전임상 돼지 모델에서 장기 혈관 접근을 위한 Hickman 카테터 사용

요약

돼지의 장기 혈관 접근을 위한 터널형 Hickman 카테터의 삽입 및 유지를 위한 신뢰할 수 있고 재현 가능한 접근법이 설명됩니다. 중심 정맥 카테터를 배치하면 깨어 있는 동물의 전혈을 매일 편리하게 샘플링하고 약물 및 수액을 정맥 투여할 수 있습니다.

초록

중심 정맥 카테터(CVC)는 혈액 모니터링, 신뢰할 수 있는 정맥 주사액 및 약물 투여를 포함한 광범위한 의료 응용 분야를 용이하게 하기 때문에 대규모 동물 연구에서 매우 중요한 장치입니다. 특히, 터널링된 다중 루멘 Hickman 카테터(HC)는 낮은 박리율과 합병증 발생률로 인해 돼지 모델에 일반적으로 사용됩니다. 다른 CVC에 비해 합병증이 적음에도 불구하고 HC 관련 이환율은 진행 중인 연구를 크게 지연시키거나 부정적인 영향을 미칠 수 있기 때문에 상당한 문제를 야기합니다. HC의 적절한 삽입 및 유지는 이러한 합병증을 예방하는 데 가장 중요하지만 모범 사례에 대한 합의는 없습니다. 이 프로토콜의 목적은 HC 관련 합병증 및 이환율을 완화하는 돼지에서 터널링된 HC의 삽입 및 유지를 위한 접근 방식을 포괄적으로 설명하는 것입니다. >100마리의 돼지에서 이러한 기술을 사용한 결과 최대 8개월까지 합병증이 없는 특허 라인을 얻을 수 있었고 카테터와 관련된 폐사나 복부 수술 부위의 감염이 없었습니다. 이 프로토콜은 HC의 수명을 최적화하는 방법과 사용 중 문제에 접근하기 위한 지침을 제공합니다.

서문

환자 치료에서 중심정맥 카테터(CVC)의 필수적인 역할은 편의성, 우수한 안전성 프로파일 및 다양성 덕분입니다¹. CVC의 기능에는 전체 비경구 영양, 조혈모세포 이식, 혈장분리술/성분채집술, 효율적인 수액, 혈액 또는 병약 투여에 대한 신뢰할 수 있는 접근이 포함됩니다². 수의학에서 CVC는 반복적인 정맥 천자 없이 자극성 약물과 혈액 샘플링을 빠르게 희석 하여 동물의 불편함을 최소화합니다³. 광범위한 응용 분야에도 불구하고 대형 동물 연구에서 CVC를 사용하는 것은 여전히 몇 가지 상당한 문제를 야기합니다⁴.

가이드와이어 또는 유도 카테터를 통한 경피적 CVC 삽입은 비수의학 연구자, 특히 심부 정맥 구조를 가진 동물에서 어려울 수 있다⁵. 부적절한 CVC 설치 기술은 부주의하게 인근 구조물에 배치되는 결과를 초래할 수 있으며, 초음파 유도 배치 또는 위치 결정의 시술 후 방사선 촬영이 필요할 수 있다(⁶). 그러나 인간 수술실에 비해 초음파는 많은 대형 동물 연구 실험실에서 쉽게 사용할 수 없습니다. 또한, 유치 카테터를 장기간 사용하면 동물에 의한 라인 꼬임, 천공, 감염 또는 탈출이 발생할 수 있으며, 적시 치료, 임상 모니터링 및 연구 성과가 중단될 수 있습니다 ^4,7. CVC를 교체하려면 자재 조달, 수술 일정, 금식 시간 및 방사선 사진 접근을 포함한 추가 자원이 필요합니다. 따라서 CVC 관련 합병증은 특히 돼지의 경우 상당한 기술적, 재정적 장벽을 초래하거나 생산적인 중개 연구에 지장을 줄 수 있습니다. 음식이나 배설물에 의한 오염, 케이지 벽을 긁는 것, 자극 부위를 걷어차는 것은 CVC를 손상시킬 수 있으며, CVC 관련 합병증의 위험은 장기간 사용으로 인해 증폭됩니다. 따라서 돼지에서 CVC를 안전하고 복잡하지 않게 유지하려면 CVC 선택, 배치, 고정, 보호, 위생 및 감시를 신중하게 고려해야 합니다.

