Uso do cateter de Hickman para acesso vascular de longa permanência em modelo pré-clínico de suínos

Resumo

Uma abordagem confiável e reprodutível para a inserção e manutenção de um cateter de Hickman tunelizado para acesso vascular de longa permanência em suínos é descrita. A colocação de um cateter venoso central permite uma conveniente amostragem diária de sangue total de animais acordados e administração intravenosa de medicamentos e fluidos.

Resumo

Os cateteres venosos centrais (CVCs) são dispositivos inestimáveis na pesquisa com grandes animais, pois facilitam uma ampla gama de aplicações médicas, incluindo monitoramento sanguíneo e administração confiável de fluidos intravenosos e medicamentos. Especificamente, o cateter de Hickman tunelizado multilúmen (HC) é comumente usado em modelos suínos devido às suas menores taxas de destravamento e complicações. Apesar de menos complicações em relação a outros CVCs, a morbidade relacionada à CH apresenta um desafio significativo, pois pode atrasar significativamente ou impactar negativamente os estudos em andamento. A inserção e manutenção adequadas dos CS são primordiais na prevenção dessas complicações, mas não há consenso sobre as melhores práticas. O objetivo deste protocolo é descrever de forma abrangente uma abordagem para a inserção e manutenção de HC tunelizado em suínos que atenue as complicações e morbidade relacionadas à HC. O uso dessas técnicas em suínos >100 resultou em linhagens patentes livres de complicações até 8 meses e sem mortalidade relacionada ao cateter ou infecção do sítio cirúrgico ventral. Este protocolo oferece um método para otimizar a vida útil do HC e orientação para abordar problemas durante o uso.

Introdução

O papel indispensável do cateter venoso central (CVC) no cuidado ao paciente deve-se à sua conveniência, perfil de segurança favorável e versatilidade¹. As funções de um CVC incluem acesso confiável para nutrição parenteral total, transplante de células-tronco hematopoéticas, plasmaférese/aférese e administração eficiente de fluidos, sangue ou co-fármacos². Na medicina veterinária, os CVCs também minimizam o desconforto animal por meio da rápida diluição de drogas irritantes e da coleta de sangue sem punção venosa repetida³. Apesar de suas amplas aplicações, o uso de CVCs em pesquisas com animais de grande porte ainda apresenta vários desafios^{consideráveis4}.

A colocação percutânea de CVC por meio de fio-guia ou cateter introdutor pode ser difícil para pesquisadores não veterinários, particularmente em animais com estruturas venosas profundas⁵. Uma técnica inadequada de instalação do CVC pode resultar em colocação inadvertida em estruturas próximas, necessitando de colocação guiada por ultrassom ou radiografia pós-procedimento do posicionamento⁶. No entanto, em comparação com salas de cirurgia humanas, os ultrassons não estão prontamente disponíveis em muitos grandes laboratórios de pesquisa animal. Além disso, o uso prolongado de cateteres de demora pode resultar em acotovelamento, punção, infecção ou desencarceramento por animais, com a possível interrupção do tratamento oportuno, do monitoramento clínico e dos resultados da pesquisa ^4,7. A substituição do CVC requer recursos adicionais, incluindo captação de materiais, programação cirúrgica, tempo de jejum e acesso radiográfico. As complicações relacionadas ao CVC podem, portanto, criar barreiras técnicas e financeiras significativas ou interromper a pesquisa translacional produtiva, particularmente em suínos. Contaminação por alimentos ou fezes, arranhões contra as paredes da gaiola e chutes locais de irritação podem comprometer o CVC, e o risco de complicações relacionadas ao CVC é amplificado pelo uso prolongado. Assim, a manutenção segura e descomplicada de um CVC em suínos requer uma consideração cuidadosa da escolha, colocação, segurança, proteção, saneamento e vigilância do CVC.

