Эффективное обнаружение популяционных клеток боковой стороны Хёхста с помощью проточной цитометрии

Резюме

В данной работе мы показываем, что мощные лазеры с длиной волны 375 нм и 405 нм могут эффективно возбуждать Hoechst 33342 и служить жизнеспособной альтернативой лазеру с длиной волны 355 нм для обнаружения клеток боковой популяции (SP), тем самым расширяя диапазон доступных лазеров в приложениях проточной цитометрии.

Аннотация

Клетки боковой популяции (SP) идентифицируют с помощью окрашивания по методу Hoechst 33342 и анализируют с помощью проточной цитометрии (FCM). Метод Hoechst SP используется для выделения стволовых клеток на основе свойств оттока красителя транспортеров АТФ-связывающей кассеты (ABC). Первоначально этот метод использовался для идентификации и выделения гемопоэтических стволовых клеток (ГСК), но в настоящее время он эволюционировал и в первую очередь сосредоточился на идентификации и выделении раковых стволовых клеток (ОСК). Традиционный метод обнаружения FCM использует лазер с длиной волны 355 нм для возбуждения красителя для обнаружения SP-клеток. В ходе этого исследования мы успешно определили альтернативные подходы к возбуждению красителем, которые могут эффективно заменить обнаружение SP-клеток с помощью лазера с длиной волны 355 нм. Это достигается за счет использования мощных лазеров с длиной волны волны 375 нм или 405 нм. Это позволяет нам проявлять повышенную селективность при обнаружении SP-клеток, а не ограничиваться только лазерной проточной цитометрией с длиной волны 355 нм.

Введение

Клетки боковой популяции (SP) идентифицируют с помощью окрашивания по методу Hoechst 33342 и анализируют с помощью проточной цитометрии (FCM). SP-клетки характеризуются выкачиванием флуоресцентного красителя ДНК из клеток через их транспортер АТФ-связывающей кассеты (ABC) ^1,2. Первоначально метод был разработан для выделения гемопоэтических стволовых клеток (ГСК⁾ костного мозга мышей1. SP-клетки костного мозга были обогащены популяцией ГСК, характеризующихся низкой экспрессией CD117⁺Sca-1^{+Lin-Thy1 3,4}.

протокол

В экспериментах в этом исследовании приняли участие в общей сложности 10 мышей C57BL/6 в возрасте от 8 до 12 недель. Экспериментальные операции проводились в соответствии с протоколом, который был одобрен Комитетом по институциональному уходу за животными и их использованию Сычуаньского университета (#201609309). Экспериментальные материалы и параметры проточной цитометрии, использованные в данной статье, приведены в Таблице материалов.

1. Выделение и забор клеток костного мозга мыши

1. Усыпляйте мышей в строгом соответствии с рекомендациями учреждения. Чтобы вызвать потерю сознания у мышей, вводят и....

Результаты

На рисунке 2 контрольную группу лечили верапамилом, который блокирует транспортеры ABC в стволовых клетках для предотвращения элиминации Hoechst 33342. Таким образом, стволовые клетки в группе неверапамила вытесняют Hoechst 33342 и образуют отрицательную клеточную популяцию, извес.......

Обсуждение

Мы использовали описанный протокол для проведения трех экспериментов, в каждом из которых участвовало 3-4 мыши, в результате чего было получено в общей сложности 10 мышей. Доля SP-элементов колебалась от 0,05% до 0,76%. Важно отметить, что среди мышей наблюдались индивидуальные вариации. Мы исп?.......

Материалы

Name	Company	Catalog Number	Comments
Automatic cell counter	Countstar	1M1200
Cell Filter(100 µm)	BIOFIL	CSS-013-100
Daily quality control fluorospheres	Beckman Coulter	B5230
Dulbecco's Modification of Eagle's Medium with 4.5g/L glucose (DMEM medium)	CORNING	10-013-CVRC
Fetal bovine serum	CORNING	35-081-CV
HBSS	Hyclone	SH30030.02
Hoechst 33342	Sigma-Aldrich	B2261
Propidium iodide (PI)	Sigma-Aldrich	P4170
Red blood cell lysis buffer	Beyotime	C3702
Verapamil	Sigma-Aldrich	V4629