이 연구는 중국 국립자연과학재단(National Natural Science Foundation of China, 82204088, 82273669)과 중국 산둥성 자연과학재단(Natural Science Foundation of Shandong Province, China ZR2021QH209)의 재정 지원을 받았다.

모든 행동 테스트에 수컷 C57BL/6J 마우스(연령: 6-8주, 체중: 20-22g)를 사용했습니다. 마우스는 안정된 조건(즉, 온도, 23 ± 1 °C, 습도, 55% ± 5%, 7:00에 조명이 켜진 상태에서 12/12 시간 명암 주기)에 노출되었습니다. 모든 행동 검사는 10:00에서 17:00 사이에 수행되었습니다. 모든 동물 실험은 칭다오 대학 동물 실험 전문위원회 윤리 위원회의 승인을 받았습니다. 1주일의 적응 기간 후, 모든 쥐는 흡입 가능한 환경 오염 물질에 노출되었습니다.
1. 오염 물질에 대한 노출
<ol><li>점안에 의한 비강 내 투여<ol><li>흡입 가능한 환경 오염 물질을 0.9% 식염수에 용해시킵니다. 후각 기능 장애를 일으키는 것으로 입증된 5% 황산아연 용액을 한 번 사용하십시오17. 대조군 마우스의 경우 0.9% 생리식염수를 투여합니다.</li>
		<li>1% 소듐 펜토바르비탈18 의 복강 내 주사로 마우스를 마취하고 발가락 꼬집 반사를 사용하여 마취 깊이를 평가합니다. 건조함을 방지하기 위해 쥐의 눈에 수의사 연고를 바르십시오. 머리가 아래를 향하도록 하여 마우스를 등을 대고 경사진 표면에 놓습니다.</li>
		<li>피펫팅 건을 사용하여 용액 10μL를 마우스의 한쪽 콧구멍에 투여하여 용액을 비강으로 자연스럽게 흡입할 수 있도록 합니다.</li>
		<li>쥐의 건강을 보장하고 잠재적인 불편함을 방지하려면 10분 간격 후에 다른 쪽 콧구멍에 대한 흡입을 반복하십시오.</li>
		<li>마우스에 점안하여 비강 내 투여 후 3일째 되는 날에 매몰된 식품 검사를 실시한다.</li>
	</ol></li>
</ol>2. 매몰식품 시험
<ol><li>테스트 18-24시간 전에 가정용 케이지의 식품 호퍼에서 모든 차우 펠릿을 제거하여 식품 박탈을 수행합니다. 쥐의 침구 재료를 바꾸십시오. 물병을 제거하지 마십시오.</li>
	<li>아래 설명에 따라 수술대를 정렬합니다.<ol><li>테스트 시작 1시간 전에 마우스가 들어있는 케이지를 수술실로 가져가 휴식을 취합니다.</li>
		<li>이 기간 동안 수술실을 배치하십시오. 투명 PVC 표준 마우스 케이지를 A로 사용하고 표시하면 친숙한 환경을 만들 수 있습니다. 투명한 PVC 표준 다람쥐 케이지인 테스트 케이지를 B로 사용하고 표시합니다. 실험 후 마우스를 배치하는 데 사용되는 일반 케이지를 케이지 C로 표시합니다.</li>
