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A rede mitocondrial é extremamente complexa, tornando-a muito difícil de analisar. Uma nova ferramenta MATLAB analisa mitocôndrias confocais ao vivo em imagens de timelapse, mas resulta em um grande volume de saída que requer atenção manual individual. Para resolver esse problema, uma otimização de rotina foi desenvolvida, permitindo uma análise rápida dos arquivos.
A complexa rede mitocondrial torna muito desafiador segmentar, acompanhar e analisar células vivas. As ferramentas MATLAB permitem a análise de mitocôndrias em arquivos timelapse, simplificando e acelerando consideravelmente o processo de processamento de imagens. No entanto, as ferramentas existentes produzem um grande volume de saída, exigindo atenção manual individual, e as configurações experimentais básicas têm uma saída de milhares de arquivos, cada um exigindo manuseio extenso e demorado.
Para resolver essas questões, uma otimização de rotina foi desenvolvida, tanto em código MATLAB quanto em formulários live-script, permitindo uma análise rápida de arquivos e reduzindo significativamente a leitura de documentos e o processamento de dados. Com uma velocidade de 100 arquivos/min, a otimização permite uma análise geral rápida. A otimização alcança a saída de resultados pela média de dados específicos de quadros para mitocôndrias individuais ao longo de períodos de tempo, analisando dados de maneira definida, consistente com a saída de ferramentas existentes. Imagens confocais ao vivo foram realizadas usando o corante tetrametilrodamina éster, e a otimização de rotina foi validada pelo tratamento de células neuronais com agonistas do receptor do ácido retinóico (RAR), cujos efeitos sobre as mitocôndrias neuronais estão estabelecidos na literatura. Os resultados foram consistentes com a literatura e permitiram uma caracterização mais detalhada do comportamento das redes mitocondriais em resposta à modulação RAR isoform-específica.
Esta nova metodologia permitiu a caracterização rápida e validada da rede mitocondrial de neurônios inteiros, mas também permite a diferenciação entre axônio e mitocôndrias de corpo celular, uma característica essencial para aplicação no campo da neurociência. Além disso, esse protocolo pode ser aplicado a experimentos utilizando tratamentos de ação rápida, permitindo a obtenção de imagens das mesmas células antes e após os tratamentos, transcendendo o campo da neurociência.
As mitocôndrias celulares estão no centro de todos os estados fisiológicos, e uma compreensão completa de sua homeostase (mitostase) e comportamento é fundamental para auxiliar na identificação do tratamento farmacológico para uma ampla gama de doenças, incluindo câncer e doença de Alzheimer 1,2.
As mitocôndrias desempenham papéis celulares cruciais na homeostase energética, geração de ATP, tamponamento de cálcio e regulação de EROs, e a mitostase é essencial para manter a homeostase proteica, uma vez que as chaperonas moleculares são dependentes de energia3.....
OBS: Este protocolo tem duas etapas principais: uma etapa de laboratório úmido, envolvendo cultura de células e microscopia confocal viva para obtenção de imagens de mitocôndrias vivas (Figura 1) e uma etapa in silico para análise das imagens obtidas (Figura 2). Para a análise automatizada dos dados de mitocôndrias com imagens ao vivo em 3D, foi utilizado o mitômetro de aplicação MATLAB, conforme fornecido por Lefebvre et al.9. A otimização de rotina é escrita no MATLAB. O software, as versões atualizadas e o processamento de Macros ImageJ estão disponíveis gratuitamente on-li....
Para aprimorar e acelerar a análise de arquivos de saída em .txt formato, foi codificada uma rotina de otimização que lê dados consistentes com os arquivos de saída do Mitometer .txt, com colunas representando um quadro e linhas representando mitocôndrias identificadas. A otimização de rotina produz dados em um único valor por parâmetro, calculando a média dos quadros para cada mitocôndria identificada e, em seguida, calculando a média dos resultados de todas as mitocôndrias por campo visual. A rotina dese.......
A imagem de células vivas produz arquivos grandes que exigem processamento de computação sério, mas mesmo as ferramentas mais recentes exigem extensa entrada manual para processar. Esta otimização de rotina é focada em simplificar o processo de análise de mitocôndrias no Mitômetro, pois esta ferramenta apresenta um equilíbrio muito bom entre a entrada do usuário e a saída de dados. Uma comparação abrangente entre diferentes ferramentas para análise de imagens mitocondriais foi previamente revisada
Os autores declaram não haver conflitos de interesse.
A aquisição das imagens foi realizada no equipamento LiM do iBiMED, um nó do PPBI (Plataforma Portuguesa de BioImagem): POCI-01-0145-FEDER-022122. Este trabalho contou com o apoio da FCT (EXPL/BTM-SAL/0902/2021) LCF (CI21-00276), uma bolsa a DT da Fundação para a Ciência e Tecnologia do Ministério da Educação e Ciência (2020.02006.CEECIND), uma bolsa da ATG-The Gabba Alumni Association to VP, e do Instituto de Biomedicina-iBiMED, Universidade de Aveiro.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
AM580 | Sigma-Aldrich | A8843 | |
BDNF | Thermo-Fisher | RP8642 | |
BMS493 | Tocris Bioscience | 3409 | |
CD2314 | Tocris Bioscience | 3824 | |
Ch55 | Tocris Bioscience | 2020 | |
Foetal Bovine Serum | Thermo-Fisher | 10270106 | |
GraphPad Prism v4.0 | GraphPad Software, La Jolla | n/a | |
Ham’s F12 Nutrient Mix | Thermo-Fisher | 21765029 | |
MATLAB R2022a | MathWorks | n/a | |
Minimal Essential Medium | Thermo-Fisher | 31095 | |
Nunc Glass Bottom Dishes | Thermo-Fisher | 150680 | |
Phosphate Buffer Saline Solution | Thermo-Fisher | 28372 | |
Retinoic acid | Sigma-Aldrich | R2625 | |
TMRM | Thermo-Fisher | T668 | |
Zeiss LSM 510 | Carl Zeiss | n/a | Equiped with live-cell imaging culture chamber and 63x oil immersion objective |
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