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Ensaios de transcrição in vitro podem decifrar os mecanismos de regulação transcricional em Borreliella burgdorferi. Este protocolo descreve as etapas para purificar a RNA polimerase de B. burgdorferi e realizar reações de transcrição in vitro. Abordagens experimentais usando ensaios de transcrição in vitro requerem purificação e armazenamento confiáveis da RNA polimerase ativa.
Borreliella burgdorferi é um patógeno bacteriano com repertórios metabólicos e genômicos limitados. B. burgdorferi transita extracelularmente entre vertebrados e carrapatos e remodela dramaticamente seu perfil transcricional para sobreviver em ambientes díspares durante a infecção. Um foco dos estudos de B. burgdorferi é entender claramente como a bactéria responde ao seu ambiente através de mudanças transcricionais. Ensaios de transcrição in vitro permitem dissecar bioquimicamente os mecanismos básicos de regulação transcricional. Aqui, apresentamos um protocolo detalhado descrevendo purificação e armazenamento da polimerase de RNA de B. burgdorferi , purificação do fator sigma, geração de molde de DNA e ensaios de transcrição in vitro . O protocolo descreve o uso da RNA polimerase purificada de B. burgdorferi 5A4 RpoC-His (5A4-RpoC). 5A4-RpoC é uma cepa publicada anteriormente que abriga um 10XHis-tag no gene rpoC que codifica a maior subunidade da RNA polimerase. Os ensaios de transcrição in vitro consistem na RNA polimerase purificada da cepa 5A4-RpoC, uma versão recombinante do fator sigma housekeeping RpoD e um molde de DNA de fita dupla gerado por PCR. Enquanto as técnicas de purificação de proteínas e as abordagens para montagem de ensaios de transcrição in vitro são conceitualmente bem compreendidas e relativamente comuns, as considerações de manuseio para RNA polimerases frequentemente diferem de organismo para organismo. O protocolo aqui apresentado destina-se a estudos enzimáticos da RNA polimerase de B. burgdorferi. O método pode ser adaptado para testar o papel de fatores de transcrição, promotores e modificações pós-traducionais na atividade da RNA polimerase.
A doença de Lyme e a febre recidivante são causadas por patógenos espiroquetas dos gêneros Borrelia e Borreliella 1,2,3. A doença de Lyme é uma proeminente doença transmitida por vetores na América do Norte e, consequentemente, a Borreliella burgdorferi é um organismo modelo proeminente para estudar a biologia das espiroquetas 4,5. Investigações sobre os mecanismos de regulação transcricional de B. burgdorferi visam compreender melhor suas adaptações às mudanças no ambiente à medida....
1. Purificação da RNA polimerase e preparação do estoque de RNA polimerase
Em uma reação de transcrição in vitro em que a etapa limitante da reação é o início da transcrição mediada pelo fator sigma, a atividade de transcrição deve aumentar linearmente com a quantidade de fator sigma. Apresentamos a preparação de experimentos de transcrição in vitro testando uma faixa de concentrações de RpoD juntamente com duas concentrações de RNA polimerase para observar o sinal variável resultante da incorporação de nucleotídeos radiomarcados em produtos de RNA. Res.......
Ensaios de transcrição in vitro construídos usando o protocolo apresentado foram recentemente utilizados para estudar o papel de um fator de transcrição em B. burgdorferi e podem ser aplicados para construir experimentos semelhantes usando outros fatores de transcrição, fatores sigma e moléculas23. Uma vez que a RNA polimerase ativa de B. burgdorferi tenha sido obtida e sua atividade detectada, componentes e condições dentro dos ensaios de transcrição in .......
Os autores declaram não haver conflitos de interesse.
Este trabalho foi apoiado pelo Fundo de Investimento Estratégico em Ciências da Saúde Faculty Development Grant da Creighton University. A cepa B. burgdorferi RpoC-His10X foi gentilmente cedida pelo Dr. D. Scott Samuels da Universidade de Montana. A cepa de E. coli que abriga o plasmídeo pMAL-C5X que codifica um alelo rpoD marcado com proteína ligadora de maltose foi gentilmente cedida pelo Dr. Frank Gherardini do Rocky Mountain Laboratories, NIAID, NIH.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.45 micron syringe filter | Thermo Scientific | 726-2545 | Step 1.7 and 2.3 |
50 mL conical tubes | MidSci | C50B | Step 1.3, and subsequent steps |
50 mL high-speed centrifuge tubes | Thermo Scientific | 3119-0050PK | Step 1.2 |
500 mL Centrifuge bottles | Thermo Scientific | 3120-9500PK | Step 1.1 |
B-PER and instruction manual | Thermo Scientific | 78248 | Step 1.4 and 2.2 |
Calcium chloride | Fisher Scientific | 10035-04-8 | Step 2.6 |
Centrifugal filters 10 Kd cutoff | Millipore Sigma | UFC8010 | Step 1.11 and 2.11 |
Cobalt resin and instruction manual | Thermo Scientific | 89969 | Step 1.9 |
Dithiothreitol | Acros Organics | 426380500 | Step 1.4 and subsequent steps |
Dnase (Nuclease) | Millipore Sigma | 70746 | Step 1.4 and 2.2 |
Factor Xa Protease | Haematologic Technologies | HCXA-0060 | Step 2.6 |
GE Typhoon 5 Phosphoimager | GE lifesciences | Multiple | Step 4.15 |
Gel Imager | Bio-Rad | Mutiple | Step 1.13 and subsequent protien quality check steps |
H2O for in vitro transcription | Fisher Scientific | 7732-18-5 | Step 3.2 and 3.3 |
high fidelity PCR kit | New England Biolabs | M0530S | Step 3.1 |
High-speed centrifuge | Eppendorf | Step 1.1, and subsequent steps | |
HiTrap Heparin HP 5 x 1 mL | Cytiva Life Sciences | 17040601 | Step 2.8 |
Imidazole | Sigma-Aldrich | 56750-100G | Step 1.9 |
Lysozyme | Thermo Scientific | 90082 | Step 1.4 and 2.2 |
Magnesium chloride | Fisher Scientific | S25401 | Step 4.1 |
Manganese chloride | Fisher Scientific | S25418 | Step 4.1 |
Mini protean tetra cell | Bio-Rad | Mutiple | Step 1.13 and subsequent protien quality check steps |
NP-40 | Thermo Scientific | 85124 | Step 4.1 |
NTP mixture | Thermo Scientific | R0481 | Step 4.1 |
PCR purification kit | Qiagen | 28506 | Step 3.2 |
PCR tubes | MidSci | PR-PCR28ACF | Step 1.12 |
PD-10 Sephadex buffer exchange column and instruction manual | Cytiva | 17085101 | Step 1.10 and 2.10 (gel filtration column) |
pMAL Protein Fusion and Purification System Instruction manual | New England Biolabs | E8200S | Step 2.1 |
Polyacrylamide gels AnyKD | Bio-Rad | 456-8125 | Step 1.13 and subsequent protien quality check steps |
Potassium glutamate | Sigma-Aldrich | G1251 | Step 4.1 |
Protease inhibitor | Thermo Scientific | 78425 | Step 1.4 and 2.2 |
Radiolabeled ATP | Perkin Elmer | BLU503H | Step 4.2 |
RNA Loading Dye, (2x) | New England Biolabs | B0363S | Step 4.13 |
Rnase inhibitor | Thermo Scientific | EO0381 | Step 4.1 |
Spectrophotometer | Biotek | Mutiple | Step 1.13 and subsequent protien quality check steps |
TBE-Urea gels 10 percent | Bio-Rad | 4566033 | Step 4.14 |
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