		<li>케이지 A와 B를 3cm의 침구 재료로 덮고 자로 측정합니다. 각 케이지 사이에 0.5m의 거리를 두고 케이지를 나란히 배열합니다(그림 1).</li>
		<li>실험 영역을 반경이 2m인 영역으로 정의하고 중심은 케이지의 중심이 됩니다. 2m 범위를 벗어난 영역을 관찰 영역으로 정의합니다.</li>
		<li>케이지 C와 테스트되지 않은 마우스가 들어있는 케이지는 실험 영역에서 가능한 한 멀리 두십시오.</li>
	</ol></li>
	<li>아래 설명된 대로 음식을 찾는 시간을 기록하십시오.<ol><li>케이지 B에서 무작위로 위치를 선택하고 침구 표면에서 1cm 아래에 음식을 묻고 침구 표면을 매끄럽게 합니다.</li>
		<li>마우스를 케이지 A에 4분 동안 넣습니다. 타이밍이 끝나면 마우스를 케이지 B로 옮기고 비디오 장치를 켠 다음 관찰 구역으로 돌아갑니다.</li>
		<li>쥐가 앞발로 음식 블록을 집어 들면 비디오 녹화를 중지하십시오. 어떤 경우에는 쥐가 음식 위로 머리를 구부리고 먹는 것을 볼 수 있습니다. 이 행동은 또한 쥐가 앞발로 음식을 잡고 있지 않은 경우에도 시험 성공을 나타냅니다.</li>
		<li>데이터를 기록합니다. 케이지 B 바닥에 있는 매트와 접촉한 후 각 마우스에 대한 음식이 발견될 때까지의 시간을 기록합니다. 생쥐가 4분 후에도 먹이를 찾지 못하면 발견 시간을 240초의 지연 시간으로 기록합니다.</li>
		<li>테스트 후 마우스를 케이지 C에 넣습니다.</li>
		<li>케이지 B에서 사료를 제거하고 밀봉된 백에 넣습니다. 케이지 B의 식품을 교체하고 아래 설명된 대로 침구 재료를 교체한 후 다음 마우스를 테스트합니다.<ol><li>동일한 케이지에 수용된 마우스의 경우 케이지 B에서 동일한 침구 재료 세트로 테스트합니다. 다른 케이지에 있는 쥐의 경우 알코올로 케이지를 청소하고 침구 재료를 교체하십시오.</li>
		</ol></li>
		<li>실험 후 쥐에게 사료와 물을 추가하십시오. 1일 후에 사회적 악취 차별 실험을 실시합니다. 참고: 공정 전반에 걸쳐 마스크를 착용해야 하며, 각 마우스가 실험을 마친 후에는 냄새가 교차하지 않도록 투명 장갑을 교체해야 합니다. 마우스 스트레스를 피하기 위해 움직임의 진폭을 가능한 한 작게 유지하십시오.</li>
	</ol></li>
</ol>3. 사회적 악취 차별 실험
<ol><li>소변 채취<ol><li>성적으로 성숙한 수컷 마우스와 암컷 마우스의 소변을 별도로 수집하고 동일한 부피의 튜브에 분취한다19. 각 튜브에 300μL의 소변이 있는 2mL 미세 원심분리기 튜브에 포장합니다.</li>