이 프로토콜에 사용된 히크만 카테터(HC)는 폴리에스테르 커프와 1-3루멘을 가진 터널형 CVC로, 인간과 동물의 장기 정맥 접근에 일반적으로 사용됩니다 1,4,8,9. 터널형 카테터 접근법은 터널링되지 않은 변형에 비해 합병증 발생률 및 유지 관리 비용이 낮다는 것이 밝혀졌다^10,11,12. 커프는 피부 출구 부위를 둘러싼 피하 조직에 통합되어 HC 박리를 줄입니다. 다중 루멘 설계는 또한 약물 투여와 채혈을 분리할 수 있어 혈액 샘플 오염 및 부정확성을 최소화합니다. 그럼에도 불구하고 HC 사용에는 골절, 이동, 폐색 및 감염이 가장 흔한 어려움이 있습니다^13,14,15,16. 따라서 HC의 적절한 설치 및 유지보수는 중개 연구에 사용될 때 필수적인 기술입니다. 그러나, 현재의 문헌은 장기 임상시험^중 돼지에 HC를 사용하기 위한 모범 사례에 대한 지침을 거의 제공하지 않는다 ^5,6,17.

이 연구의 목적은 돼지의 장기적인 카테터 관련 합병증과 불편함을 최소화하는 내부 경정맥(IJV)에 HC 삽입, 피부 고정 및 내구성 있는 보호를 위한 최적화된 접근 방식을 설명하는 것입니다. HC 사용에 대한 중요한 고려 사항, 발생할 수 있는 잠재적 문제 및 이 접근 방식의 품질을 개선할 수 있는 수정 사항에 대한 설명이 포함되어 있습니다.

프로토콜

모든 동물 시술은 존스 홉킨스 대학 기관 동물 관리 및 사용 위원회(IACUC)에서 승인한 동물 프로토콜에 따라 수행되었습니다. HC 배치를 받는 수컷 및 암컷 돼지 균주에는 매사추세츠 종합병원(MGH) 돼지 군락의 미니어처 돼지, 유카탄 돼지 및 농업 공급업체의 요크셔 교배 돼지(20-40kg)가 포함됩니다. 돼지는 HC를 배치했을 때 3-10 개월 된 생후 다양했습니다. HC는 동물의 실험 절차와 관련하여 언제든지 배치될 수 있습니다. 그러나 기준 혈액 값을 수집할 수 있도록 미리 배치하는 것이 좋습니다. 또한 실험적 조작을 하기 전에 돼지에게 최소 1주일의 적응 기간을 주는 것이 좋습니다.

1. 수술 전 계획

1. 수술 전에 수의사가 모든 동물에 대한 철저한 임상 평가를 수행하도록 하십시오.
2. 시술 최소 12시간 전에 동물을 금식시키십시오(고형 음식 금지). 항상 물을 제공 하십시오. 통제된 약물 투여를 위해 동물의 무게를 잰다.
3. 수술 당일, 케타민(20-30mg/kg)과 자일라진(2-3mg/kg)을 하나의 주사기에 섞어 동물을 진정시킵니다. 필요한 경우 진정제(케타민 및 자일라진)를 천천히 정맥 주사로 투여합니다[IV]. 마취 상태에서 건조를 방지하기 위해 눈에 멸균 안과 연고를 사용하십시오.
4. 변연부 귀 정맥에 정맥 카테터를 삽입하고 시술 내내 0.9% 식염수 또는 젖산 링거 용액(LRS)의 5-10mL/(kg∙h)의 유지 유체를 투여합니다.
5. 동물이 등쪽 누운 상태일 때 적절한 크기의 기관내 튜브를 놓고 마취 기계에 연결하고 손 환기를 합니다(1-2 L O₂/min으로 0.5-3%의 이소플루란으로 유지).
6. 선제적 진통제(0.02mg/kg 부프레노르핀 IV) 투여; 필요에 따라 수술 중 부프레노르핀을 추가로 투여합니다. 수술 시작 10분 전에 예방적 항생제(20-22mg/kg 세파졸린 IV)를 투여하고 수술 중 90분마다 다시 투여합니다. 수술 시작 전에 프로토닉스(0.5-1.0mg/kg IV)와 구연산제 마로피탄트(1mg/kg IV)를 한 번 투여합니다.
7. 중심 정맥 카테터를 삽입하는 부위 역할을 할 복부 및 등쪽 목을 면도합니다. 클로르헥시딘 스크럽을 사용하여 수술 부위의 예비 준비를 수행합니다.
8. 돼지가 수술 마취제의 적절한 평면 내에 있는지 확인하십시오. 구개와 턱 긴장도를 테스트하여 마취 깊이를 평가합니다. 필요한 경우 흡입제 마취제를 늘리거나 추가 진정제(예: 케타민) IV를 천천히 투여하여 효과를 봅니다.
9. 돼지를 수술대로 옮깁니다.

