<p class="jove_content"&gt; Os estudos atuais são suportados pelo National Heart, Lung, and Blood Institute Grant R01-HL0921, R01-DK083385 e R01HL098294 para HK Eltzschig, o 1K08HL102267-01 a T. Eckle e Fundação para a Educação Anestesia e Bolsas de Investigação para T. Eckle e HK Eltzschig, e da American Heart Association para Grant T. Eckle e Eltzschig HK e Deutsche Forschungsgemeinschaft bolsa de pesquisa (DFG) para M. Koeppen.</p

Observações gerais: Todas as operações devem ser realizadas em um microscópio de dissecação vertical (Olympus, SZX10 com Z-Axis Mensagem Crank com STU2 Fique lança Stand) e usando um coagulador cirúrgica (11). Os grupos experimentais devem ser combinados da melhor forma possível na idade e peso para garantir a comparabilidade dos resultados. Administração de temperatura, pressão arterial anestesia, e fluido deve ser estável por toda parte. 1. Anestesia e preparação traquéia <ol><li> Use camundongos C57BL / 6 que são pelo menos 10 semanas de idade e tem um corpo de 22-25 g. Induzir a anestesia com pentobarbital sódico na dose de um ip 70 mg / kg peso corporal (6). Manter a anestesia com cerca de 10 mg / kg / h de sódio pentobarbital. Seja cauteloso com overdose uma vez que este pode reduzir significativamente a pressão arterial. Re-dose de pentobarbital - mesmo depois de horas-pode levar a um aumento severo dos níveis plasmáticos. </li><li> Após indução da anestesia, os ratos segura em posição supina com as extremidades superiores e inferiores anexado à mesa com uma fita e uma sutura presa aos tornozelos. Faça o mesmo para a cabeça, usando os dentes. Restrição suficiente é importante para uma intubação de sucesso e uma cirurgia bem controlada. Antes da cirurgia, cobrir o mouse com óleo mineral para reduzir o risco de alergia cabelo mouse. A fim de assegurar que a temperatura corporal permanece estável cobrir os ratos com filme de alimentos disponíveis comercialmente. </li><li> Camundongos colocar em uma mesa aquecida com temperatura controlada (RT, Effenberg, Munique, Alemanha) com uma sonda termômetro retal ligado ao controlador de retorno térmico para manter a temperatura corporal a 37 ° C. </li><li> Expor a traquéia cirurgicamente. Dissecar laterais e dorsal da traquéia do tecido conjuntivo e coloque duas fio de seda 3,0 cirúrgico (aparelho Harvard, EUA) a cada 10 cm de comprimento por baixo da traquéia. As suturas devem ser de aproximadamente 1 cm. </li><li> Cuidadosamente inciso traquéia 3-4 mm abaixo da laringe entre duas cartilagens circular usando uma tesoura McPherson-Vannas (8 cm, lâmina reta; Instrumentos de Precisão World, EUA). Certifique-se de não causar um sangramento, já que isso pode confundir os parâmetros de resultados. </li><li> Realizar uma intubação traqueal com cânula de polietileno blunt (INSYTE 22g, Beckton Dickinson, EUA). Insira a ponta da cânula de polietileno em um ângulo de 85 graus na traquéia. Em seguida, incline a cânulas por isso está de acordo com a luz traqueal. Lentamente avanço do tubo mais abaixo da traquéia até a ponta da cânula desapareceu na abertura do tórax. Fixar o tubo nesta posição com o fio de seda dois cirúrgica colocada dorsal da traquéia (ver 1.4). </li></ol> 2. Técnica de ventilação mecânica da lesão pulmonar induzida <ol><li> Ligue o tubo a um ventilador. Para induzir a lesão pulmonar usamos uma pressão técnica de ventilação controlada usando um C 900 Servo da Siemens (DRE Veterinária, EUA). Animais serão ventiladas com pico de pressão inspiratória de 45 mbar, freqüência de 80 respirações / min e uma pressão positiva expiratória final de 0-3 mbar com uma FiO 2 = 1,0. A inspiração à relação de expiração deve ser de 1:1. Apesar do fato de que o C 900 Servo é construído como ventilador para os seres humanos, a sua utilização em um ambiente de ventilação pressão controlada excelentes trabalhos para a ventilação de camundongos. </li><li> Monitor de freqüência cardíaca com ECG (por exemplo, Hewlett Packard, B blingen, Alemanha). Certifique-se que a freqüência cardíaca não cai abaixo de 400. Deve-se ver uma mudança do eixo do coração para a direita, quando a ventilação mecânica é instituído como um sinal de aumento da pressão arterial pulmonar decorrente de um aumento na pressão intratorácica. Se o rato se desenvolve bradicardia, verifique a temperatura ea dose do anestésico / concentração. Xylacin / cetamina induz anestesia um coração coração de 250 / min e não é recomendada. </li><li> Aplique uma reposição de líquidos adequada. Uma infusão com solução salina 0,1 ml / hora através de um cateter arterial ou venosa deve ser realizada antes da ventilação e garantir o arquivamento venosa suficiente. Devido às pressões de ventilação alta o retorno venoso para o coração é prejudicada, o que pode levar a uma queda crítica da pressão arterial média. Além disso, uma solução salina em bolus de 500 mL pode ser dado ip antes da cirurgia. </li><li> Colocar um cateter na artéria carótida para a gravação contínua da pressão arterial (27). Fixe o braço para o corpo antes de começar a dissecção da