		<li>사용할 때까지 샘플을 -80 ° C에서 보관하십시오. 해동 후 샘플이 고르게 분포되도록 튜브를 흔듭니다. 샘플을 반복적으로 해동 및 냉동하지 마십시오.</li>
	</ol></li>
	<li>아래 설명에 따라 수술대를 정렬합니다.<ol><li>테스트 시작 1시간 전에 마우스가 들어있는 케이지를 수술실로 가져가 휴식을 취합니다.</li>
		<li>이 기간 동안 2.2.2-2.2.5단계에 설명된 대로 수술실을 배치합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>아래 설명과 같이 소변을 찾는 시간을 기록하십시오.<ol><li>300μL의 남성과 여성의 소변이 들어 있는 미세 원심분리기 튜브를 담을 수 있을 만큼 충분히 큰 케이지 B의 넓은 두 면 주위에 테이프로 홈을 만듭니다. 튜브를 놓고 지금은 두 개의 튜브 덮개를 닫아 두십시오.</li>
		<li>마우스를 케이지 A에 넣고 4분 동안 카운트다운을 설정합니다. 타이밍이 끝날 때 케이지 B의 두 튜브를 엽니다.</li>
		<li>두 튜브에서 같은 거리에 있는 케이지 B의 중간 위치로 마우스를 옮긴 다음 비디오 녹화 장비를 켜고 부드럽고 천천히 관찰 영역으로 후퇴합니다.</li>
		<li>쥐가 튜브 벽/입 또는 튜브 내부의 냄새를 맡으면 튜브에서 성공적으로 냄새를 맡은 것입니다. 이때 스톱워치를 누르고 튜브 냄새를 맡은 시간(MS)으로 시간을 기록한 다음 마우스가 튜브에서 멀어질 때까지 체류 시간(XXS)을 계속 기록합니다.</li>
		<li>다른 튜브를 스니핑하는 시간을 계속 측정하십시오. 쥐가 튜브 벽/입 또는 튜브 내부의 냄새를 맡으면 튜브에서 성공적으로 냄새를 맡은 것입니다. 스톱워치를 누르고 다른 튜브의 냄새를 맡는 데 걸린 시간(NS)을 기록한 다음 마우스가 튜브에서 멀어질 때까지 체류 시간(YS)을 계속 기록합니다.</li>
		<li>실험이 끝날 때 마우스를 케이지 C로 옮깁니다.</li>
		<li>각 마우스 테스트 후 케이지 B의 소변관과 침구 재질을 교체하십시오. 사용한 쥐 소변은 성별에 따라 깨끗한 봉지에 넣는다.</li>
		<li>장갑을 교체하고 위에서 설명한 대로 다음 마우스를 테스트합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>뚜렷한 냄새가 없는 실험실에서 실험을 수행합니다. 강한 냄새가 나는 개인 제품은 피하십시오. 시술 내내 장갑과 마스크를 착용하여 가능한 한 냄새가 나지 않도록 하십시오. 마우스 스트레스를 피하기 위해 움직임의 진폭을 가능한 한 작게 유지하십시오.</li>
</ol>

