Name: repeated blood collection from tail vein of non-anesthetized rats with a vacuum blood collection system
Uploaded: 2017-12-10T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 12 s
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저자 게 아무 승인 있다.

모든 절차는 동물 관리 위원회의 Huazhong 대학의 과학 및 기술 (중국 우한)에 Tongji 의학 대학 위원회에 의해 승인 되었다. 원고는 도착에 따르면 준비 했다 (동물 연구: Vivo에서 실험의 보고) 지침6.
1입니다. 축산
<ol><li>Sprague-Dawley (SD) 쥐를 사용 하 여 (n = 20, 10 남성 8 주 오래 된, 261 291 g 무게 의미 = 272.85 ±9.07 g) 소의 실험 동물 센터 과학 기술 대학에서 관리 및 활용에 대 한 가이드에 따라 쥐를 유지 하 고 실험실 동물은 미국 국립 보건원 (NIH 간행물 링 돤 85 호-23, 개정 1996)에 의해 게시</li>
	<li>식품 및 식 수와 표준 조건 하에서 집. 계속 쥐 나무-면도 530 cm2 장에 침구. 각 감 금 소에 두 쥐 집. (마이크로 격리 또는 통풍이 caging) 룸 환경에 모든 새 장 열어</li>
	<li>실험 프로토콜에 관련 된 직원은 정기적으로 쥐를 처리할 확인 하십시오.</li>
	<li>21 ° C와 23 ° C 사이 실내 온도 유지 요금 일반 소금 다이어트 줄 (0.3 %NaCl) 연구를 통해.</li>
</ol>2. 혈액 수집 절차
참고: 진공 혈액 수집 시스템 및 구성 됩니다 이중 지적 바늘 [22 G (0.7 m m x 25 m m)], 플라스틱 홀더, 고무 마 개 (그림 1)와 진공 튜브 (2 mL)의 시리즈.
<ol><li>플라스틱 금지 홀더에 쥐를 놓고 어떤 보이는 흙 이나 배설물을 제거 하려면 따뜻한 (20-30 ° C) 물으로 꼬리를 세척 합니다. 보조 확장된 위치에 꼬리를 보유 하면서 70% 에탄올, 꼬리를 닦 고 취소 정 맥을 거 즈로 청소.</li>
	<li>위치에서 측면 꼬리 정 맥 (약 5mm) 중 하나에 22 G 나비 바늘 팁을 삽입 (그림 2) 약 20 °의 각도에서 꼬리의 끝에서 약 2-3 cm. 진공 혈액 컬렉션 튜브 (그림 3)에 나비 바늘의 고무 끝을 삽입 하 여 진공 컬렉션 튜브에 혈액을 수집 합니다. 참고: 최대 컬렉션 혈액 볼륨 1.2 mL7입니다.</li>
	<li>혈액 수집 후 바늘을 제거 하 고 부드럽게 혈액의 흐름을 중지 하려면 15-30 s 거 즈와 펑크 사이트에 압력을 적용 합니다. 그런 다음, 플라스틱 금지 홀더에서 쥐를 놓고 그것의 감 금 소에는 쥐를 반환.</li>
	<li>항 응고 제를 수집 혈장으로 EDTA를 포함 하는 튜브를 사용 합니다. 부드럽게 반전 튜브 여러 번 혈액 응고 제를 혼합 하 여 얼음 샘플을 수직으로 배치.</li>
	<li>혈액 샘플 컬렉션 튜브 플라스마 또는 혈 청을 10 분 2000 x g에서 냉장된 원심 분리기에 원심</li>
	<li>혈장/혈 청, 빨간색과 흰색 혈액 세포 층을 방해 하지 않도록 주의 복용의 압축을 풉니다. 혈액 혈 청 수집, 응고 제 없이 튜브를 사용 합니다. 두 가지 유형의 샘플 즉시 사용할 하거나 최대 1 년-80 ° C에 저장 될 수 있습니다. 참고: 성공적인 혈액 컬렉션 때마다 1.2 mL 혈액을 얻기로 정의 했다. 최대 펑크 시간 설정 3 재판에 전체 혈액 볼륨 세 번째 찔린 후 1.2 mL 보다 낮은 경우 정의 된 실패 한 혈액 컬렉션으로. 샘플링 기간 꼬리 정 맥 빵 꾸에서 혈 후 나비 바늘의 제거를 시작합니다.</li>
	<li>
2 주7이내 두 번 피를 수집 합니다.
	<ol>
<li>테스트 하 고이 방법의 타당성을 확인,이 혈액 컬렉션 프로토콜을 수행 하기 전에 두 학생 (초보자) 2 h에 대 한 훈련. 20 쥐를 사용 하 고 2 경험 있는 사람들 (실험 그룹)에 의해 10 쥐에서 그리고 2 의료 학생 들 (초급 그룹) 10 쥐에서 혈액을 그립니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. 통계 분석
<ol><li>평균값이 ± 표준 편차로 데이터 및 SPSS 통계 17 분석. Α 값이 0.05 선정 되었다, 따라서 p < 0.05 통계적으로 중요 하 게 고려 되었다.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Brown, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Blood+collection+from+the+tail+of+a+rat.">Blood collection from the tail of a rat.</a> Lab Anim (NY). 35 (8), 24-25 (2006).</li><li>Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Blood+sample+collection+in+small+laboratory+animals.">Blood sample collection in small laboratory animals.</a> J Pharmacol Pharmacother. 1 (2), 87-93 (2010).</li><li>Staszyk, C., Bohnet, W., Gasse, H., Hackbarth, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Blood+vessels+of+the+rat+tail:+a+histological+re-examination+with+respect+to+blood+vessel+puncture+methods.">Blood vessels of the rat tail: a histological re-examination with respect to blood vessel puncture methods.</a> Lab Anim. 37 (2), 121-125 (2003).</li><li>Lee, G., Goosens, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sampling+blood+from+the+lateral+tail+vein+of+the+rat.">Sampling blood from the lateral tail vein of the rat.</a> J. Vis. Exp. (99), (2015).</li><li>. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> WHO Guidelines on Drawing Blood: Best Practices in Phlebotomy WHO Guidelines Approved by the Guidelines Review Committee. , (2010).</li><li>Kilkenny, C., Altman, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improving+bioscience+research+reporting:+ARRIVE-ing+at+a+solution.">Improving bioscience research reporting: ARRIVE-ing at a solution.</a> Lab Anim. 44 (4), 377-378 (2010).</li><li>Diehl, K. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+good+practice+guide+to+the+administration+of+substances+and+removal+of+blood,+including+routes+and+volumes.">A good practice guide to the administration of substances and removal of blood, including routes and volumes.</a> J Appl Toxicol. 21 (1), 15-23 (2001).</li><li>Eder, J. M., Cutter, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+device+for+collecting+cord+blood.">A new device for collecting cord blood.</a> Obstet Gynecol. 86 (5), 850-852 (1995).</li><li>Reynolds, B. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+a+new+device+for+blood+sampling+in+cats+with+a+vacuum+tube+collection+system+-+plasma+biochemistry,+haematology+and+practical+usage+assessment.">Comparison of a new device for blood sampling in cats with a vacuum tube collection system - plasma biochemistry, haematology and practical usage assessment.</a> J Feline Med Surg. 9 (5), 382-386 (2007).</li><li>Wiwanitkit, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+blood+specimens+from+plain+and+gel+vacuum+blood+collection+tubes.">Comparison of blood specimens from plain and gel vacuum blood collection tubes.</a> J Med Assoc Thai. 84 (5), 723-726 (2001).</li><li>Wollowitz, A., Bijur, P. E., Esses, D., John Gallagher, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+butterfly+needles+to+draw+blood+is+independently+associated+with+marked+reduction+in+hemolysis+compared+to+intravenous+catheter.">Use of butterfly needles to draw blood is independently associated with marked reduction in hemolysis compared to intravenous catheter.</a> Acad Emerg Med. 20 (11), 1151-1155 (2013).</li></ol>