artéria. A artéria carótida é exposta através de dissecção romba da musculatura paratraqueal. Após a exposição ainda mais cuidado e evitar de qualquer trauma tecidual (particular do nervo vago), um cateter é inserido dentro do vaso usando duas suturas e uma braçadeira pequena (37). Isto irá expor um longo segmento da artéria. Coloque uma ligadura no final da artéria carótida. Anexar um maior aperto para o final da sutura para obter ª tensão ou fixarsutura e para a mesa usando fita. Coloque outro sutura ao redor da artéria e dissecar a artéria até o fim distal. Aqui, colocar uma braçadeira de pequeno porte. Use uma tesoura para cortar micro de uma pequena abertura na diagonal dentro da artéria. Segure a abertura com uma pinça fina (Dumont, WPI) e avançar o cateter de tamanho apropriado com as mãos / fórceps. Faça um nó com o seu segundo e segura de sutura da artéria. Solte a braçadeira e avançar o cateter ainda mais. Fixe o cateter com vários nós e fita. Alternativamente, o cateter de artéria carótida pode ser realizado no final do experimento para coletar amostras de sangue arterial para gasometria. </li></ol> 3. Recuperação de amostras de tecido Após 3 horas de ventilação mecânica, serão colhidas amostras para avaliar a extensão da lesão pulmonar. Recomendamos coletar lavado brochnoalveolar (BAL), sangue arterial e no tecido pulmonar. <ol><li> Obter LBA, no final do experimento. Depois de aprofundamento da anestesia, lave o tubo traqueal com 1 ml solução salina tamponada com fosfato (PBS). O fluido deve permanecer na traquéia / pulmão por três segundos antes que ele é a recuperação através da seringa conectada. O LBA é snap-congelados em nitrogênio líquido e armazenadas a -80 ° C para análise posterior. Estar ciente de que o volume pode ser recuperado significativamente menor do que 1 ml. </li><li> Realizar a análise de gases sanguíneos, no final do experimento. A fim de fazer isso, uma incisão deve ser feita logo abaixo do esterno. Segure o esterno com uma pinça e extensão da incisão ao longo da caixa torácica. Em seguida, o diafragma é incisão nas bordas e é cortado a partir as costelas. Agora há uma visão aberta para o mais baixo da abertura do tórax. Levantar o esterno até com uma pinça e abrir o tórax por cortes longos no lado direito e esquerdo (como laterais possível) para que a parede do tórax anterior completa está ligado-alas. Isto deve ser feito, enquanto o animal ainda é experimental ventilação mecânica. O ventrículo esquerdo é perfurado usando um 27 ½ G agulha e análise do sangue arterial é realizada utilizando o Sistema i-STAT (Abbott, EUA). Se a gasometria arterial deve ser realizada, uma BAL não pode ser obtida, uma vez que este será um fator de confusão significativa para os resultados. </li><li> Em alternativa ao método acima, as amostras de sangue arterial podem ser coletadas através do cateter de artéria carótida. No entanto, isto deve ser feito antes do LBA é obtido. </li><li> Especiais de consumo os pulmões em bloco, puxando-se o coração e cortar a traquéia. Ter um pedaço de tecido pronto para absorver o sangue, de modo que o sítio cirúrgico é visível. Puxe o coração na direção do abdômen e corte cuidadosamente ao longo da espinha para mobilizar todos os órgãos do tórax. Corte a aorta, remover os órgãos torácicos e coloque-os sobre uma mesa limpa cirúrgico. </li><li> Cortar o coração e os vasos principais da amostra de tecido. Certifique-se que não há tecido do timo ainda ligado ao pulmão. Separar os pulmões com uma tesoura e coloque em tubos individuais e encaixe-congelante. Armazenar a -80 ° C para análise posterior. </li></ol> 4. Medição de lesão pulmonar Recomendamos a utilização dos parâmetros seguintes resultados para avaliar a extensão da lesão pulmonar: Realizar um ELISA albumina (Bethyl Laboratories, EUA) e um mieloperoxidase (MPO) ELISA (Hycult Biotecnologia, EUA) para avaliar a extensão da disfunção de barreira e a quantidade de inflamatória células no LBA. Realizar um ELISA MPO também formam o tecido pulmonar. Se wet-a-seco proporção deve ser medida não obtemos LBA e da circulação pulmonar não é lavada (ver 3.3). Medir o peso dos pulmões após a excisão. Em seguida, os pulmões são liofilizadas por 48 h e no tecido pulmonar é medido novamente. Então a relação de wet-a-seco é medido em mg de água por mg de tecido seco (5). <img src="/files/ftp_upload/2525/2525fig1.jpg" alt="Figura 1" /> Figura 1. Teor de proteínas na BAL em resposta a VILI. Camundongos foram anestesiados com pentobarbital, ventilação mecânica foi instituída e os ratos foram ventilados com pressão controlada configurações (pressão inspiratória de 45 mbar, positiva ao final da exspiratory pressão de 3 mbar, 100% inspirado concentração de oxigênio). Após 0, 1, 2 e 3 horas de ventilação BAL foi colhida eo teor de proteína foi quantificado através de um ensaio de ácido bicinchoninic (ensaio BCA). A mudança relativa do teor de proteínas é mostrado normalizado para 0 horas de ventilação (n = 4 por grupo, * indica p &lt;0,05 comparado ao grupo controle, média ± SEM)