흡입된 환경 오염 물질로 인한 생쥐의 후각 장애 평가

<ol>
	<li>Sch&#228;fer, L., Schriever, V. A., Croy, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+olfactory+dysfunction:+causes+and+consequences.">Human olfactory dysfunction: causes and consequences.</a> Cell Tissue Res. 383 (1), 569-579 (2021).</li><li>Keller, A., Malaspina, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hidden+consequences+of+olfactory+dysfunction:+a+patient+report+series.">Hidden consequences of olfactory dysfunction: a patient report series.</a> BMC Ear Nose Throat Disord. 13 (1), 8 (2013).</li><li>Schroeter, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Application+of+physiological+computational+fluid+dynamics+models+to+predict+interspecies+nasal+dosimetry+of+inhaled+acrolein.">Application of physiological computational fluid dynamics models to predict interspecies nasal dosimetry of inhaled acrolein.</a> Inhal Toxicol. 20 (3), 227-243 (2008).</li><li>Schroeter, J. D., Garcia, G. J., Kimbell, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+computational+fluid+dynamics+approach+to+assess+interhuman+variability+in+hydrogen+sulfide+nasal+dosimetry.">A computational fluid dynamics approach to assess interhuman variability in hydrogen sulfide nasal dosimetry.</a> Inhal Toxicol. 22 (4), 277-286 (2010).</li><li>Keyhani, K., Scherer, P. W., Mozell, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Numerical+simulation+of+airflow+in+the+human+nasal+cavity.">Numerical simulation of airflow in the human nasal cavity.</a> J Biomech Eng. 117 (4), 429-441 (1995).</li><li>Hahn, I., Scherer, P. W., Mozell, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Velocity+profiles+measured+for+airflow+through+a+large-scale+model+of+the+human+nasal+cavity.">Velocity profiles measured for airflow through a large-scale model of the human nasal cavity.</a> J Appl Physiol. 75 (5), 2273-2287 (1993).</li><li>Zhang, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Exposure+to+particulate+matter+air+pollution+and+Anosmia.">Exposure to particulate matter air pollution and Anosmia.</a> JAMA Netw Open. 4 (5), e2111606 (2021).</li><li>Ekstr&#246;m, I. 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D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Morphological+study+of+the+effects+of+intranasal+zinc+sulfate+irrigation+on+the+mouse+olfactory+epithelium+and+olfactory+bulb.">Morphological study of the effects of intranasal zinc sulfate irrigation on the mouse olfactory epithelium and olfactory bulb.</a> Microsc Res Tech. 24 (3), 195-213 (1993).</li><li>Zou, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Methods+to+measure+olfactory+behavior+in+mice.">Methods to measure olfactory behavior in mice.</a> Curr Protoc Toxicol. 63, 11.18.1-11.18.21 (2015).</li><li>Ryalls, J. M. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anthropogenic+air+pollutants+reduce+insect-mediated+pollination+services.">Anthropogenic air pollutants reduce insect-mediated pollination services.</a> Environ Pollut. 297, 118847 (2022).</li><li>Schiffman, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Livestock+odors:+implications+for+human+health+and+well-being.">Livestock odors: implications for human health and well-being.</a> J Anim Sci. 76 (5), 1343-1355 (1998).</li><li>Albrechet-Souza, L., Gilpin, N. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+predator+odor+avoidance+model+of+post-traumatic+stress+disorder+in+rats.">The predator odor avoidance model of post-traumatic stress disorder in rats.</a> Behav Pharmacol. 30 (2 and 3-Spec Issue), 105-114 (2019).</li><li>Davies, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inactivation+of+medial+prefrontal+cortex+or+acute+stress+impairs+odor+span+in+rats.">Inactivation of medial prefrontal cortex or acute stress impairs odor span in rats.</a> Learn Mem. 20 (12), 665-669 (2013).</li><li>Landers, M. S., Sullivan, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+development+and+neurobiology+of+infant+attachment+and+fear.">The development and neurobiology of infant attachment and fear.</a> Dev Neurosci. 34 (2-3), 101-114 (2012).</li><li>Drobyshevsky, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Antenatal+insults+modify+newborn+olfactory+function+by+nitric+oxide+produced+from+neuronal+nitric+oxide+synthase.">Antenatal insults modify newborn olfactory function by nitric oxide produced from neuronal nitric oxide synthase.</a> Exp Neurol. 237 (2), 427-434 (2012).</li><li>Arbuckle, E. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Testing+for+odor+discrimination+and+habituation+in+mice.">Testing for odor discrimination and habituation in mice.</a> J Vis Exp. (99), e52615 (2015).</li></ol>

저자는 이해 상충이 없음을 선언합니다.

이 기사에서는 생쥐의 후각 장애를 신속하게 평가하기 위해 고안된 두 가지 기본 프로토콜을 소개합니다. 다양한 흡입 가능한 환경 오염 물질은 마우스에서 뚜렷한 수준의 후각 기능 장애를 초래합니다. 매립식품 검사는 휘발성 냄새를 감지하는 능력을 평가하기 위해 사용되며, 사회적 악취 차별 실험은 다양한 사회적 냄새를 식별하고 구별하는 동물의 능력을 평가합니다. 이 프로토콜은 환경 오...