2. 수술 중 모니터링

1. 유지 마취 상태에서 심박수 및 심전도, 비침습적 혈압, 맥박 산소 측정, 카프노그래피, 식도 또는 직장 온도를 지속적으로 모니터링하여 최소 15분마다 기록합니다.
   1. 사지나 꼬리의 혈압 커프를 통해 비침습적으로 혈압을 모니터링합니다.
   2. 호흡 및 흡입제 마취 투여를 보다 정확하게 조절하기 위해 인공호흡기를 사용하십시오. 인공호흡기 매개변수의 경우 일회 호흡량이 5-10mL/kg 범위인지 확인하십시오. 동물의 마취 깊이에 반응하여 절차 전반에 걸쳐 호흡수를 조정합니다. 최대 압력 한계를 20mmHg로 설정합니다.
2. 저체온증을 방지하기 위해 작동 내내 온도 조절이 가능한 따뜻한 공기 담요나 패드를 사용하십시오.

3. 수술 준비

1. 최소 2명(외과 의사 및 조수)을 불임으로 지정하고 최소 2명(순환기 및 마취의)을 비멸균 상태로 지정합니다.
2. 전신 마취 상태에서 돼지를 복부 누운 상태로 수술대에 놓고 다리를 고정하여 안정화시킵니다(그림 1).
3. 클로르헥시딘과 70% 에탄올을 번갈아 가며 3회 문지른 후 최소 10분 동안 피부 표면에 이온단을 바르는 무균 상태로 수술 부위를 준비합니다. 다음 두 가지 영역에 대한 멸균 준비를 수행합니다.
   1. 복부 쪽에서는 하악의 각도에서 흉골 중앙까지 확장되고 흉쇄유돌근의 측면 경계까지 양측으로 확장됩니다. 멸균 준비가 된 구역의 경계를 따라 멸균 수건을 놓습니다.
   2. 등쪽에서 배외측 목 동측을 목표 IJV에 준비합니다. 멸균 수건을 등쪽 목 아래와 등쪽 필드 위에 놓아 복부 영역에서 작업하는 동안 무균 상태를 유지합니다.
4. 돼지 위에 멸균 드레이프를 놓습니다. 드레이프에서 직사각형 영역을 잘라 복부 필드를 노출시킵니다.
5. 별도의 멸균 드레이프 테이블에서 이중 루멘 HC를 긴 도입기 조각에 연결합니다.
   1. 각 루멘 라인의 끝에 있는 루어 잠금 어댑터에 클래브를 나사로 고정합니다(너비: 빨간색, 좁음: 흰색). 빨간색과 흰색 선을 0.9% 식염수 10mL로 씻어냅니다. 그런 다음 두 줄을 모두 고정합니다.