O cateter de Hickman (HC) utilizado nesse protocolo é um CVC tunelizado com manguito de poliéster e um a três lúmens, comumente utilizado para acesso intravenoso de longa duração em humanos e animais 1,4,8,9. A abordagem por cateter tunelizado tem sido associada a menores taxas de complicações e custos de manutenção em relação às variações não tunelizadas^10,11,12. O manguito reduz o desencarceramento da HC incorporando-se aos tecidos subcutâneos ao redor do local de saída da pele. O design multilúmen também permite a separação entre a administração de medicamentos e as coletas de sangue, minimizando a contaminação e a imprecisão das amostras de sangue. Apesar disso, o uso da HC não é isento de desafios, sendo os mais comuns fratura, migração, oclusão e infecção^13,14,15,16. A instalação e a manutenção adequadas de um HC são, portanto, habilidades indispensáveis quando utilizadas em pesquisa translacional. No entanto, a literatura atual oferece pouca orientação para as melhores práticas para o uso de HC em suínos durante estudos de longo prazo ^5,6,17.

O objetivo deste estudo é traçar uma abordagem otimizada para a inserção da HC na veia jugular interna (VJI), segurança da pele e proteção durável que minimize as complicações e desconfortos relacionados ao cateter de longa permanência em suínos. Uma discussão sobre as considerações importantes para o uso do CD é incluída, os desafios potenciais que podem ser encontrados e as modificações que podem melhorar a qualidade dessa abordagem é incluída.

Protocolo

Todos os procedimentos com animais foram conduzidos de acordo com um protocolo animal aprovado pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais da Universidade Johns Hopkins (IACUC). As cepas de suínos machos e fêmeas submetidos à colocação de HC incluem suínos em miniatura da colônia de suínos do Hospital Geral de Massachusetts (MGH), suínos de Yucatán e suínos cruzados de Yorkshire de um vendedor agrícola (20-40 kg). A idade dos suínos variou de 3 a 10 meses quando o HC foi colocado. O HC pode ser colocado a qualquer momento em relação ao procedimento experimental do animal. No entanto, recomenda-se colocá-lo previamente para permitir a coleta de valores sanguíneos basais. Também é recomendado dar ao suíno pelo menos um período de aclimatação de 1 semana antes de passar por qualquer manipulação experimental.

1. Planejamento pré-operatório

1. Antes da cirurgia, peça a um veterinário que realize uma avaliação clínica completa de todos os animais.
2. Jejuar os animais (sem alimento sólido) pelo menos 12 h antes do procedimento. Forneça água ad libitum em todos os momentos. Pesar os animais para administração controlada de medicamentos.
3. No dia da cirurgia, sedar os animais com quetamina (20-30 mg/kg) e xilazina (2-3 mg/kg por via intramuscular [IM]) misturados em uma única seringa. Se necessário, administrar agentes sedativos (cetamina e xilazina) lentamente por via intravenosa [IV]. Use uma pomada oftálmica estéril nos olhos para evitar a dessecação enquanto estiver sob anestesia.
4. Colocar um cateter intravenoso em uma veia marginal da orelha e administrar líquido de manutenção a 5-10 mL/(kg∙h) de solução salina a 0,9% ou solução de ringers com lactato (LRS) durante todo o procedimento.
5. Quando o animal estiver em decúbito dorsal, colocar um tubo endotraqueal de tamanho adequado, conectá-lo ao aparelho de anestesia e colocar em ventilação manual (mantida em isoflurano a 0,5-3% com 1-2 L O₂/min).
6. Administrar analgesia preemptiva (0,02 mg/kg de buprenorfina EV); administrar doses adicionais de buprenorfina no intraoperatório, conforme necessário. Administrar antibióticos profiláticos (20-22 mg/kg de cefazolina IV) 10 minutos antes do início da cirurgia e novamente a cada 90 min no intraoperatório. Administrar protonix (0,5-1,0 mg/kg IV) e citrato maropitant (1 mg/kg IV) uma vez antes do início da cirurgia.
7. Raspar o colo ventral e dorsal, que servirá de local para a colocação do cateter venoso central. Realizar preparo preliminar da área cirúrgica utilizando esfoliante de clorexidina.
8. Confirme se o porco está dentro de um plano adequado de anestesia cirúrgica. Avaliar a profundidade anestésica testando o tônus palpebral e mandibular. Se necessário, aumente o anestésico inalatório ou administre agentes sedativos adicionais (como cetamina) IV lentamente para efeito.
9. Transfira os suínos para a mesa de operação.