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	<li>Eckle, T., Faigle, M., Grenz, A., Laucher, S., Thompson, L. F., Eltzschig, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A2B+adenosine+receptor+dampens+hypoxia-induced+vascular+leak.">A2B adenosine receptor dampens hypoxia-induced vascular leak.</a> Blood. 111, 2024-2035 (2008).</li><li>Eckle, T., Fullbier, L. G. r. e. n. z., A, ., Eltzschig, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Usefulness+of+pressure-controlled+ventilation+at+high+inspiratory+pressures+to+induce+acute+lung+injury+in+mice.">Usefulness of pressure-controlled ventilation at high inspiratory pressures to induce acute lung injury in mice.</a> Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 295, 718-724 (2008).</li><li>Eckle, T., Fullbier, L., Wehrmann, M., Khoury, J., Mittelbronn, M., Ibla, J., Rosenberger, P., Eltzschig, H. 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K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A2B+adenosine+receptor+signaling+attenuates+acute+lung+injury+by+enhancing+alveolar+fluid+clearance+in+mice.">A2B adenosine receptor signaling attenuates acute lung injury by enhancing alveolar fluid clearance in mice.</a> J Clin Invest. 118, 3301-3315 (2008).</li><li>Eckle, T., Krahn, T., Grenz, A., Kohler, D., Mittelbronn, M., Ledent, C., Jacobson, M. A., Osswald, H., Thompson, L. F., Unertl, K., Eltzschig, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cardioprotection+by+ecto-5'-nucleotidase+(CD73)+and+A2B+adenosine+receptors.">Cardioprotection by ecto-5'-nucleotidase (CD73) and A2B adenosine receptors.</a> Circulation. 115, 1581-1590 (2007).</li><li>Eltzschig, H. 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L., Eltzschig, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+extracellular+nucleotide+phosphohydrolysis+in+intestinal+ischemia-reperfusion+injury.">Role of extracellular nucleotide phosphohydrolysis in intestinal ischemia-reperfusion injury.</a> FASEB J. 22, 2784-2797 (2008).</li><li>Hart, M. L., Jacobi, B., Schittenhelm, J., Henn, M., Eltzschig, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cutting+Edge:+A2B+Adenosine+receptor+signaling+provides+potent+protection+during+intestinal+ischemia/reperfusion+injury.">Cutting Edge: A2B Adenosine receptor signaling provides potent protection during intestinal ischemia/reperfusion injury.</a> J Immunol. 182, 3965-3968 (2009).</li><li>Hart, M. L., Kohler, D., Eckle, T., Kloor, D., Stahl, G. L., Eltzschig, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Direct+treatment+of+mouse+or+human+blood+with+soluble+5'-nucleotidase+inhibits+platelet+aggregation.">Direct treatment of mouse or human blood with soluble 5'-nucleotidase inhibits platelet aggregation.</a> Arterioscler Thromb Vasc Biol. 28, 1477-1483 (2008).</li><li>Hart, M. L., Much, C., Gorzolla, I. C., Schittenhelm, J., Kloor, D., Stahl, G. L., Eltzschig, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Extracellular+adenosine+production+by+ecto-5'-nucleotidase+protects+during+murine+hepatic+ischemic+preconditioning.">Extracellular adenosine production by ecto-5'-nucleotidase protects during murine hepatic ischemic preconditioning.</a> Gastroenterology. 135, 1739-1750 (2008).</li><li>Hart, M. 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K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CD39/ectonucleoside+triphosphate+diphosphohydrolase+1+provides+myocardial+protection+during+cardiac+ischemia/reperfusion+injury.">CD39/ectonucleoside triphosphate diphosphohydrolase 1 provides myocardial protection during cardiac ischemia/reperfusion injury.