저자 공개할 게 없다

현재 보고서 쥐에서 배우기 쉬운 혈액 수집 방법을 설명합니다. 우리의 결과이 방법은 쥐에서 반복적으로 많은 양의 혈액을 수집에 대 한 가능을 보여주었다. 또한,이 방법은 단기 학습 곡선와 함께 쉽게 마스터 수 수 있습니다. 이 절차는 비 취 쥐에서 수행할 수 있습니다 고만 동물에 되도록 최소한의 스트레스.
혈액은 다양 한 위치에서 쥐에서 수집할 수 있습니다. 꼬리 정 맥 혈액 샘플링4우수한 위치 이다. 그러나, 그것은 항상 쉽지 않다를 쥐의 얇고 낮은 혈액 흐름 꼬리 정 맥에서 충분 한 혈액 볼륨. 진공 혈액 수집 시스템으로 매일 임상 연습에 있는 환자에서 혈액 샘플을 수집 하기 위해 사용 됩니다. 이 진공 혈액 수집 시스템은 오랜 시간8,,910에 대 한 환자와 연구 동물에서 사용 되었습니다. 실리콘 코팅된 내부 관 벽과 나비 바늘 진공 혈액 컬렉션 튜브가이 시스템에 의하여 이루어져 있었다. 그것은 진공 부정 압력 원리에 근거 했다 하 고 또한 오염 및 용 혈11의 기회를 감소 시키는 혈액 수집의 위험 없이 혈액의 연속 그림을 수 있습니다. 카 테 터에서 혈액 샘플의 볼륨은 약 0.3 mL. 꼬리 정 맥에서 바늘을 철수, 후 카 테 터에 차단 혈액 수집 진공 튜브 진공 때문에 흐름 것입니다. 이 메서드는 또한 작은 바늘 바늘의 사용 미만 100 g 무게 쥐에서 혈액을 수집 적용 됩니다.
이 혈액 수집 방법에는 여러 가지 장점이 있습니다. 이 절차만 되도록 최소한의 부상 쥐 혈 마 취약의 사용 없이 실행 될 수 있다, 따라서 혈액 샘플에는 스트레스 반응 및 마 취약의 영향을 피할 수 있습니다. 우리의 관측 보여주었다 쥐 절차 동안에 플라스틱 금지 홀더 조용 했다 고이 실험 동안 아무 죽음이 있었다. 둘째, 모든 하나는 혈액 컬렉션을 반복 또는 이틀 가능, 다양 한 연구 목적에 대 한 적절 한 볼륨으로 혈액의 자주 샘플링 수 있습니다. 마지막으로,이 메서드는 쉽게 배울 수 이며 쉽게 지배 되었다 초보자가 짧은 (2 시간) 학습 기간 후,이 보고서에서 실험 및 초급 그룹 사이 펑크 시간과 비슷한 성공률에 표시 된 대로. 이전 보고서에서 리 외. 쥐4의 측면 꼬리 정 맥에서 혈액 샘플링의 유사한 방법 설명. 우리의 방법은 보고 리 외 보다 간단 4 우리가 직접 삽입 바늘 바늘 꼬리 정 맥 그리고 튜브의 다른 쪽 끝에 직접 연결 되어 여분의 주사기의 사용과 혈액의 수동 포부 없이 고의 필요 없이 혈액을 수집 하기 위한 진공 튜브 ' 우유 ing' 혈액 흐름을 촉진 하기 위하여 정 맥. 이 닫힌 시스템 피를 수집 혈액 오염의 위험을 줄여줍니다. 플라스틱 금지 소유자의 사용 또한 쥐에는 스트레스를 감소 하 고 꼬리의 고정을 용이 하 게.
다음 두 단계는이 방법의 성공적인 응용 프로그램에 대 한 중요 합니다. 1) 꼬리 고 꼬리;의 움직임을 방지 2) 천천히 정 맥을 정 맥을 통해 펑크를 피하기 위해 정 맥에 바늘 바늘을 계속 20 °의 각도에서 찔린 합니다.
결론적으로, 쥐에서 채택 된 진공 혈액 수집 방법, 가능 하 고, 안전 하 고 쉽게 연습입니다. 이 메서드는 적절 한 혈액 볼륨 비 취 쥐에서 얻은 혈액의 자주 샘플링을 수 있습니다.

쥐에서 혈액 샘플링은 다양 한 실험 연구에 대 한 필요 합니다. 쥐에서 혈액 컬렉션에 대 한 기술은 펑크는 심장의, 복고풍 궤도 총, 경 정 맥, saphenous 정 맥, 꼬리 혈관, 경 동맥, 복 부 대동맥, 베 나 정 맥을 포함 한다. 대부분 기술 (제외 saphenous 정 맥 및 꼬리 혈관 빵 꾸) 마 취1,2필요합니다. 쥐 꼬리의 혈관은 정기적으로 혈액 샘플링 및 혈관 주입 구멍을. 따뜻한 물으로 꼬리, 치료 후 혈관 쥐 마 취3경우에 잘 열려진 조작에 적합 하 고 있습니다.
작은 실험실 동물2에서 혈액 샘플을 얻기 위해 새롭고 향상 된 기술 개발에도 불구 하 고 그것은 항상 쉽게 작은 동물에서 샘플링 하는 경우 충분 한 혈액을 얻을. 쥐의 꼬리 정 맥 혈액 샘플링4우수한 위치 이다. 그러나, 꼬리 정 맥은 얇은, 따라서 가끔 펑크 하드 이며 그것의 낮은 혈액 흐름으로 인해 충분 한 혈액을 얻을 하는 데 시간이 오래 걸릴 것 이라고. 혈액 컬렉션 튜브 진공 추출 시스템을 통해 매일 임상 연습에서 전형적인 방법은. 이 닫힌된 시스템 피 수집에 대 한 혈액에 직접 노출의 위험을 감소 하 고 단일 venipuncture5에서 여러 개의 샘플을 쉽게 했다. 현재 보고서에는 비 취 쥐 진공 추출 튜브 시스템을 사용 하 여 간단한 꼬리 정 맥 혈액 샘플링 방법을 설명 합니다. 이 방법은 쉽게 마스터 하 고 쥐에서 반복적으로 혈액의 큰 볼륨을 가져오는 데 사용할 수 있습니다.

<table><tbody><tr><td>a double-pointed needle</td><td>Shanghai Kang Nong medical instrument co., LTD, China</td><td>22G&amp;nbsp;</td><td>(0.7&amp;times;25mm)</td></tr><tr><td>vacuum tubes</td><td>Wuhan Zhi Yuan, medical science and technology co., LTD, China</td><td>2 ml</td><td></td></tr><tr><td>rat restraining holder&amp;nbsp;</td><td>Shanghai Kang Nong medical instrument co., LTD, China</td><td>250g rat hoder model</td><td></td></tr><tr><td>normal salt diet for rats</td><td></td><td></td><td>Rats received a normal salt diet (0.3% NaCl) throughout the study</td></tr><tr><td>SPSS software for statistical analysis</td><td>SPSS Inc,&amp;nbsp; Chicago; USA&amp;nbsp;</td><td>Version 17.0.&amp;nbsp;</td><td></td></tr></tbody></table>

repeated blood collection from tail vein of non-anesthetized rats with a vacuum blood collection system