4. 내부 경정맥 식별 및 준비

1. 복부 필드에서 기관과 흉쇄유돌돌기의 내측 경계 사이를 4cm 절개합니다(그림 2). 판골을 나누고 결합 조직을 절개하여 흉쇄유돌근의 측면 경계에 있는 IJV를 밝힙니다.
2. 3-4 코팅 및 꼰 비흡수성 봉합사 타이로 가지를 나누어 IJV의 4-0cm를 분리합니다. 주변 결합 조직에서 원주방향으로 절개합니다. 카테터 삽입 중에 IJV를 매달고 안정화하기 위해 두 개의 코팅 및 편조 비흡수성 봉합사를 만듭니다(그림 3).
   1. IJV의 두개골 끝에서 코팅되고 꼰 비흡수성 봉합사 넥타이를 혈관 아래에 두 번 통과시켜 주위에 고리를 만듭니다.
   2. IJV의 꼬리 끝에서 코팅되고 꼰 비흡수성 봉합사 넥타이를 혈관 아래에 한 번 통과시켜 슬링을 만듭니다.
3. 봉합사 넥타이에서 견인력을 해제하십시오. 멸균 식염수를 적신 거즈를 수술 부위에 넣어 혈관을 보호하고 넥타이 위치를 유지합니다.

5. 카테터 출구 부위 준비

1. 비수술적 측면을 향한 측면 기울기를 통해 돼지의 위치를 변경하여 동측 등쪽 수술 필드를 노출시킵니다. 팔다리를 다시 고정합니다(그림 4).
2. #10 블레이드 메스를 사용하여 원하는 카테터 출구 부위의 피부에 0.5cm(척추 옆 3cm, 꼬리 부분 5cm)에 구멍을 뚫습니다(그림 5).

6. 카테터의 도입 및 터널링

1. 복부 필드에서 젖은 거즈를 제거하고 분리된 IJV 세그먼트를 다시 식별합니다. 카테터를 피하로 삽입할 표적 진입 부위를 선택합니다. 이것이 IJV와 같은 깊이, 흉쇄유돌근보다 더 깊은, 그리고 두 개의 코팅 및 편조 비흡수성 봉합사 사이에 있는지 확인합니다(그림 6).
   알림: 피하 패턴에는 봉합사 매듭이 피부 아래에 묻혀 있어야 합니다. 깊은 피부 봉합사는 안정성과 유지를 보장하기 위해 여러 번 매듭을 짓기 때문에 때때로 원하는 것보다 더 큰 공간을 차지하고 피부를 통해 노출될 수 있습니다. 이 작은 노출 부위는 크게 문제가 되지 않으며, 이 작은 노출 부위에도 불구하고 피부는 적절하게 치유되어야 합니다.
2. 주로 사용하는 손은 등쪽 수술 필드에 놓고 주로 사용하지 않는 손은 복부 수술 영역에 놓습니다. 등쪽 수술 분야에서 HC 도입기를 잡습니다. 카테터의 나머지 길이를 멸균장 위의 공기 중에 매달아 놓습니다.
3. 주로 사용하는 손으로 입구를 출구 천자 부위에 삽입하고 장치 끝이 복부 필드에서 주로 사용하지 않는 손을 향하도록 합니다.
4. 유도기의 끝을 표면과 내측으로 밀어 지방 조직을 통해 카테터를 터널링하고 주로 사용하지 않는 손으로 팁이 나오는 것을 느낍니다. 팁이 표적 진입 부위에 나오면 메인 라인의 커프가 등쪽 필드의 피부 표면 바로 아래에 올 때까지 피하 터널을 통해 주입기와 카테터를 당깁니다.
5. 선에서 소개자를 잘라냅니다. 복부 수술 부위의 젖은 거즈를 교체합니다.