</a> Circulation. 116, 1784-1794 (2007).</li><li>Kuhlicke, J., Frick, J. S., Morote-Garcia, J. C., Rosenberger, P., Eltzschig, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypoxia+Inducible+Factor+(HIF)-1+Coordinates+Induction+of+Toll-Like+Receptors+TLR2+and+TLR6+during+Hypoxia.">Hypoxia Inducible Factor (HIF)-1 Coordinates Induction of Toll-Like Receptors TLR2 and TLR6 during Hypoxia.</a> PLoS ONE. 2, e1364-e1364 (2007).</li><li>Morote-Garcia, J. C., Rosenberger, P., Kuhlicke, J., Eltzschig, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=HIF-1-dependent+repression+of+adenosine+kinase+attenuates+hypoxia-induced+vascular+leak.">HIF-1-dependent repression of adenosine kinase attenuates hypoxia-induced vascular leak.</a> Blood. 111, 5571-5580 (2008).</li><li>Morote-Garcia, J. C., Rosenberger, P., Nivillac, N. M., Coe, I. R., Eltzschig, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypoxia-inducible+factor-dependent+repression+of+equilibrative+nucleoside+transporter+2+attenuates+mucosal+inflammation+during+intestinal+hypoxia.">Hypoxia-inducible factor-dependent repression of equilibrative nucleoside transporter 2 attenuates mucosal inflammation during intestinal hypoxia.</a> Gastroenterology. 136, 607-618 (2009).</li><li>Reutershan, J., Vollmer, I., Stark, S., Wagner, R., Ngamsri, K. C., Eltzschig, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adenosine+and+inflammation:+CD39+and+CD73+are+critical+mediators+in+LPS-induced+PMN+trafficking+into+the+lungs.">Adenosine and inflammation: CD39 and CD73 are critical mediators in LPS-induced PMN trafficking into the lungs.</a> FASEB J. 23, 473-482 (2009).</li><li>Schingnitz, U., Hartmann, K., Macmanus, C. F., Eckle, T., Zug, S., Colgan, S. P., Eltzschig, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Signaling+through+the+A2B+adenosine+receptor+dampens+endotoxin-induced+acute+lung+injury.">Signaling through the A2B adenosine receptor dampens endotoxin-induced acute lung injury.</a> J Immunol. 184, 5271-5279 (2010).</li><li>Thompson, L. F., Eltzschig, H. K., Ibla, J. C., Van De Wiele, C. J., Resta, R., Morote-Garcia, J. C., Colgan, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Crucial+role+for+ecto-5'-nucleotidase+(CD73)+in+vascular+leakage+during+hypoxia.">Crucial role for ecto-5'-nucleotidase (CD73) in vascular leakage during hypoxia.</a> J. Exp. Med. 200, 1395-1405 (2004).</li><li>Aherne, C. M., Kewley, E. M., Eltzschig, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+resurgence+of+A2B+adenosine+receptor+signaling.">The resurgence of A2B adenosine receptor signaling.</a> Biochim Biophys Acta. , (2010).</li><li>Eckle, T., Koeppen, M., Eltzschig, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+extracellular+adenosine+in+acute+lung+injury.">Role of extracellular adenosine in acute lung injury.</a> Physiology (Bethesda). 24, 298-306 (2009).</li><li>Koeppen, M., Feil, R., Siegl, D., Feil, S., Hofmann, F., Pohl, U., de Wit, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=cGMP-dependent+protein+kinase+mediates+NO-+but+not+acetylcholine-induced+dilations+in+resistance+vessels+in+vivo.">cGMP-dependent protein kinase mediates NO- but not acetylcholine-induced dilations in resistance vessels in vivo.</a> Hypertension. 44, 952-955 (2004).</li></ol>