혈액은 샘플링 위치 수에 쥐에서 수집할 수 있습니다. 예를 들어, 꼬리 정 맥 혈액 샘플링에 대 한 우수한 위치 이다. 그러나, 꼬리 정 맥은 얇은 펑크 때로는 어렵다. 또한, 꼬리 정 맥 낮은 혈액 흐름이 고 충분 한 혈액을 얻을 수 있는 긴 샘플링 시간을 요구 한다. 현재 보고서는 간단한 혈액 샘플링 방법을, 여기 쥐 비 취를 위해 사용 하는 환자에서 혈액 샘플을 얻기 위해 일반적으로 사용 되는 진공 혈액 수집 방법에 설명 합니다. 22 G 나비 바늘 팁 하나 약 20 °, 그리고 혈액의 각도에서 꼬리의 끝에서 약 2-3 cm는 버지니아에 나비 바늘의 고무 끝을 삽입 하 여 진공 컬렉션 튜브에 수집 된 측면 꼬리 정 맥에 삽입 된 cuum 혈액 컬렉션 튜브입니다. 현재 실험 결과 성공률은 실험적인 그룹에서 95%와 90% 초급 그룹에 표시 됩니다. 성공 속도 펑크 번 두 그룹 사이 유사 했다. 샘플링 기간 실험 그룹 초급 그룹에 비해 상당히 짧은 했다. 결론적으로, 비-마 취 쥐의 꼬리 정 맥에서 혈액을 순차적 샘플링에 대 한이 진공 혈액 수집 방법 이며 가능한 쉽게 배우기, 하 수도 역할을 통상 혈액 샘플링 기법을 사용 하는 다른 신뢰할 수 있는 대안 쥐입니다.