7. 카테터 삽입

1. 돼지를 누운 자세로 재배치하십시오. 팔다리를 다시 고정하고, 멸균 장갑을 교체하고, 복부 수술 부위에서 거즈를 제거합니다.
2. Clamp 두개골 및 꼬리 코팅 및 편조 비흡수성 봉합사 타이의 끝. CL을 놓으십시오ampIJV 세그먼트가 약간 올라가도록 커튼에 s.
3. 카테터의 끝을 돼지 흉골 길이의 1/3까지 닿을 수 있는 길이로 자릅니다.
   알림: 라인의 파편화나 막힘을 방지하기 위해 라인에 수직인 단일 절단으로 팁을 가로질러 카테터 팁의 조작을 최소화합니다. 삽입된 HC는 우심방의 두개골 바로 옆에 있는 상대정맥 내에 있어야 합니다(그림 7).
4. Adson-Brown 겸자를 사용하여 분리된 IJV 세그먼트의 중간을 잡습니다. 같은 지점에서 구부러진 Metzenbaum 가위로 용기의 중간을 자릅니다.
5. Adson-Brown 겸자로 IJV 세그먼트를 고정하면서 정맥 픽을 혈관의 꼬리 세그먼트에 삽입합니다(그림 6). 두개골 봉합사 타이의 장력을 유지하면서 카테터 끝을 혈관에 꼬리 방향으로 삽입하고 끼웁니다. 카테터가 완전히 삽입되면 꼬리 봉합사를 한 번 매듭을 지어 HC를 임시로 고정합니다.
6. 0.9% 생리식염수 3-5mL를 사용한 후 100 USP 단위/mL 헤파린 식염수 5mL를 사용하여 채혈 및 플러시를 통해 멸균 필드 외부에서 두 라인의 개통을 테스트합니다.
7. 개통이 확인되면 꼬리 봉합사를 한두 번 더 매듭을 지어 정맥 카테터 주위의 원위 IJV 세그먼트를 고정합니다. 두개골 봉합사를 한 번 매듭을 지어 IJV 분절의 혈류를 차단합니다.
8. 복부 수술 부위를 여러 겹으로 닫습니다: 3-0 편조 흡수성 봉합사를 사용한 판자형 단순 단속 봉합사와 3-0 모노필라멘트 흡수성 봉합사를 사용한 피하 달리기 봉합사.