후각 장애는 주목할 만한 공중 보건 문제로 부상했으며 신경 퇴행성 질환의 위험 증가와 독립적으로 관련이 있습니다. 이 상태는 전반적인 웰빙에 부정적인 영향을 미치고 우울 증상의 발병에 기여하며 삶의 질을 저하시킬 수 있습니다. 그 영향은 음식에 대한 인식의 변화, 사회적 의사소통의 장애, 부정적인 감정의 고조에서 두드러지게 관찰된다1. 비강 질환, 상기도 감염, 외상성 뇌 손상을 포함한 다양한 요인이 인간의 후각 장애에 기여하는 것으로 간주되어 왔다2. 특히, 2%에서 16%에 이르는 것으로 추정되는 PM2.5와 같은 흡입 가능한 환경 오염 물질은 흡입된 공기를 통해 체내로 들어가 비강을 통과하여 특정 후각 전용 영역에 도달하여 3,4,5,6,7 축적됩니다. 최근 연구 결과에 따르면 PM2.5 및 암모니아를 포함한 흡입 가능한 환경 오염 물질은 실제로 후각 감각 뉴런에 해를 끼칠 수 있습니다 8,9,10. 그러나 이러한 손상이 후각 기능 장애로 직접 이어지는지 여부를 확인하기 위해서는 추가 검증이 필요합니다. 따라서 흡입 가능한 환경 오염 물질이 후각 기능에 미치는 영향을 세심하게 평가하는 것이 특히 중요합니다.
현재 수많은 연구실에서 후각 기능의 변화를 이해하기 위한 행동 실험을 위한 대안 척추동물 모델로 마우스를 사용하고있다 11,12,13,14. 생쥐는 척추동물의 화학적 의사소통을 조사하기 위한 선호 모델 시스템으로 선택되었으며, 이는 먹이 찾기와 사회적 의사소통에 중요한 놀라운 후각 민감성을 나타낸다15. 더욱이, 쥐의 행동을 관찰하고 영향을 미치기 위한 도구들이 지속적으로 발전함에 따라 이 종은 후각 기능 연구에 매우 매력적으로 다가왔다16.
이 연구에서는 흡입 가능한 환경 오염 물질에 노출된 마우스 모델의 후각 장애를 평가하기 위해 매장 식품 테스트와 사회적 냄새 차별 실험을 사용했습니다. 평가의 정밀도를 높이기 위해 후각 기능을 평가하는 가장 대표적인 방법을 선택했습니다. 우리는 이 방법을 체계적으로 개선하여 단순성과 명확성을 보장함으로써 흡입 가능한 환경 오염 물질에 의해 유발되는 후각 기능 장애의 정도를 효과적으로 측정할 수 있었습니다.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.5-10 &#956;L&#160; adjustable micropipette</td>
			<td>Eppendorf, Germany</td>
			<td>3123000225</td>
			<td>Intranasal instillation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.9% saline solution</td>
			<td>Solarbio</td>
			<td>7647-14-5</td>
			<td>Dissolve pollutants</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anhydrous zinc sulfate</td>
			<td>Macklin</td>
			<td>7733-02-0</td>
			<td>Expose mice</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge tube (2 mL)</td>
			<td>Biosharp Incorporated</td>
			<td>BS-20-M</td>
			<td>Place urine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electronic balance</td>
			<td>Changzhou Ohaus Co.</td>
			<td>EX125DZH</td>
			<td>Weight anesthetics and pollutants</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GraphPad Prism</td>
			<td>GraphPad Software</td>
			<td>8.0.1</td>
			<td>statistic analysis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Handheld Dust detector</td>
			<td>TSI&#160;Incorporated</td>
			<td>DuatTrak <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/66818/66818eq01.jpg" style="margin: auto;" />8532</td>
			<td>Inhalation-exposed mice</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Video recording equipment</td>
			<td>Apple Inc.</td>
			<td>iPhone 6s Plus</td>
			<td>The activity time of mice was recorded</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vortex mixer</td>
			<td>Haimen Kylin-Bell Lab Instruments Co.</td>
			<td>Vortex-5&#160;</td>
			<td>Mix solution</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

studying the effects of inhaled environmental pollutants on olfactory function in mice