O presente estudo descreve uma técnica de realizar ventilador da lesão pulmonar induzida em camundongos. Este modelo demonstra lesão altamente reprodutíveis, devido à ventilação de alta pressão. Investigadores que consideram estudar lesão pulmonar aguda em ratos podem beneficiar deste modelo.

<table border="1"><tbody><tr><th> Nome do reagente </th><th> Companhia </th><th> Número de catálogo </th><th> Comentários (opcional) </th></tr><tr><td> Pentobarbital sódico (Plus Fatal) </td><td> Vortech Pharmaceutical Ls, Ltd, </td><td> VPL 9372 </td><td> 4mg/ml em solução salina </td></tr><tr><td> INSYTE 22 G </td><td> Beckton Dickinson </td><td> n / a </td><td></td></tr><tr><td> Sutura, de seda 4,0 </td><td> Harvard Apparatus </td><td> 517698 </td><td></td></tr><tr><td> Sutura, Prolene 8,0 </td><td> Ethicon, EUA </td><td> M8739 </td><td> reutilizáveis </td></tr><tr><td> Siemens 900 ° C </td><td> DRE Veterinária, EUA </td><td> # 336 </td><td> remodelado </td></tr><tr><td> microscópio de dissecação (SZX10) </td><td> Olimpo </td><td> n / a </td><td> considerar a distância de trabalho generosa </td></tr><tr><td> Tabela de aquecimento </td><td> Rt, Effenberger, Alemanha </td><td> n / a </td><td> único fornecedor e único </td></tr><tr><td> Dispositivo de pressão arterial </td><td> Cyber-Sense, Inc </td><td> BPM02 </td><td></td></tr><tr><td> STAT I </td><td> Abbott </td><td> n / a </td><td></td></tr></tbody></table>

pressure controlled ventilation to induce acute lung injury in mice

Modelos murinos são amplamente utilizados para investigar lesões agudas de diferentes sistemas dos órgãos (1-34). Lesão pulmonar aguda (LPA), que ocorre com a ventilação mecânica prolongada, contribui para a morbidade e mortalidade da doença crítica, e estudos sobre novos alvos farmacológicos ou genéticos são áreas de intensa investigação (1-3, 5, 8, 26, 30, 33 -36). ALI é definido pelo início agudo da doença, o que leva a não-cardíacas edema pulmonar e insuficiência pulmonar subseqüente de troca gasosa (36). Nós desenvolvemos um modelo murino de ALI usando uma ventilação com pressão controlada para induzir o ventilador da lesão pulmonar induzida (2). Para este fim, os camundongos C57BL / 6 são anestesiados e uma traqueostomia é realizada seguida de indução da LPA através de ventilação mecânica. Ratos são ventilados em um ambiente com pressão controlada com um pico de pressão inspiratória de 45 mbar por 1-3 horas. Como parâmetros de resultado, edema pulmonar (wet-a-seco ratio), conteúdo líquido broncoalveolar albumina, fluido broncoalveolar e conteúdo mieloperoxidase pulmonar tecidos e as trocas gasosas pulmonares são avaliados (2). Usando esta técnica nós poderíamos mostrar que suficientemente induz inflamação pulmonar aguda e pode distinguir entre diferentes grupos de tratamento ou genótipos (1-3, 5). Portanto, esta técnica pode ser útil para pesquisadores que buscam mecanismos moleculares envolvidos na ALI usando uma abordagem genética em camundongos com o gene-alvo exclusão.

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Pressure Controlled Ventilation to Induce Acute Lung Injury in Mice

Um modelo murino para o ventilador lesão pulmonar induzida é uma ferramenta importante para estudar uma lesão pulmonar aguda<em&gt; In vivo</em&gt;. Aqui, nós relatamos uma aplicáveis ​​fácil<em&gt; In situ</em&gt; Modelo de lesão pulmonar aguda de alta pressão de ventilação mecânica para induzir insuficiência aguda do pulmão.

Ventilação a pressão controlada para induzir lesão pulmonar aguda em ratos

Murine models are extensively used to investigate acute injuries of different organs systems (1-34). Acute lung injury (ALI), which occurs with prolonged ...

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18.1K visualizações.  University of Colorado. Um modelo murino para o ventilador lesão pulmonar induzida é uma ferramenta importante para estudar uma lesão pulmonar aguda In vivo. Aqui, nós relatamos uma aplicáveis ​​fácil In situ Modelo de lesão pulmonar aguda de alta pressão de ventilação mecânica para induzir insuficiência aguda do pulmão.