샘플링 기간, 몸 질량, 및 두 그룹의 혈액 컬렉션 볼륨 혈액은 각 그룹에서 2 주 이내에 두 번 10 쥐 (5 남성)에서 수집 되었다. 두 그룹의 평균 몸 질량 유사 했다 (272.00 ±9.66 g와 273.70 ±8.87 g). 실험 그룹 초급 그룹에 비해 상당히 짧은 했다 샘플링 기간 (3.28 ±0.83 분, p 대 2.77 ±0.53 분 < 0.05) (표 1).
성공 속도 두 그룹의 펑크 성공률은 실험적인 그룹에서 95% (19/20) 및 초보자 그룹에서 90% (18/20) (p > 0.05). 펑크 시간 두 그룹 사이 크게 다른 되지 않았습니다 (1.50 ±0.61 분 대 1.85 ± 0.75 분, p > 0.05) (표 2). 이 결과이 방법은 쉽게 배울 수 이며 기술 2 h에 대 한 훈련 후 마스터 수 나타냅니다.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55852/55852fig1.jpg"> 그림 1 : 2 mL 진공 혈액 컬렉션 튜브 (왼쪽), 22 G 나비 바늘 (센터), 플라스틱 금지 홀더 (오른쪽). <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/55852/55852fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55852/55852fig2.jpg"> 그림 2 : 바늘 팁 측면 꼬리 정 맥 (약 5 m m)에 위치에서 삽입 된 대략 20 °의 각도에서 꼬리의 끝에서 약 2-3 cm. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/55852/55852fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55852/55852fig3.jpg"> 그림 3 : 성공적인 venipuncture. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/55852/55852fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td colspan="5">실험 그룹</td>
			<td></td>
			<td colspan="5">초급 그룹</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>성별</td>
			<td>몸 무게 (g)</td>
			<td>수집 된 혈액 양 (mL)</td>
			<td>샘플링 기간 (분)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>성별</td>
			<td>몸 무게 (g)</td>
			<td>수집 된 혈액 양 (mL)</td>
			<td>샘플링 기간 (분)</td>
		</tr>
<tr>
<td>E1-1</td>
			<td>남성</td>
			<td>291</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.12</td>
			<td></td>
			<td>B1-1</td>
			<td>남성</td>
			<td>282</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.18</td>
		</tr>
<tr>
<td>E1-2</td>
			<td>남성</td>
			<td>291</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.73</td>
			<td></td>
			<td>B1-2</td>
			<td>남성</td>
			<td>282</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.18</td>
		</tr>
<tr>
<td>E2-1</td>
			<td>남성</td>
			<td>276</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.3</td>
			<td></td>
			<td>B2-1</td>
			<td>남성</td>
			<td>264</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.73</td>
		</tr>
<tr>
<td>E2-2</td>
			<td>남성</td>
			<td>276</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.37</td>
			<td></td>
			<td>B2-2</td>
			<td>남성</td>
			<td>264</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.47</td>
		</tr>
<tr>
<td>E3-1</td>
			<td>남성</td>
			<td>267</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.73</td>
			<td></td>
			<td>B 3-1</td>
			<td>남성</td>
			<td>265</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.52</td>
		</tr>
<tr>
<td>E3-2</td>
			<td>남성</td>
			<td>267</td>
			<td>1.0</td>
			<td>3.88</td>
			<td></td>
			<td>B3-2</td>
			<td>남성</td>
			<td>265</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.53</td>
		</tr>
<tr>
<td>E4-1</td>
			<td>남성</td>
			<td>263</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.41</td>
			<td></td>
			<td>B4-1</td>
			<td>남성</td>
			<td>289</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.32</td>
		</tr>
<tr>
<td>E4-2</td>
			<td>남성</td>
			<td>263</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.52</td>
			<td></td>
			<td>B4-2</td>
			<td>남성</td>
			<td>289</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.62</td>
		</tr>
<tr>
<td>E5-1</td>
			<td>남성</td>
			<td>265</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.61</td>
			<td></td>
			<td>B5-1</td>
			<td>남성</td>
			<td>277</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.48</td>
		</tr>
<tr>
<td>E5-2</td>
			<td>남성</td>
			<td>265</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.42</td>
			<td></td>
			<td>B5-2</td>
			<td>남성</td>
			<td>277</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.12</td>
		</tr>
<tr>
<td>E6-1</td>