2. Monitorização intraoperatória

1. Durante a anestesia de manutenção, monitorar continuamente a frequência cardíaca e eletrocardiográfica, a pressão arterial não invasiva, a oximetria de pulso, a capnografia e a temperatura esofágica ou retal, registrando pelo menos a cada 15 min.
   1. Monitore de forma não invasiva a pressão arterial através de um manguito de pressão arterial em uma extremidade ou na cauda.
   2. Use um ventilador para regular com mais precisão a respiração e a administração de anestesia inalatória. Para parâmetros do ventilador, certifique-se de que o volume corrente esteja na faixa de 5-10 mL/kg. Ajustar a frequência respiratória durante todo o procedimento em resposta à profundidade anestésica do animal; ajuste o limite de pressão máxima para 20 mmHg.
2. Use uma manta ou almofada de ar quente regulada pela temperatura durante toda a operação para evitar a hipotermia.

3. Preparo cirúrgico

1. Designar pelo menos duas pessoas para serem estéreis (cirurgião e auxiliar) e pelo menos duas pessoas para serem não estéreis (circulante e anestesista).
2. Sob anestesia geral, posicionar o suíno em decúbito ventral sobre a mesa cirúrgica com as pernas presas para estabilização (Figura 1).
3. Preparar assepticamente o campo cirúrgico com três esfoliantes alternados de clorexidina e etanol 70%, seguidos de um ionóforo na superfície da pele por um tempo mínimo de contato de 10 min. Realizar uma preparação estéril das duas áreas a seguir:
   1. No lado ventral, estende-se do ângulo da mandíbula até o meio do esterno e estende-se bilateralmente até a borda lateral do esternocleidomastoideo. Coloque toalhas estéreis ao longo das bordas da área estéril.
   2. No lado dorsal, preparar o pescoço dorsolateral ipsilateral ao IJV alvo. Coloque toalhas estéreis sob o pescoço dorsal e sobre o campo dorsal para manter a esterilidade enquanto trabalha no campo ventral.
4. Coloque um pano estéril sobre o porco. Corte uma área retangular no drape para expor o campo ventral.
5. Em uma mesa separada com drapeado estéril, conecte o HC de duplo lúmen a uma peça introdutora longa.
   1. Parafuso claves em adaptadores luer lock no final de cada linha de lúmen (largo: vermelho; estreito: branco). Lavar as linhas vermelha e branca com 10 mL de solução fisiológica a 0,9%. Em seguida, aperte as duas linhas.

4. Identificação e preparo da veia jugular interna

1. No campo ventral, realizar uma incisão de 4 cm entre a traqueia e a borda medial do esternocleidomastoideo (Figura 2). Dividir o platisma e dissecar o tecido conjuntivo para revelar a VJIV na borda lateral do músculo esternocleidomastoideo.
2. Isolar 3-4 cm da VJI, dividindo seus ramos com fios de sutura inabsorvíveis revestidos 4-0. Dissecar circunferencialmente longe do tecido conjuntivo circundante. Realizar dois fios de sutura inabsorvíveis revestidos e trançados para suspender e estabilizar a VJI durante a inserção do cateter (Figura 3).
   1. Na extremidade cranial da VJI, passe uma gravata de sutura não absorvível revestida e trançada duas vezes embaixo do vaso para criar uma alça em torno dele.
   2. Na extremidade caudal da VJI, passe uma gravata de sutura não absorvível revestida e trançada uma vez embaixo do vaso para criar uma tipoia.
3. Liberar tração das amarras de sutura. Colocar gaze estéril embebida em soro fisiológico no sítio cirúrgico para proteger o vaso e manter a localização do laço.

5. Preparo do local de saída do cateter

1. Reposicionar o suíno via inclinação lateral em direção ao lado não cirúrgico para expor o campo cirúrgico dorsal ipsilateral. Refixar os membros (Figura 4).
2. Com bisturi com lâmina #10, realizar punção de 0,5 cm na pele no local de saída do cateter desejado - 3 cm lateral à coluna vertebral e 5 cm caudal à cabeça (Figura 5).