후각 장애는 중요한 공중 보건 문제이며 신경 퇴행성 질환의 위험을 독립적으로 예측합니다. 흡입된 환경 오염 물질에 노출되면 후각이 손상될 수 있습니다. 이에 따라 흡입된 환경오염물질 노출이 후각에 미치는 영향을 평가할 수 있는 방법이 시급히 요구되고 있다. 생쥐는 고도로 발달된 후각 시스템과 행동 특성 때문에 후각 실험에 이상적인 모델입니다. 흡입된 환경오염물질 노출이 마우스의 후각 기능에 미치는 영향을 평가하기 위해 실험 준비, 실험 시설의 선정 및 건설, 시험 과정, 시간 지표 등 상세한 매몰식품 검사 및 사회적 악취 차별 실험을 제공합니다. 한편, 분석의 성공을 보장하기 위해 시간 측정 장비, 작동 세부 사항 및 실험 환경에 대해 논의합니다. 황산아연은 실험적 접근법의 타당성을 입증하기 위한 처리제로 사용됩니다. 이 프로토콜은 흡입된 환경 오염 물질이 마우스의 후각 기능에 미치는 영향을 평가하기 위한 간단하고 명확한 운영 프로세스를 제공합니다.

Olfactory impairment has emerged as a noteworthy public health concern and is independently associated with an increased risk of neurodegenerative diseases. This condition can adversely affect overall well-being, contribute to the development of depressive symptoms, and result in a diminished quality of life. Its impact is prominently observed in the altered perception of food, hindrance in social communication, and heightened negative feelings1. Various factors, including sinonasal disease, upper respiratory tract infection, and traumatic brain injury, have been considered contributors to olfactory impairment in humans2. Notably, inhalable environmental pollutants such as PM2.5, estimated to range from 2% to 16%, enter the body through inspired air, traverse the nasal cavity, and reach specific olfaction-dedicated regions where they are deposited3,4,5,6,7. Recent findings indicate that inhalable environmental pollutants, including PM2.5 and ammonia, can indeed harm olfactory sensory neurons8,9,10. However, further validation is required to ascertain whether such damage directly leads to olfactory dysfunction. Hence, a meticulous evaluation of the effects of inhalable environmental pollutants on olfactory function is of particular importance.
Currently, numerous research laboratories employ mice as an alternative vertebrate model for behavioral experiments aimed at comprehending changes in olfactory function11,12,13,14. Mice were chosen as the preferred model system for investigating vertebrate chemical communication, and it exhibits a remarkable olfactory sensitivity crucial for foraging and social communication15. Furthermore, the continually evolving array of tools for observing and influencing mouse behavior has rendered this species exceptionally appealing for research on olfactory function16.
In this study, we employed the buried food test and the social odor discrimination experiment to assess olfactory impairment in a mouse model exposed to inhalable environmental pollutants. To enhance the precision of evaluation, we opted for the most representative method for assessing olfactory function. We systematically refined this method to ensure simplicity and clarity, allowing us to gauge the extent of olfactory dysfunction induced by inhalable environmental pollutants effectively.

저자 스포트라이트: 공기 중 오염 물질의 후각 영향 평가 - 매장 식품 및 사회적 냄새 테스트

흡입된 환경 오염 물질이 마우스의 후각 기능에 미치는 영향 연구

Our research is environmental toxicology. It asks to provide two behavioral testing methods for starting effects or inheritable environmental pollutants on olfactory function. We provide two simple and effective methods by certain food tests and the social order discrimination experiment for determining the toxicity of inheritable environmental pollutants on olfactory function.We can comprehensively evaluate the impact of inheritable environmental pollutants on olfactory function by convincing the variable test and social order discrimination experiment matters. Our protocol uses a video device to time and record mouse behavior, addressing the efficiency of observes not being able to observe the behavior of mice in the observation area.

흡입 가능한 환경 오염 물질은 쥐의 후각 기능을 손상시킵니다. 소각로와 자동차에서 배출되는 대기 중 아연은 알레르기성 폐 염증을 유발할 수 있는 흡입 오염 물질로 입증되었습니다20. 황산아연은 후각 기능 장애를 일으키는 전형적인 화합물 중 하나로 간주된다21. 따라서 비강 내 점안으로 쥐를 노출시키는 치료제로 황산아연을 이용하여 매몰식품 검사와 ?...