			<td>여성</td>
			<td>285</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.33</td>
			<td></td>
			<td>B6-1</td>
			<td>여성</td>
			<td>274</td>
			<td>0.9</td>
			<td>4.87</td>
		</tr>
<tr>
<td>E6-2</td>
			<td>여성</td>
			<td>285</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.03</td>
			<td></td>
			<td>B 6-2</td>
			<td>여성</td>
			<td>274</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.37</td>
		</tr>
<tr>
<td>E7-1</td>
			<td>여성</td>
			<td>271</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.82</td>
			<td></td>
			<td>B7-1</td>
			<td>여성</td>
			<td>268</td>
			<td>1.0</td>
			<td>3.93</td>
		</tr>
<tr>
<td>E7-2</td>
			<td>여성</td>
			<td>271</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.42</td>
			<td></td>
			<td>B7-2</td>
			<td>여성</td>
			<td>268</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.82</td>
		</tr>
<tr>
<td>E8-1</td>
			<td>여성</td>
			<td>268</td>
			<td>1.2</td>
			<td>1.93</td>
			<td></td>
			<td>B8-1</td>
			<td>여성</td>
			<td>262</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.07</td>
		</tr>
<tr>
<td>E8-2</td>
			<td>여성</td>
			<td>268</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.05</td>
			<td></td>
			<td>B8-2</td>
			<td>여성</td>
			<td>262</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.67</td>
		</tr>
<tr>
<td>E9-1</td>
			<td>여성</td>
			<td>273</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.52</td>
			<td></td>
			<td>B9-1</td>
			<td>여성</td>
			<td>281</td>
			<td>1.2</td>
			<td>4.38</td>
		</tr>
<tr>
<td>E9-2</td>
			<td>여성</td>
			<td>273</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.17</td>
			<td></td>
			<td>B9-2</td>
			<td>여성</td>
			<td>281</td>
			<td>1.2</td>
			<td>4.57</td>
		</tr>
<tr>
<td>E 10-1</td>
			<td>여성</td>
			<td>261</td>
			<td>1.2</td>
			<td>1.82</td>
			<td></td>
			<td>B10-1</td>
			<td>여성</td>
			<td>275</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.53</td>
		</tr>
<tr>
<td>E10-2</td>
			<td>여성</td>
			<td>261</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.25</td>
			<td></td>
			<td>B10-2</td>
			<td>여성</td>
			<td>275</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.28</td>
		</tr>
<tr>
<td>평균</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>2.77</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>3.28</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="11">엉-1: 첫 번째 혈액 컬렉션에 대 한 실험적인 그룹에 있는 쥐의 일련 번호입니다.</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="11">엉-2: 두 번째 혈액 컬렉션에 대 한 실험적인 그룹에 있는 쥐의 일련 번호입니다.</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="11">Bn-1: 첫 번째 혈액 컬렉션에 대 한 초보자 그룹에서 쥐의 일련 번호입니다.</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="11">Bn-2: 두 번째 혈액 컬렉션에 대 한 초보자 그룹에서 쥐의 일련 번호입니다.</td>
		</tr>
</tbody></table>표 1: 혈액의 결과 실험적인 그룹 초급 그룹에 수집.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td></td>
			<td>혈액 컬렉션 시간</td>
			<td>평균 펑크 시간</td>
			<td>한 번 빵 꾸</td>
			<td>두 번 펑크</td>
			<td>세 번 펑크</td>
			<td>실패</td>
			<td>성공률</td>
		</tr>
<tr>
<td>실험 그룹</td>
			<td>20</td>
			<td>1.50 ±0.61</td>
			<td>11</td>
			<td>8</td>
			<td>0</td>
			<td>1</td>
			<td>95%</td>
		</tr>
<tr>
<td>초급 그룹</td>
			<td>20</td>
			<td>1.85 ± 0.75</td>
			<td>7</td>
			<td>9</td>
			<td>2</td>
			<td>2</td>
			<td>90%</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="6">한 번 빵 꾸: 첫 번째 찔린 후 성공적인 혈액 컬렉션 쥐의 수</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="6">두 번 펑크: 성공적인 혈액 컬렉션 두 번째 펑크 후 쥐의 수</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="6">세 번 펑크: 성공적인 혈액 컬렉션 3 찔린 후 쥐의 수</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="5">실패: 실패 한 혈 세 번째 찔린 후 쥐와 수</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
</tbody></table>표 2: 펑크 시간과 초보자 그룹과 실험 그룹의 성공률의 비교.