6. Introdução e tunelização do cateter

1. No campo ventral, remover a gaze úmida e reidentificar o segmento isolado da VJI. Escolha um local de entrada alvo para introduzir o cateter por via subcutânea. Certifique-se de que esta esteja na mesma profundidade da VJI, mais profunda que a esternocleidomastoidea e entre as duas suturas inabsorvíveis revestidas e trançadas (Figura 6).
   OBS: Os padrões subcuticulares devem ter nós de sutura enterrados abaixo da pele. Como as suturas dérmicas profundas são amarradas várias vezes para garantir estabilidade e manutenção, ocasionalmente ocupam um espaço maior do que o desejado e podem ser expostas através da pele. Esta pequena área de exposição não é de preocupação significativa, e a pele deve cicatrizar adequadamente apesar desta pequena área de exposição.
2. Posicionar a mão dominante no campo cirúrgico dorsal e a mão não dominante no campo cirúrgico ventral. Segure o introdutor do HC no campo cirúrgico dorsal. Suspender o comprimento restante do cateter no ar acima do campo estéril.
3. Inserir o introdutor no sítio de saída da punção com a mão dominante, apontando a ponta do dispositivo em direção à mão não dominante no campo ventral.
4. Empurre a ponta do introdutor superficial e medialmente para tunelizar o cateter através do tecido adiposo, sentindo a emergência da ponta com a mão não dominante. Uma vez que a ponta emerge no local de entrada do alvo, puxe o introdutor e o cateter através do túnel subcutâneo até que o manguito da linha principal esteja logo abaixo da superfície da pele no campo dorsal.
5. Corte o introdutor da linha. Substitua a gaze úmida no sítio cirúrgico ventral.

7. Inserção do cateter

1. Reposicionar o suíno na posição supina. Refixar os membros, substituir luvas estéreis e remover a gaze do sítio cirúrgico ventral.
2. Aperte as extremidades das suturas cranial e caudal revestidas e trançadas inabsorvíveis. Apoie as braçadeiras nas cortinas para que o segmento IJV fique ligeiramente elevado.
3. Corte a extremidade do cateter até aproximadamente o comprimento em que ele atingiria até 1/3 do comprimento do esterno do suíno.
   OBS: Minimizar a manipulação da ponta do cateter transeccionando a ponta com um único corte perpendicular à linha para evitar fragmentação ou entupimento da linha. Uma vez inserido, o HC deve situar-se dentro da veia cava superior, cranial imediatamente ao átrio direito (Figura 7).
4. Usando pinça de Adson-Brown, segure o meio do segmento isolado do IJV. Nesse mesmo ponto, faça um corte na metade do vaso com uma tesoura curva de Metzenbaum.
5. Ao segurar o segmento da VJIJ com a pinça de Adson-Brown, insira o captador de veia no segmento caudal do vaso (Figura 6). Enquanto mantém a tensão na amarração da sutura craniana, insira e rosqueie a extremidade do cateter no vaso caudalmente. Uma vez que o cateter está totalmente inserido, amarre a sutura caudal uma vez para fixar temporariamente o HC.
6. Testar a perviedade de ambas as linhas fora do campo estéril através de coletas de sangue e lavagens usando 3-5 mL de solução fisiológica a 0,9% seguida de 5 mL de 100 unidades USP/mL de solução salina heparinizada.
7. Uma vez confirmada a perviedade, amarra-se a sutura caudal uma ou duas vezes mais para fixar o segmento distal da VJIV ao redor do cateter intravenoso. Amarre a sutura craniana uma vez para ocluir o fluxo sanguíneo no segmento VJI.
8. Fechar o sítio cirúrgico ventral em planos: suturas simples interrompidas de platisma com fio absorvível trançado 3-0 e suturas subcuticulares com fio absorvível monofilamentar 3-0.