8. 카테터 고정

1. 돼지의 드레이프를 풀고 등쪽 누운 자세로 위치를 변경합니다. 팔다리를 다시 고정합니다.
2. 카테터 분리를 방지하기 위해 HC를 동물의 피부에 3개 이상 고정합니다(그림 8).
   1. HC가 "U"자 모양을 형성하도록 방향을 지정합니다.
   2. 점 식별: 첫 번째 지점이 출구 부위에서 2cm 이내에 있고, 두 번째 지점이 빨간색과 흰색 선이 분기되는 카테터의 갈래 부분 위에 있고, 세 번째 지점이 처음 두 점 사이의 "U" 상단에 있는지 확인합니다.
   3. 각 지점에서 카테터 위에 ~3cm 크기의 1인치(인치) 의료용 테이프를 붙여서 양쪽에 날개를 만듭니다. 0 합성, 모노필라멘트, 비흡수성 폴리프로필렌 봉합사를 사용하여 단일 단순 단속 봉합사를 통해 각 날개를 피부에 고정합니다. 갈래 부분의 두 번째 지점에서 두 선 사이의 틈을 통해 단일 중단 봉합사를 추가하고 매듭이 자극을 방지하기 위해 테이프 위에 놓여 있는지 확인합니다.
      알림: 등쪽 목 천자 부위의 크기에 따라 크기를 줄이고 부주의한 카테터 변위의 위험을 최소화하기 위해 간단한 중단 봉합사를 배치할 수 있습니다. 카테터 주위의 커프가 피하로 유지되는지 확인합니다.
   4. 0.9% 생리식염수 10mL와 헤파린화 식염수 10mL를 사용하여 채혈 및 세척을 통해 멸균 필드 외부의 흰색 및 빨간색 라인의 개통을 테스트합니다.
3. 보호 칼라를 만듭니다.
   1. 면 패딩으로 4를 목에 걸고 다음과 같은 방법으로 3-4 번 감습니다.
      1. 왼쪽 두개골 모서리의 등쪽 목에서 시작하여 오른쪽 꼬리 모서리를 향해 대각선으로 감싸고 빨간색과 흰색 선의 위 또는 아래로 이동합니다. 왼쪽 꼬리 모서리를 향해 목 아래를 감쌉니다. 오른쪽 두개골 모서리를 향해 대각선으로 감싸고 빨간색과 흰색 선의 위 또는 아래를 감싼 다음 왼쪽 두개골 모서리의 시작점까지 감쌉니다. 각 후속 랩에서 빨간색과 흰색 선의 위와 아래를 번갈아 가며 이동합니다.
         알림: 칼라는 HC의 피부 부착 부위와 메인 라인을 완전히 덮어야 합니다. 빨간색과 흰색 선만 생략하고 액세스할 수 있어야 합니다.
   2. 면 패딩과 같은 방식으로 목에 탄성 접착 테이프로 3 또는 4를 감습니다(8.4.1단계). 붕대가 선을 덮는 경우 붕대에 슬릿을 만들어 선을 수용합니다.
      알림: 이 층을 너무 꽉 감싸지 않도록 주의하십시오 - 손가락은 보호 칼라 아래로 원주방향으로 쉽게 미끄러질 수 있어야 합니다.
   3. 0 합성, 모노필라멘트, 비흡수성 폴리프로필렌 봉합사를 사용하여 붕대 끝의 각 모서리를 아래 층에 봉합하여 위치를 유지합니다.
   4. 0 합성, 모노필라멘트, 비흡수성 폴리프로필렌 봉합사를 사용하여 두개골과 꼬리 끝 양쪽의 척추 기둥 측면에 수평 매트리스 봉합사를 묶어 칼라를 피부에 고정합니다. 매듭이 붕대 위에 있는지 확인하십시오.
   5. 빨간색과 흰색 선을 보호하고 보관하기 위해 카테터 파우치를 만듭니다(그림 9).
      1. 길이 ~ 100cm, 너비 ~ 7.5cm의 탄성 접착 테이프를 자릅니다.
      2. ~16cm 테이프 세그먼트를 측정합니다. 접착면이 서로 마주 보도록 테이프를 접어 두 겹의 테이프로 16cm 플랩을 만듭니다. 나머지 테이프를 사용하여 이 과정을 두 번 더 반복하여 "W"자 모양으로 길이가 같은 세 개의 플랩을 만듭니다(그림 10).
      3. 나머지 테이프 꼬리를 세 개의 플랩 가장자리 위로 접습니다. 꼬리가 위쪽을 향하도록 플랩을 위에서 아래로 1-3번 넘깁니다. 꼬리 가장자리에서 시작하여 시계 방향으로 이동하면서 측면 번호를 1-4로 매깁니다.
      4. 측면 4의 양쪽 끝에서 2cm를 제외하고 플랩 1에서 세로 슬라이버를 제거합니다. 은색의 너비가 ~1cm인지 확인합니다.
      5. 0 코팅 및 편조 비흡수성 봉합사를 사용하여 러닝 봉합사 수행: 측면 4에 플랩 1과 3을 함께 꿰매고, 측면 3에 플랩 1, 2, 3을 함께 꿰매고, 측면 2에 플랩 1과 2를 함께 꿰매십시오. 플랩 1의 중앙을 통해 2cm 구멍을 자릅니다.
   6. 플랩 1이 아래를 향하도록 하여 선이 칼라에서 나오는 지점에 구멍을 맞추고 입구가 꼬리가 되도록 파우치의 방향을 맞춥니다. 파우치가 정중선에 있거나 등쪽 목의 약간 측면에 있는지 확인하십시오.
   7. 플랩 1의 구멍을 통해 빨간색과 흰색 선을 당깁니다. 플랩 3이 위를 향하도록 하여 플랩 1과 2 사이에 선이 평평하게 놓여 있는지 확인합니다(그림 8).
   8. 0 합성 모노필라멘트, 비흡수성 폴리프로필렌 봉합사를 사용하여 각 모서리와 각 가장자리의 중간에 간단한 단속 봉합사로 파우치를 칼라에 고정합니다. 피부를 통해 봉합하지 마십시오.