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Repeated Blood Collection from Tail Vein of Non-Anesthetized Rats with a Vacuum Blood Collection System

여기, 비 취 쥐 진공 추출 튜브 시스템을 사용 하 여 간단한 꼬리 정 맥 혈액 샘플링 방법을 설명 합니다. 이 방법은 혈액에 직접 노출의 위험을 감소 하 고 단일 venipuncture에서 여러 샘플을 채 취하고 단순화 합니다.

진공 혈액 수집 시스템으로 비 취 쥐의 꼬리 정 맥에서 혈액 컬렉션 반복

Blood can be collected from rats in a number of sampling locations. For instance, the tail vein is a superior location for blood sampling. However, the ...

repeated-blood-collection-from-tail-vein-non-anesthetized-rats-with

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Medicine

35.6K 조회수.  Jianghan University. 여기, 비 취 쥐 진공 추출 튜브 시스템을 사용 하 여 간단한 꼬리 정 맥 혈액 샘플링 방법을 설명 합니다. 이 방법은 혈액에 직접 노출의 위험을 감소 하 고 단일 venipuncture에서 여러 샘플을 채 취하고 단순화 합니다.

비디오: Repeated Blood Collection from Tail Vein of Non-Anesthetized Rats with a Vacuum Blood Collection System

Collection Protocol for Human Pancreas

This dissection and sampling procedure was developed for the Network for Pancreatic Organ Donors with Diabetes (nPOD) program to standardize preparation of pancreas recovered from cadaveric organ donors. The pancreas is divided into 3 main regions (head, body, tail) followed by serial transverse sections throughout the medial to lateral axis. Alternating sections are used for fixed paraffin and fresh frozen blocks and remnant samples are minced for snap frozen sample preparations, either with or without RNAse inhibitors, for DNA, RNA, or protein isolation. The overall goal of the pancreas dissection procedure is to sample the entire pancreas while maintaining anatomical orientation.
Endocrine cell heterogeneity in terms of islet composition, size, and numbers is reported for human islets compared to rodent islets 1. The majority of human islets from the pancreas head, body and tail regions are composed of insulin-containing &beta;-cells followed by lower proportions of glucagon-containing &alpha;-cells and somatostatin-containing &delta;-cells. Pancreatic polypeptide-containing PP cells and ghrelin-containing epsilon cells are also present but in small numbers. In contrast, the uncinate region contains islets that are primarily composed of pancreatic polypeptide-containing PP cells 2. These regional islet variations arise from developmental differences. The pancreas develops from the ventral and dorsal pancreatic buds in the foregut and after rotation of the stomach and duodenum, the ventral lobe moves and fuses with the dorsal 3. The ventral lobe forms the posterior portion of the head including the uncinate process while the dorsal lobe gives rise to the rest of the organ. Regional pancreatic variation is also reported with the tail region having higher islet density compared to other regions and the dorsal lobe-derived components undergoing selective atrophy in type 1 diabetes4,5.
Additional organs and tissues are often recovered from the organ donors and include pancreatic lymph nodes, spleen and non-pancreatic lymph nodes. These samples are recovered with similar formats as for the pancreas with the addition of isolation of cryopreserved cells. When the proximal duodenum is included with the pancreas, duodenal mucosa may be collected for paraffin and frozen blocks and minced snap frozen preparations.

This video demonstrates a dissection procedure for processing human pancreas into multiple storage formats. Anatomical orientation is maintained throughout the pancreatic regions to allow definition of regional islet composition and density.

인간의 췌장을위한 컬렉션 프로토콜

This dissection and sampling procedure was developed for the Network for Pancreatic Organ Donors with Diabetes (nPOD) program to standardize preparation ...

연구

의학

Modified Blood Collection from Tail Veins of Non-anesthetized Mice with a Vacuum Blood Collection System and Eyeglass Magnifier

Blood sample collection is the basis of experimental animal research. It is of importance to obtain adequate blood samples for various research purposes. The tail veins of mice are small, and it is sometimes difficult to obtain the required blood volume by conventional puncture methods. This study investigates the superiority of repeated blood sample collection from tail veins of mice through use of a vacuum blood collection system and eyeglass magnifier (experimental group) compared to conventional blood sampling methods (conventional group), performed by beginners and experts, respectively. With the help of an eyeglass magnifier, a butterfly needle tip is inserted into the tail vein of each mouse in the experimental group. When the vein is penetrated successfully, a blood sample is collected in the vacuum collection tube by insertion of the rubber end of a butterfly needle into the vacuum blood collection tube. The plunger is then used to collect blood without the help of the eyeglass magnifier in the conventional group. Success rates of blood sample collection by the beginners and experts were shown to be 70% vs. 100% (p &#60; 0.01) in the experimental group and 35% vs. 85% (p &#60; 0.01) in the conventional group. For both beginners and experts, puncture times required for obtaining required blood sample were significantly lower in the experimental group compared to the conventional group (2.40 &#177; 0.75 vs. 2.90 &#177; 0.31, p &#60; 0.05; 1.15 &#177; 0.37 vs. 1.55 &#177; 0.76, p &#60; 0.05). In conclusion, the presented blood sampling technique is feasible and easy to practice and enables frequent sampling of adequate blood volumes from non-anesthetized mice.&#160;

This study reports blood sampling from tail vein in mice using a vacuum extraction tube system with eyeglass magnifier. Our method is easy to practice and could be used for repeat blood sampling in mice.