8. Fixação do cateter

1. Desconfinar os suínos e reposicionar em decúbito dorsal. Reproteja os membros.
2. Fixar o HC na pele do animal em mais de três pontos para evitar o descolamento do cateter (Figura 8).
   1. Orientar o HC para que ele forme um formato de "U".
   2. Identifique os pontos: verifique se o primeiro ponto está a menos de 2 cm do local de saída, o segundo ponto está sobre a porção bifurcada do cateter, onde as linhas vermelha e branca divergem, e o terceiro ponto está no topo do "U" entre os dois primeiros pontos.
   3. Em cada ponto, coloque um pedaço de ~3 cm de fita médica de 1 polegada (pol) sobre o cateter para criar uma asa de cada lado. Com uma sutura de polipropileno sintético, monofilamentar e inabsorvível, fixe cada asa à pele através de uma única sutura simples interrompida. No segundo ponto sobre a porção bifurcada, adicione uma única sutura interrompida através do espaço entre as duas linhas e certifique-se de que o nó fique em cima da fita para evitar irritação.
      NOTA: Dependendo do tamanho do local de punção do pescoço dorsal, uma sutura simples interrompida pode ser colocada para diminuir o tamanho e minimizar o risco de deslocamento inadvertido do cateter para fora da pele. Certifique-se de que o manguito ao redor do cateter permaneça subcutâneo.
   4. Testar a perviedade das linhas branca e vermelha fora do campo estéril por meio de coletas de sangue e lavagens usando 10 mL de soro fisiológico a 0,9% e 10 mL de solução salina heparinizada.
3. Crie uma coleira protetora.
   1. Enrole 4 em estofamento de algodão ao redor do pescoço três ou quatro vezes da seguinte maneira:
      1. Começando pelo colo dorsal, no canto cranial esquerdo, enrole diagonalmente em direção ao canto caudal direito, indo acima ou abaixo das linhas vermelha e branca. Enrole embaixo do pescoço em direção ao canto caudal esquerdo. Enrole diagonalmente em direção ao canto cranial direito, acima ou abaixo das linhas vermelhas e brancas e, em seguida, envolva até o ponto inicial no canto craniano esquerdo. Alterne ir acima e abaixo das linhas vermelhas e brancas a cada wrap subsequente.
         NOTA: O colar deve cobrir completamente os locais de fixação da pele e linha principal do HC. Apenas as linhas vermelhas e brancas devem ser deixadas de fora e acessíveis.
   2. Embrulhe 3 ou 4 em fita adesiva elástica ao redor do pescoço três ou quatro vezes da mesma maneira que o estofamento de algodão (passo 8.4.1). Se o curativo cobrir as linhas, crie uma fenda no curativo para acomodá-las.
      NOTA: Tome cuidado para não envolver esta camada com muita força - um dedo deve ser capaz de ser facilmente deslizado sob a coleira protetora circunferencialmente.
   3. Com uma sutura de polipropileno 0 sintético, monofilamentar e inabsorvível, sutura de cada canto no final do curativo às camadas subjacentes para manter sua posição.
   4. Com uma sutura de polipropileno sintético, monofilamentar e inabsorvível 0, fixe o colar à pele amarrando um colchão horizontal de sutura lateral à coluna vertebral tanto na extremidade cranial quanto na caudal. Certifique-se de que os nós fiquem em cima do curativo.
   5. Criar uma bolsa de cateter para proteger e armazenar as linhas vermelhas e brancas (Figura 9).
      1. Corte um pedaço de fita adesiva elástica medindo ~100 cm de comprimento e ~7,5 cm de largura.
      2. Meça um segmento de fita de ~16 cm. Dobre a fita sobre si mesma para que os lados adesivos fiquem voltados um para o outro para criar uma aba de 16 cm com duas camadas de fita. Com a fita restante, repita esse processo mais duas vezes para criar três retalhos de igual comprimento em forma de "W" (Figura 10).
      3. Dobre a cauda restante da fita adesiva sobre a borda das três abas. Com a cauda orientada em cima, numere as abas de 1 a 3 de cima para baixo. Numere os lados de 1 a 4, começando pela borda da cauda e movendo-se no sentido horário.
      4. No lado 4, remova uma lasca longitudinal do retalho 2, excluindo 1 cm em cada extremidade. Certifique-se de que a largura da lasca é de ~1 cm.
      5. Utilizando uma sutura inabsorvível revestida e trançada 0 para realizar suturas contínuas: pontos dos retalhos 1 e 3 juntos no lado 4, retalhos 1, 2 e 3 juntos no lado 3 e retalhos 1 e 2 juntos no lado 2. Corte um orifício de 2 cm através do centro do Flap 1.
   6. Com o Flap 1 voltado para baixo, alinhe o orifício com o ponto onde as linhas saem do colarinho e oriente a bolsa para que a abertura seja caudal. Certifique-se de que a bolsa esteja na linha média ou ligeiramente lateral ao pescoço dorsal.
   7. Puxe as linhas vermelhas e brancas através do orifício no Flap 1. Certifique-se de que as linhas fiquem planas entre os Retalhos 1 e 2, com o Retalho 3 voltado para cima (Figura 8).
   8. Usando uma sutura de polipropileno sintético, monofilamentar e inabsorvível 0, prenda a bolsa ao colar com uma sutura simples interrompida em cada canto e no meio de cada borda. Não sutura através da pele.