본 논문은 흡입된 환경오염물질 노출이 마우스의 후각 기능에 미치는 영향을 평가하기 위한 매몰식품 검사와 사회적 악취 차별 실험에 대해 자세히 설명한다.

Olfactory impairment is a significant public health problem and independently predicts the risk of neurodegenerative diseases. Inhaled environmental ...

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Research

JoVE Journal

Environment

Studying the Effects of Inhaled Environmental Pollutants on Olfactory Function in Mice

337 조회수.  Qingdao University. 우리의 연구는 환경 독성학입니다. 후각 기능에 대한 시작 효과 또는 유전 가능한 환경 오염 물질에 대한 두 가지 행동 테스트 방법을 제공할 것을 요청합니다. 우리는 유전 가능한 환경 오염 물질이 후각 기능에 미치는 독성을 결정하기 위해 특정 식품 테스트와 사회 질서 차별 실험을 통해 두 가지 간단하고 효과적인 방법을 제공합니다.유전?...

비디오: 저자 스포트라이트: 공기 중 오염 물질의 후각 영향 평가 - 매장 식품 및 사회적 냄새 테스트

Olfactory impairment is a significant public health problem and independently predicts the risk of neurodegenerative diseases. Inhaled environmental pollutants exposure may impair olfaction; thereby, there is an urgent need for methods to evaluate the effects of inhaled environmental pollutants exposure on olfaction. Mice are ideal models for olfactory experiments because of their highly developed olfactory system and behavioral characteristics. To assess the effects of inhaled environmental pollutants exposure on olfactory function in mice, a detailed buried food test and social odor discrimination experiment is provided, including the experiment preparation, the selection and construction of experimental facilities, the testing process, and indexes of time. Meanwhile, timekeeping equipment, operational details, and the experimental environment are discussed to ensure the success of the assay. Zinc sulfate is used as the treatment to demonstrate the feasibility of the experimental approach. The protocol provides a simple and clear operational process for assessing the effects of inhaled environmental pollutants on olfactory function in mice.

This paper provides a detailed description of the buried food test and social odor discrimination experiment to assess the effects of inhaled environmental pollutants exposure on olfactory function in mice.

연구

환경과학

Performing Buried Food Test to Assess the Effects of Inhaled Pollutants on Olfactory Function in Mice

To begin, dissolve inhalable environmental pollutants in a 0.9%saline solution. Use a 5%zinc sulfate solution once as it has been shown to cause loss of smell. Using a pipetting gun, administer 10 microliters of the solution into one nostril of the mouse, allowing it to naturally inhale the solution into the nasal cavity.Remove all chow pellets from the food hopper of the home cage, to carry out food deprivation, 18 to 24 hours before the test. Change the bedding materials for the mice. Take the cage containing the mice to the operating room to rest one hour before the start of the test.Arrange the operating room during this period. Use transparent PVC standard mice cages marked as A and squirrel cages marked as B for testing. Mark the common cage used to place the mice after the experiment as cage C.Cover cages A and B with three centimeters of bedding material, and measure them with a ruler.Then arrange the cages side by side, with 0.5 meters between each cage. Next, define the experimental area as a two-meter radius space centered on the cages, with the area beyond two meters designated as the observation area. Keep cage C and cages containing untested mice as far away from the experimental area as possible.Now, select a position at random in cage B.Bury the food one centimeter below the surface of the bedding and smooth the surface of the bedding. Then place the mouse in cage A for four minutes. At the end of the time, transfer the mouse to cage B and turn on the video device before returning to the observation area.Stop the video recording when the mouse picks up the food lock with its forepaw. Record the time from contact with the mat at the bottom of cage B until the food is found for each mouse. After the test, put the mouse in cage C and add feed and water.In the food burial test, mice exposed to zinc sulfate were unable to find food for 240 seconds compared to the control group.