해<em&gt; 말라리아 원충</em

The genetic variation responsible for the sickle cell allele (HbS) enables erythrocytes to resist infection by the malaria parasite, P. falciparum. The ...

A Convenient and General Expression Platform for the Production of Secreted Proteins from Human Cells

Recombinant protein expression in bacteria, typically E. coli, has been the most successful strategy for milligram quantity expression of proteins. However, prokaryotic hosts are often not as appropriate for expression of human, viral or eukaryotic proteins due to toxicity of the foreign macromolecule, differences in the protein folding machinery, or due to the lack of particular co- or post-translational modifications in bacteria. Expression systems based on yeast (P. pastoris or S. cerevisiae) 1,2, baculovirus-infected insect (S. frugiperda or T. ni) cells 3, and cell-free in vitro translation systems 2,4 have been successfully used to produce mammalian proteins. Intuitively, the best match is to use a mammalian host to ensure the production of recombinant proteins that contain the proper post-translational modifications. A number of mammalian cell lines (Human Embryonic Kidney (HEK) 293, CV-1 cells in Origin carrying the SV40 larget T-antigen (COS), Chinese Hamster Ovary (CHO), and others) have been successfully utilized to overexpress milligram quantities of a number of human proteins 5-9. However, the advantages of using mammalian cells are often countered by higher costs, requirement of specialized laboratory equipment, lower protein yields, and lengthy times to develop stable expression cell lines. Increasing yield and producing proteins faster, while keeping costs low, are major factors for many academic and commercial laboratories.
Here, we describe a time- and cost-efficient, two-part procedure for the expression of secreted human proteins from adherent HEK 293T cells. This system is capable of producing microgram to milligram quantities of functional protein for structural, biophysical and biochemical studies. The first part, multiple constructs of the gene of interest are produced in parallel and transiently transfected into adherent HEK 293T cells in small scale. The detection and analysis of recombinant protein secreted into the cell culture medium is performed by western blot analysis using commercially available antibodies directed against a vector-encoded protein purification tag. Subsequently, suitable constructs for large-scale protein production are transiently transfected using polyethyleneimine (PEI) in 10-layer cell factories. Proteins secreted into litre-volumes of conditioned medium are concentrated into manageable amounts using tangential flow filtration, followed by purification by anti-HA affinity chromatography. The utility of this platform is proven by its ability to express milligram quantities of cytokines, cytokine receptors, cell surface receptors, intrinsic restriction factors, and viral glycoproteins. This method was also successfully used in the structural determination of the trimeric ebolavirus glycoprotein 5,10.
In conclusion, this platform offers ease of use, speed and scalability while maximizing protein quality and functionality. Moreover, no additional equipment, other than a standard humidified CO2 incubator, is required. This procedure may be rapidly expanded to systems of greater complexity, such as co-expression of protein complexes, antigens and antibodies, production of virus-like particles for vaccines, or production of adenoviruses or lentiviruses for transduction of difficult cell lines.

In the post-human genomics era, the availability of recombinant proteins in native conformations is crucial to structural, functional and therapeutic research and development. Here, we describe a test- and large-scale protein expression system in human embryonic kidney 293T cells that can be used to produce a variety of recombinant proteins.

인간의 세포에서 분비 단백질의 생산을위한 편리하고 일반적인 표현 플랫폼

Recombinant protein expression in bacteria, typically E. coli, has been the most successful strategy for milligram quantity expression of proteins. ...