9. Cuidados pós-operatórios

1. Após a recuperação da anestesia, devolva o porco à sua gaiola doméstica. Devido à natureza mastigatória dos suínos, certifique-se de que o porco esteja alojado isoladamente para evitar a remoção do cateter por um porco conespecífico. Se alojado ao lado de outros suínos, coloque uma barreira para evitar a mastigação do cateter entre as gaiolas.
2. Durante o pós-operatório imediato, monitorar o animal pelo menos diariamente quanto a sinais de dor, infecção e cicatrização. Frequência respiratória, frequência cardíaca, temperatura, energia, apetite e consumo de água são bons indicadores de saúde durante esse período. Administrar doses adicionais de um analgésico (por exemplo, 0,12 mg/kg de LAB de liberação sustentada de buprenorfina [SR] a cada 48 h) se surgirem sinais de dor. Realizar a manutenção do cateter (passo 10) e inspeção visual do local da cirurgia diariamente, a partir do dia de pós-operatório (DPO) 1.
   OBS: Os pesquisadores que optarem por adotar esta técnica de inserção do cateter de Hickman podem modificar esse procedimento com analgesia multimodal; no entanto, os AINEs podem alterar os achados do estudo dependendo de outros elementos do desenho experimental. Isso deve ser considerado antes de planejar o regime de analgesia.
3. Uma vez cicatrizado o local cirúrgico do cateter, realizar verificações de monitorização de manutenção no animal: realizar medições semanais de peso corporal e realizar verificações visuais durante a manutenção diária do cateter. Consulte um veterinário se surgirem sinais de infecção, como diminuição do apetite ou diminuição da energia. Se forem necessários hemogramas completos, colete sangue da linha vermelha.
   NOTA: Uma leucocitose caracterizada por uma neutrofilia é frequentemente observada em animais com infecção.

10. Manutenção do cateter

1. Designar a linha vermelha mais larga exclusivamente para coletas de sangue e a linha branca mais estreita exclusivamente para administração de medicamentos. Manuseie sempre o cateter com as mãos enluvadas.
   NOTA: Essas funções podem ser diferentes dependendo do desenho do estudo.
2. Lave a linha vermelha (coleta de sangue designada) diariamente para avaliar a patência e evitar a coagulação da seguinte maneira:
   1. Use técnica asséptica: Limpe a clave e a ponta da seringa com uma almofada de álcool entre cada etapa. Se a clave ou seringa se tornar estéril, substitua o material contaminado antes de continuar.
   2. Lave 1 mL de solução fisiológica a 0,9% na linha. Confirme se o líquido é capaz de lavar sem força excessiva, a fim de evitar empurrar coágulos da linha para dentro do animal.
   3. Puxe 2 mL de líquido. Confirme a patência da linha observando que o líquido retirado é sangue vermelho escuro.
   4. Se for necessária a colheita de sangue, coloque uma seringa vazia para retirar a quantidade adequada de sangue.
      NOTA: Se o excesso de sangue for coletado, o sangue pode ser devolvido ao animal, empurrando-o de volta através da linha para diminuir a perda de sangue. Isso só deve ser feito se a seringa contendo sangue continuar a ser manuseada usando técnica asséptica. Não coloque sangue contaminado de volta na linha central.
   5. Lave a linha com 5 mL de solução salina heparinizada 100 USP/mL, ou uma quantidade necessária para lavar toda a linha. Aperte a linha. Devolva a linha para a bolsa de proteção, tomando cuidado para não torcer ou amarrar a linha.
3. Lave a linha branca (administração de medicamentos projetada) diariamente para avaliar a patência e evitar a coagulação da seguinte maneira:
   1. Use técnica asséptica: limpe a clave e a ponta da seringa com uma almofada de álcool entre cada etapa. Se a clave ou seringa se tornar estéril, substitua o material contaminado antes de continuar.
   2. Lave 1 mL de solução fisiológica a 0,9% na linha. Confirme se o líquido é capaz de lavar sem força excessiva, a fim de evitar empurrar coágulos da linha para dentro do animal.
   3. Administrar medicamentos usando esta linha em uma velocidade e diluição específicas do medicamento. Lave a linha com 1-3 mL de solução fisiológica a 0,9% entre os medicamentos.
   4. Lave a linha com 5 mL de solução salina heparinizada 100 USP/mL, ou uma quantidade necessária para lavar toda a linha. Aperte a linha. Devolva a linha para a bolsa de proteção, tomando cuidado para não torcer ou amarrar a linha.
4. Verifique as claves diariamente em busca de sinais de disfunção, quebra ou contaminação evidente com sangue, alimentos ou fezes. Em caso afirmativo, substitua a clave imediatamente. Inspecionar visualmente a bolsa de Hickman e o colar protetor diariamente para garantir que as suturas colocadas nos passos 8.2 e 8.3 permaneçam intactas.