진공 혈액 수집 시스템 및 안경 돋보기와 비 취 쥐의 꼬리 정 맥에서 혈 수정된

Blood sample collection is the basis of experimental animal research. It is of importance to obtain adequate blood samples for various research purposes. ...

행동분석학

Subclavian Vein Puncture As an Alternative Method of Blood Sample Collection in Rats

Blood collection with enough blood volume is essential in animal experiments. Blood collection from the tail vein of rats is popular and less stressful compared to other more aggressive methods such as retro-orbital plexus sample collection. However, this blood collection method is sometimes limited by an unsatisfactory success rate. Here, we introduce a method for blood collection through the subclavian vein puncture. The subclavian vein is located just under the clavicle and this vein is large enough to fulfill the volume requirements of blood collection. Our results show that this method is safe and applicable for blood collection sampling with the required blood volume. Blood collection through the subclavian vein puncture could serve as an alternative blood collection method in case of failed tail vein blood sampling in rats.

Here, we present a protocol to collect blood samples from the rat subclavian vein.

쥐에서 혈액 샘플 컬렉션의 대체 방법으로 빵 꾸 하 정 맥

Blood collection with enough blood volume is essential in animal experiments. Blood collection from the tail vein of rats is popular and less stressful ...

Sampling Blood from the Lateral Tail Vein of the Rat

Blood samples are commonly obtained in many experimental contexts to measure targets of interest, including hormones, immune factors, growth factors, proteins, and glucose, yet the composition of the blood is dynamically regulated and easily perturbed. One factor that can change the blood composition is the stress response triggered by the sampling procedure, which can contribute to variability in the measures of interest. Here we describe a procedure for blood sampling from the lateral tail vein in the rat. This procedure offers significant advantages over other more commonly used techniques. It permits rapid sampling with minimal pain or invasiveness, without anesthesia or analgesia. Additionally, it can be used to obtain large volume samples (upwards of 1 ml in some rats), and it may be used repeatedly across experimental days. By minimizing the stress response and pain resulting from blood sampling, measures can more accurately reflect the true basal state of the animal, with minimal influence from the sampling procedure itself.

Blood samples are useful for assessing biomarkers of physiological states or disease in vivo. Here we describe the methodology to sample blood from the lateral tail vein in the rat. This method provides rapid samples with minimal pain and invasiveness.

쥐의 측면 꼬리 정맥에서 혈액을 샘플링

Blood samples are commonly obtained in many experimental contexts to measure targets of interest, including hormones, immune factors, growth factors, ...

생물학

Concurrent EEG Recording을 통한 쥐의 Cerebrospinal Fluid and Blood Withdrawal from Rats with Concurrent EEG Recording(동시 EEG 기록이 있는 쥐의 뇌척수액 및 혈액 철수)

Sampling Cerebrospinal Fluid and Blood from Lateral Tail Vein in Rats During EEG Recordings

Because the composition of body fluids reflects many physiological and pathological dynamics, biological liquid samples are commonly obtained in many experimental contexts to measure molecules of interest, such as hormones, growth factors, proteins, or small non-coding RNAs. A specific example is the sampling of biological liquids in the research of biomarkers for epilepsy. In these studies, it is desirable to compare the levels of molecules in cerebrospinal fluid (CSF) and in plasma, by withdrawing CSF and plasma in parallel and considering the time distance of the sampling from and to seizures. The combined CSF and plasma sampling, coupled with video-EEG monitoring in epileptic animals, is a promising approach for the validation of putative diagnostic and prognostic biomarkers. Here, a procedure of combined CSF withdrawal from cisterna magna and blood sampling from the lateral tail vein in epileptic rats that are continuously video-EEG monitored is described. This procedure offers significant advantages over other commonly used techniques. It permits rapid sampling with minimal pain or invasiveness, and reduced time of anesthesia. Additionally, it can be used to obtain CSF and plasma samples in both tethered and telemetry EEG recorded rats, and it may be used repeatedly across multiple days of experiment. By minimizing the stress due to sampling by shortening isoflurane anesthesia, measures are expected to reflect more accurately the true levels of investigated molecules in biofluids. Depending on the availability of an appropriate analytical assay, this technique may be used to measure the levels of multiple, different molecules while performing EEG recording at the same time.