생물학

Analysis of Single-cell Gene Transcription by RNA Fluorescent In Situ Hybridization (FISH)

Adhesion of Plasmodium falciparum infected erythrocytes (IE) to human endothelial receptors during malaria infections is mediated by expression of PfEMP1 protein variants encoded by the var genes.
The haploid P. falciparum genome harbors approximately 60 different var genes of which only one has been believed to be transcribed per cell at a time during the blood stage of the infection. How such mutually exclusive regulation of var gene transcription is achieved is unclear, as is the identification of individual var genes or sub-groups of var genes associated with different receptors and the consequence of differential binding on the clinical outcome of P. falciparum infections. Recently, the mutually exclusive transcription paradigm has been called into doubt by transcription assays based on individual P. falciparum transcript identification in single infected erythrocytic cells using RNA fluorescent in situ hybridization (FISH) analysis of var gene transcription by the parasite in individual nuclei of P. falciparum IE1.
Here, we present a detailed protocol for carrying out the RNA-FISH methodology for analysis of var gene transcription in single-nuclei of P. falciparum infected human erythrocytes. The method is based on the use of digoxigenin- and biotin- labeled antisense RNA probes using the TSA Plus Fluorescence Palette System2 (Perkin Elmer), microscopic analyses and freshly selected P. falciparum IE. The in situ hybridization method can be used to monitor transcription and regulation of a variety of genes expressed during the different stages of the P. falciparum life cycle and is adaptable to other malaria parasite species and other organisms and cell types.

Analysis of Single-cell Gene Transcription by RNA Fluorescent In Situ Hybridization FISH

Fluorescent in situ hybridization (FISH) to identify mRNA transcripts in individual cells allows analysis of polygenic activity such as the simultaneous transcription of more than one member of the var multigene family in Plasmodium falciparum infected erythrocytes 1. The technique is adaptable and can be used on different types of genes, cells and organisms.

RNA 형광하여 단일 세포 유전자 전사의 분석<em&gt; 현장에서</em&gt; 하이브리드 (물고기)

Adhesion of Plasmodium falciparum infected erythrocytes (IE) to human endothelial receptors during malaria infections is mediated by expression of PfEMP1 ...

Generating Genetically Modified Plasmodium berghei Sporozoites

Malaria is a deadly disease caused by the parasite Plasmodium and is transmitted through the bite of female Anopheles mosquitoes. The sporozoite stage of Plasmodium deposited by mosquitoes in the skin of vertebrate hosts undergoes a phase of mandatory development in the liver before initiating clinical malaria. We know little about the biology of Plasmodium development in the liver; access to the sporozoite stage and the ability to genetically modify such sporozoites are critical tools for studying the nature of Plasmodium infection and the resulting immune response in the liver. Here, we present a comprehensive protocol for the generation of transgenic Plasmodium berghei sporozoites. We genetically modify blood-stage P. berghei and use this form to infect Anopheles mosquitoes when they take a blood meal. After the transgenic parasites undergo development in the mosquitoes, we isolate the sporozoite stage of the parasite from the mosquito salivary glands for in vivo and in vitro experimentation. We demonstrate the validity of the protocol by generating sporozoites of a novel strain of P. berghei expressing the green fluorescent protein (GFP) subunit 11 (GFP11), and show how it could be used to investigate the biology of liver-stage malaria.

Generating Genetically Modified Plasmodium berghei Sporozoites

Malaria is transmitted through inoculation of the sporozoite stage of Plasmodium by infected mosquitoes. Transgenic Plasmodium has allowed us to understand the biology of malaria better and has contributed directly to malaria vaccine development efforts. Here, we describe a streamlined methodology to generate transgenic Plasmodium berghei sporozoites.

유전자 변형 Plasmodium berghei Sporozoites 생성

Malaria is a deadly disease caused by the parasite Plasmodium and is transmitted through the bite of female Anopheles mosquitoes. The sporozoite stage of ...

Recombinant Protein Expression for Structural Biology in HEK 293F Suspension Cells: A Novel and Accessible Approach

The expression and purification of large amounts of recombinant protein complexes is an essential requirement for structural biology studies. For over two decades, prokaryotic expression systems such as E. coli have dominated the scientific literature over costly and less efficient eukaryotic cell lines. Despite the clear advantage in terms of yields and costs of expressing recombinant proteins in bacteria, the absence of specific co-factors, chaperones and post-translational modifications may cause loss of function, mis-folding and can disrupt protein-protein interactions of certain eukaryotic multi-subunit complexes, surface receptors and secreted proteins. The use of mammalian cell expression systems can address these drawbacks since they provide a eukaryotic expression environment. However, low protein yields and high costs of such methods have until recently limited their use for structural biology. Here we describe a simple and accessible method for expressing and purifying milligram quantities of protein by performing transient transfections of suspension grown HEK (Human Embryonic Kidney) 293F cells.