9. 수술 후 관리

1. 마취에서 회복된 후 돼지를 홈 케이지로 돌려보냅니다. 돼지는 씹는 특성이 있기 때문에 동종 돼지가 카테터를 제거하는 것을 방지하기 위해 돼지를 단독으로 수용해야 합니다. 다른 돼지 옆에 기르는 경우 케이지 사이에 카테터를 씹지 않도록 장벽을 설치하십시오.
2. 수술 직후 기간 동안 적어도 매일 동물의 통증, 감염 및 치유 징후를 모니터링하십시오. 호흡수, 심박수, 체온, 에너지, 식욕 및 물 섭취량은 이 기간 동안 좋은 건강 지표입니다. 통증 징후가 나타나면 진통제를 추가로 투여합니다(예: 48시간마다 0.12mg/kg 부프레노르핀 서방형[SR] LAB). 수술 후일(POD)부터 매일 카테터 유지 관리(10단계)와 수술 부위 육안 검사를 수행합니다 1.
   참고: 이 Hickman 카테터 삽입 기술을 채택하기로 선택한 연구원은 다중 모드 진통제로 이 절차를 수정할 수 있습니다. 그러나, NSAIDs는 실험 디자인의 다른 성분에 따라서 학문 결과를 바꾸지도 모릅니다. 진통 요법을 계획하기 전에 이것을 고려해야 합니다.
3. 카테터의 수술 부위가 치유되면 동물에 대한 유지 관리 모니터링 점검을 수행합니다: 매주 체중을 측정하고 매일 카테터 유지 관리 중에 육안 검사를 수행합니다. 식욕 감소나 에너지 감소와 같은 감염 징후가 나타나면 수의사와 상담하십시오. 완전한 혈구 수가 필요한 경우 빨간색 선에서 혈액을 채취하십시오.
   참고: 호중구증가증을 특징으로 하는 백혈구 증가증은 감염된 동물에서 종종 관찰됩니다.

10. 카테터 유지 관리

1. 더 넓은 빨간색 선은 채혈 전용으로, 좁은 흰색 선은 약물 투여 전용으로 지정합니다. 항상 장갑을 낀 손으로 카테터를 다루십시오.
   참고: 이러한 역할은 연구 설계에 따라 다를 수 있습니다.
2. 다음과 같이 개통을 평가하고 응고를 방지하기 위해 빨간색(지정된 채혈) 라인을 매일 세척하십시오.
   1. 무균 기술 사용: 각 단계 사이에 알코올 패드로 클레이브와 주사기 팁을 닦습니다. 클레이브 또는 주사기가 멸균되지 않으면 계속하기 전에 오염된 물질을 교체하십시오.
   2. 0.9% 식염수 1mL를 라인에 넣습니다. 혈전이 라인에서 동물로 밀려나는 것을 방지하기 위해 과도한 힘 없이 액체를 씻어낼 수 있는지 확인하십시오.
   3. 2mL의 액체를 뒤로 당깁니다. 뒤로 당겨진 액체가 검붉은 피인 것을 관찰하여 라인 개통성을 확인합니다.
   4. 채혈이 필요한 경우 빈 주사기를 부착하여 적절한 양의 혈액을 다시 채취합니다.
      알림: 과도한 혈액을 채취하면 혈액 손실을 줄이기 위해 라인을 통해 혈액을 뒤로 밀어 동물에게 되돌릴 수 있습니다. 이것은 혈액이 들어 있는 주사기를 무균 기술을 사용하여 계속 취급하는 경우에만 수행해야 합니다. 오염된 혈액을 중앙선에 다시 넣지 마십시오.
   5. 5mL의 100 USP/mL 헤파린 처리 식염수 또는 전체 라인을 세척하는 데 필요한 양으로 라인을 세척합니다. Clamp 라인. 라인이 꼬이거나 매듭이 생기지 않도록 주의하면서 라인을 보호 파우치에 다시 넣습니다.
3. 다음과 같이 개통을 평가하고 응고를 방지하기 위해 흰색(설계된 약물 투여) 라인을 매일 세척하십시오.
   1. 무균 기술 사용: 각 단계 사이에 알코올 패드로 클레이브와 주사기 팁을 닦습니다. 클레이브 또는 주사기가 멸균되지 않으면 계속하기 전에 오염된 물질을 교체하십시오.
   2. 0.9% 식염수 1mL를 라인에 넣습니다. 혈전이 라인에서 동물로 밀려나는 것을 방지하기 위해 과도한 힘 없이 액체를 씻어낼 수 있는지 확인하십시오.
   3. 이 라인을 사용하여 약물별 속도와 희석으로 약물을 투여합니다. 약물 사이에 0.9% 식염수 1-3mL로 라인을 씻어냅니다.
   4. 5mL의 100 USP/mL 헤파린 처리 식염수 또는 전체 라인을 세척하는 데 필요한 양으로 라인을 세척합니다. Clamp 라인. 라인이 꼬이거나 매듭이 생기지 않도록 주의하면서 라인을 보호 파우치에 다시 넣습니다.
4. 쇄골에 기능 장애, 파손 또는 혈액, 음식 또는 대변으로 인한 명백한 오염의 징후가 있는지 매일 확인하십시오. 그렇다면 즉시 클레이브를 교체하십시오. 매일 Hickman 파우치와 보호 칼라를 육안으로 검사하여 8.2 및 8.3단계에서 배치한 봉합사가 손상되지 않았는지 확인합니다.