저자 스포트라이트: Obtaining High-quality CSF and Blood Samples for Epilepsy Biomarker Discovery(간질 바이오마커 발견을 위한 고품질 뇌척수액 및 혈액 샘플 획득) 

The protocol shows repeated cerebrospinal fluid and blood collections from epileptic rats performed in parallel with continuous video-electroencephalogram (EEG) monitoring. These are instrumental for exploring possible links between changes in various body fluid molecules and seizure activity.

EEG 기록 중 쥐의 측면 꼬리 정맥에서 뇌척수액 및 혈액 샘플링

Because the composition of body fluids reflects many physiological and pathological dynamics, biological liquid samples are commonly obtained in many ...

신경과학

Repetitive Blood Sampling from the Subclavian Vein of Conscious Rat

Rats are widely used in pharmacokinetics (PK) and toxicokinetic (TK) studies that need to collect a certain amount of blood at specific time points to detect drug exposure. The rat blood sampling method determines the quality of the plasma and further affects the precision of the test results. The subclavian vein blood collection method described in this protocol collects blood samples repeatedly in the conscious state of animals to meet the needs of PK and TK tests. The skills of restraint handling and appropriate procedure of needle incision ensure the success rate of blood collection. It is easy to operate while ensuring the quality of plasma and at the same time catering to animal welfare. However, this method requires skilled operation, and an improper one may cause animal weakness, pain, lameness, and even mortality. The current method has been used in the testing facility for a 4-week oral toxicity study in Sprague Dawley (SD) rats with TK. The maximum amount of blood collected within 24 h did not exceed 20% of the animal's total blood. The animals' body weight was more than 200 g for males and females. The data showed that the animals' bodyweight increased steadily every week, and the clinical observation was normal after repetitive sample collection.

The present protocol describes a simple and efficient method for collecting blood from the subclavian vein in rats. It enables rapid, timely, and easily identifiable sampling without anesthesia and obtains high-quality blood through repetitive sample collection.

의식 쥐의 쇄골 하 정맥에서 반복적 인 혈액 샘플링

Rats are widely used in pharmacokinetics (PK) and toxicokinetic (TK) studies that need to collect a certain amount of blood at specific time points to ...

쥐의 혈액 채취 기술에 대한 비교 연구

Modified Tail Vein and Penile Vein Puncture for Blood Sampling in the Rat Model

Blood samples are required in most experimental animal designs to assess various hematological parameters. This paper presents two procedures for blood collection in rats: the lateral tail vein puncture and the dorsal penile vein puncture, which offer significant advantages over other previously described techniques. This study shows that these two procedures allow for fast sampling (under 10 min) and yield sufficient blood volumes for most assays (202 &#956;L &#177; 67.7 &#956;L). The dorsal penile vein puncture must be done under anesthesia, whereas the lateral tail vein puncture can be done on a conscious, restrained animal.
Alternating these two techniques, therefore, enables blood draw in any situation. While it is always recommended for an operator to be assisted during a procedure to ensure animal welfare, these techniques require only a single operator, unlike most blood sampling methods that require two. Moreover, whereas these previously described methods (e.g., jugular stick, subclavian vein blood draw) require extensive prior training to avoid harm to or death of the animal, tail vein and dorsal penile vein puncture are rarely fatal. For all these reasons, and according to the context (e.g., for studies including male rats, during the perioperative or immediate postoperative period, for animals with thin tail veins), both techniques can be used alternately to enable repeated blood draws.

저자 스포트라이트: 쥐의 상황에 따른 혈액 수집 방법 

Here, we present a protocol to offer rapid, easy, and reliable blood collection alternatives for the rat model. We describe three different blood sampling methods according to the context: tail vein puncture under anesthesia or on a conscious animal, and dorsal penile vein puncture under anesthesia.

쥐 모델에서 혈액 샘플링을 위한 수정된 꼬리 정맥 및 음경 정맥 천자

Blood samples are required in most experimental animal designs to assess various hematological parameters. This paper presents two procedures for blood ...

진공 혈액 수집 시스템으로 비 취 쥐의 꼬리 정 맥에서 혈액 컬렉션 반복

요약

더 많은 비디오 탐색

이 비디오의 챕터

인간의 췌장을위한 컬렉션 프로토콜

진공 혈액 수집 시스템 및 안경 돋보기와 비 취 쥐의 꼬리 정 맥에서 혈 수정된

쥐에서 혈액 샘플 컬렉션의 대체 방법으로 빵 꾸 하 정 맥

쥐의 측면 꼬리 정맥에서 혈액을 샘플링

EEG 기록 중 쥐의 측면 꼬리 정맥에서 뇌척수액 및 혈액 샘플링

EEG 기록 중 쥐의 측면 꼬리 정맥에서 뇌척수액 및 혈액 샘플링

EEG 기록 중 쥐의 측면 꼬리 정맥에서 뇌척수액 및 혈액 샘플링

의식 쥐의 쇄골 하 정맥에서 반복적 인 혈액 샘플링

쥐 모델에서 혈액 샘플링을 위한 수정된 꼬리 정맥 및 음경 정맥 천자

쥐 모델에서 혈액 샘플링을 위한 수정된 꼬리 정맥 및 음경 정맥 천자