The expression of recombinant proteins by mammalian systems is becoming an attractive method for producing protein complexes for structural biology. Here we present a simple yet highly efficient expression system using suspension grown mammalian cells to purify protein complexes for structural studies.

소설 및 액세스 접근 : 구조 HEK 293F 서스펜션 세포의 생물학에 대한 재조합 단백질 발현

The expression and purification of large amounts of recombinant protein complexes is an essential requirement for structural biology studies. For over two ...

<meta charset="utf8"></head><body>Leishmania translational extract(LTE) 생산을 위한 간소화된 프로토콜

Production and Optimization of LTE, a Leishmania tarentolae Derived Cell-Free Protein Expression System for Recombinant Protein Production

This protocol outlines the production and optimization of a eukaryotic Cell-Free Protein Expression System (CFPS) derived from the unicellular flagellate Leishmania tarentolae, referred to as Leishmania Translational Extract or LTE. Although this organism originally evolved as a parasite of geckos, it can be cultivated easily and inexpensively in flasks or bioreactors. Unlike Leishmania major, it is non-pathogenic to humans and does not require special laboratory precautions. Another advantage of using Leishmania for CFPS is that the addition of a single antisense oligonucleotide to the CFPS, targeting a conserved splice leader sequence on the 5'-end of all protein-coding RNAs, can suppress endogenous protein expression. We provide procedures for cell disruption and lysate processing, which have been simplified and improved compared to previous versions. These procedures start with simple flask cultures. Additionally, we explain how to introduce genetic information using vectors containing species-independent translation initiation sites (SITS) and how to perform straightforward batch optimization and quality control to ensure consistent protein expression quality.

<meta charset="utf8"></head><body>저자 스포트라이트: LTE 진핵생물 무세포 단백질 발현 시스템을 사용한 단백질 생산

Leishmania Translational Extract (LTE) is a eukaryotic cell-free protein expression system derived from the single-celled parasite, Leishmania tarentolae. This optimized protocol makes LTE simple and cost-effective to manufacture. It is suitable for various applications focused on the multiparallel expression and study of complex eukaryotic proteins and their interactions.

재조합 단백질 생산을 위한 Leishmania tarentolae 유래 Cell-Free 단백질 발현 시스템인 LTE의 생산 및 최적화

This protocol outlines the production and optimization of a eukaryotic Cell-Free Protein Expression System (CFPS) derived from the unicellular flagellate ...

의 발현에 대한 헬라 세포를 기반으로 무료 발현 시스템

요약

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식물 단백질 곤충 세포에서 분 비 생산 잠재 식 벡터를 수정

높은 수익률 정화

방법은 작은 RNA를과의 리보솜 점유 규제 역할을 조사하기 위해

인간의 세포에서 분비 단백질의 생산을위한 편리하고 일반적인 표현 플랫폼

RNA 형광하여 단일 세포 유전자 전사의 분석

유전자 변형 Plasmodium berghei Sporozoites 생성

소설 및 액세스 접근 : 구조 HEK 293F 서스펜션 세포의 생물학에 대한 재조합 단백질 발현

재조합 단백질 생산을 위한 Leishmania tarentolae 유래 Cell-Free 단백질 발현 시스템인 LTE의 생산 및 최적화

재조합 단백질 생산을 위한 Leishmania tarentolae 유래 Cell-Free 단백질 발현 시스템인 LTE의 생산 및 최적화

재조합 단백질 생산을 위한 Leishmania tarentolae 유래 Cell-Free 단백질 발현 시스템인 LTE의 생산 및 최적화