결과

100마리 이상의 돼지가 우리 실험실에서 HC 삽입에 성공했습니다. HC는 외과의, 보조원, 서큘레이터 및 마취사와 함께 1시간 이내에 안전하고 정확하게 배치하고 고정할 수 있습니다. 카테터 파우치는 만드는 데 약 15-20분이 걸립니다. 이 기술은 간단하고 가르치기 쉬우며 수의사, 외과 레지던트 및 의대생이 감독 지시에 따라 수행했습니다.

HC는 최대 8개월 동안 합병증이나 재수...

토론

CVC는 대동물 연구에서 다양한 기능을 수행하지만, 현재 문헌에는 30일 이상의 장기 임상시험에서 안전하고 지속 가능한 사용에 대한 합의된 접근 방식이 부족합니다. 이 프로토콜의 HC 삽입, 피부 고정 및 수제 파우치 보관을 위한 단계적 절차는 품질 향상을 위해 상당한 조정을 거쳤습니다. 따라서 이 프로토콜은 동물 복지를 보장하고 합병증을 최소화하면서 효율적이고 효과적인 정맥 주사를 가?...

자료

Name	Company	Catalog Number	Comments
#10 blade	Medline	MDS15110
0.9% Sterile Sodium Chloride	Baxter	2F7123
0-0 Coated and Braided Nonabsorbable Suture	Covidien	S-196
0-0 Synthetic, Monofilament, Nonabsorbable Polypropylene Suture	Ethicon	8690H
1 inch Medical Tape	3M	1548S-1
10 USP units/mL Heparin flush	Becton, Dickinson and Company	306424
3-0 Braided Absorbable Suture	Covidien	SL-636 (cutting needle), GL-122 (taper needle)
3-0 Monofilament Absorbable Suture	Covidien	SM-922 (cutting needle), CM-882 (taper needle)
4-0 Coated and Braided Non-absorbable Suture Ties	Ethicon	A303H
70% Ethanol	Vedco	VINV-IPA7
Adson tissue forceps	MPM Medical Supply	132-508
Adson-Brown forceps	MPM Medical Supply	106-2572
Air warming blanket and pad	3M Bair Hugger	UPC 00608223595770
Backhaus towel clamp	MPM Medical Supply	117-5508
Brown needle holder	MPM Medical Supply	110-1513
Buprenorphine	PAR Pharmaceutical	3003408B
Cefazolin	Hikma Farmacuetica (Portugal)	PLB 133-WES/1
Chlorhexidine	Vet One	501027
Clave	Baxter	7N8399
Cotton Padding	Medline	NON6027
Debakey forceps	MPM Medical Supply	106-5015
Elastic Adhesive Bandage Tape	3M	XH002016489
Halstead mosquito forceps	MPM Medical Supply	115-4612
Hickman Catheter	Bard Access Systems	603710
Hickman Catheter Repair Kit, 7Fr, Red and White Connectors	Bard Access Systems	0601690 (red), 0601680 (white), 502017
Kelly hemostatic forceps	MPM Medical Supply	115-7014
Ketamine	Vet One	383010-03
Lactated Ringers	Baxter	2B2324X
Maropitant Citrate	Zoetis	106
Mayo scissors	MPM Medical Supply	103-5014
Metzenbaum scissors	MPM Medical Supply	132-711
Pantoprazole	JH Pharmacy	NDC 0143-9284-10
Scalpel blade handle	Medline	MDS10801
Vein Pick	SAI infusion technologies	VP-10
Veterinary Ophthalmic Ointment	Dechra	IS4398
Xylazine	Vet One	510004