Resultados

Mais de 100 suínos foram submetidos com sucesso à inserção de HC em nosso laboratório. O HC pode ser colocado e fixado de forma segura e correta em menos de 1 h com cirurgião, assistente, circulador e anestesista. A bolsa do cateter leva aproximadamente 15-20 minutos para fazer. A técnica é simples e fácil de ensinar e tem sido realizada por veterinários, residentes de cirurgia e estudantes de medicina seguindo instruções supervisionadas.

Os HCs permaneceram no local sem complicaç...

Discussão

Embora os CVCs sirvam a um espectro de funções em pesquisas com grandes animais, a literatura atual carece de uma abordagem consensual para uso seguro e sustentável em ensaios de longo prazo ao longo de 30 dias. O procedimento passo a passo desse protocolo para inserção do HC, fixação da pele e armazenamento em bolsa artesanal passou por ajustes significativos para melhoria da qualidade. Dessa forma, este protocolo apresenta uma técnica para uso de HC que permite acesso intravenoso eficiente e eficaz, garantindo ...

Materiais

Name	Company	Catalog Number	Comments
#10 blade	Medline	MDS15110
0.9% Sterile Sodium Chloride	Baxter	2F7123
0-0 Coated and Braided Nonabsorbable Suture	Covidien	S-196
0-0 Synthetic, Monofilament, Nonabsorbable Polypropylene Suture	Ethicon	8690H
1 inch Medical Tape	3M	1548S-1
10 USP units/mL Heparin flush	Becton, Dickinson and Company	306424
3-0 Braided Absorbable Suture	Covidien	SL-636 (cutting needle), GL-122 (taper needle)
3-0 Monofilament Absorbable Suture	Covidien	SM-922 (cutting needle), CM-882 (taper needle)
4-0 Coated and Braided Non-absorbable Suture Ties	Ethicon	A303H
70% Ethanol	Vedco	VINV-IPA7
Adson tissue forceps	MPM Medical Supply	132-508
Adson-Brown forceps	MPM Medical Supply	106-2572
Air warming blanket and pad	3M Bair Hugger	UPC 00608223595770
Backhaus towel clamp	MPM Medical Supply	117-5508
Brown needle holder	MPM Medical Supply	110-1513
Buprenorphine	PAR Pharmaceutical	3003408B
Cefazolin	Hikma Farmacuetica (Portugal)	PLB 133-WES/1
Chlorhexidine	Vet One	501027
Clave	Baxter	7N8399
Cotton Padding	Medline	NON6027
Debakey forceps	MPM Medical Supply	106-5015
Elastic Adhesive Bandage Tape	3M	XH002016489
Halstead mosquito forceps	MPM Medical Supply	115-4612
Hickman Catheter	Bard Access Systems	603710
Hickman Catheter Repair Kit, 7Fr, Red and White Connectors	Bard Access Systems	0601690 (red), 0601680 (white), 502017
Kelly hemostatic forceps	MPM Medical Supply	115-7014
Ketamine	Vet One	383010-03
Lactated Ringers	Baxter	2B2324X
Maropitant Citrate	Zoetis	106
Mayo scissors	MPM Medical Supply	103-5014
Metzenbaum scissors	MPM Medical Supply	132-711
Pantoprazole	JH Pharmacy	NDC 0143-9284-10
Scalpel blade handle	Medline	MDS10801
Vein Pick	SAI infusion technologies	VP-10
Veterinary Ophthalmic Ointment	Dechra	IS4398
Xylazine	Vet One	510004