Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Temsili Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

İşlevsel bölgeye yönelik florometri, protein alanı hareketlerini gerçek zamanlı olarak incelemek için kullanılan bir yöntemdir. Bu tekniğin doğal hücrelerde uygulanması için modifikasyonu, artık murin izole iskelet kası liflerindeki voltaj kapılı Ca2 + kanallarından tek voltaj sensörü hareketlerinin tespit edilmesine ve izlenmesine izin vermektedir.

Özet

İşlevsel bölgeye yönelik florometri, voltaj kapılı iyon kanalları da dahil olmak üzere çok sayıda membran proteininin yapı-fonksiyon ilişkisini araştırmak için tercih edilen teknik olmuştur. Bu yaklaşım öncelikle heterolog ekspresyon sistemlerinde, membran akımlarını, kanalların aktivitesinin elektriksel tezahürünü ve floresan ölçümlerini eşzamanlı olarak ölçmek ve yerel alan yeniden düzenlemelerini raporlamak için kullanılmıştır. İşlevsel sahaya yönelik florometri, elektrofizyoloji, moleküler biyoloji, kimya ve floresanı, sırasıyla floresan ve elektrofizyoloji yoluyla gerçek zamanlı yapısal yeniden düzenlemelerin ve fonksiyonların incelenmesine izin veren tek bir geniş kapsamlı teknikte birleştirir. Tipik olarak, bu yaklaşım, bir tiol-reaktif floresan boya ile test edilebilen bir sistein içeren mühendislik voltaj kapılı bir membran kanalı gerektirir. Yakın zamana kadar, proteinlerin bölgeye yönelik floresan etiketlemesi için kullanılan tiol-reaktif kimya, yalnızca Xenopus oositlerinde ve hücre hatlarında gerçekleştirildi ve birincil uyarılamayan hücrelere yaklaşımın kapsamını kısıtladı. Bu raporda, yetişkin iskelet kası hücrelerinde fonksiyonel bölgeye yönelik florometrinin, kas lifi elektriksel depolarizasyonunun kas kasılmasının aktivasyonu ile bağlantılı olduğu süreç olan uyarılma-kasılma eşleşmesinin erken adımlarını incelemek için uygulanabilirliği açıklanmaktadır. Bu protokol, in vivo elektroporasyon kullanarak yetişkin farelerin fleksör digitorum brevis'inin kas liflerine sistein mühendisliği ile tasarlanmış voltaj kapılı Ca2+ kanallarını (CaV1.1) tasarlamak ve transfekte etmek için metodolojileri ve fonksiyonel bölgeye yönelik florometri ölçümleri için gerekli sonraki adımları açıklamaktadır. Bu yaklaşım diğer iyon kanallarını ve proteinleri incelemek için uyarlanabilir. Memeli kasının fonksiyonel bölgeye yönelik florometrisinin kullanımı, uyarılabilirliğin temel mekanizmalarını incelemek için özellikle önemlidir.

Giriş

Canlı bir hücrede bilinen bir elektriksel uyarana yanıt olarak iyon kanalı konformasyonel yeniden düzenlemelerini izleme yeteneği, moleküler fizyoloji1 için değerli bir bilgi kaynağıdır. Voltaj kapılı iyon kanalları, transmembran voltajındaki değişiklikleri algılayan membran proteinleridir ve işlevleri voltaj değişimlerinden de etkilenir2. Geçen yüzyılda voltaj kelepçesi tekniklerinin geliştirilmesi, fizyologların membran depolarizasyonuna yanıt olarak voltaj kapılı iyon kanalları tarafından taşınan iyonik akımları gerçek zamanlı olarak incelemelerine izin verdi3. Voltaj kelepçesi teknolojisinin k....

Protokol

Bu protokol Maryland Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından onaylanmıştır. Aşağıdaki protokol, (1) moleküler yapı tasarımı ve sistein reaksiyona giren boya seçimi, (2) in vivo elektroporasyon, (3) kas diseksiyonu ve lif izolasyonu, (4) edinim kurulum tanımı, (5) gelişmiş yeşil floresan protein (EGFP) pozitif lif elektriksel aktivitesi ve sistein boyamasının değerlendirilmesi ve (6) sinyal edinimi ve işlenmesinden oluşan çoklu alt bölümlere ayrılmıştır. Ek olarak, her bölümün başında, FSDF'yi bir iskelet kası lifine uygularken bazı ilgili hususlar detaylandırılmıştır. Tüm protokol bölümleri, laboratuvar önlüğü ve eldivenleri de da....

Temsili Sonuçlar

Tekrarlanan alan stimülasyonuna yanıt olarak aksiyon potansiyellerinin yayılması tetiklendiğinde, belirli bir depolarizasyon frekansına yanıt olarak spesifik voltaj sensörü hareketini izlemek mümkündür. Şekil 6A'da gösterildiği gibi, VSD-II etiketli helislerin hareketi, 10 Hz'de uygulanan iki ardışık depolarizasyonun her birine yanıt olarak izlenebilir (yani, 100 ms aralıklı). Sinyal ağartma, taban çizgisi izine çıkarılarak düzeltilebilir (Şek.......

Tartışmalar

Burada, CaV1.1 kanalından bireysel voltaj sensörü hareketlerinin incelenmesi için kas liflerinde FSDF'yi yürütmek için adım adım bir protokol açıklanmaktadır. Bu teknikte birleştirilen adımların sayısı ve yaklaşımların çeşitliliği karmaşık görünse de, bu tekniklerin çoğu genellikle biyofizikçi / hücre biyoloğu laboratuvarlarında rutin olarak kullanılmaktadır. Bu nedenle, görünen karmaşıklık, esas olarak, tüm çeşitli yaklaşımların tek bir entegre teknikte birleştir.......

Açıklamalar

Yazarlar çıkar çatışması olmadığını bildirmektedir.

Teşekkürler

Dr. J. Vergara'ya (Kaliforniya Üniversitesi, Los Angeles) EGFP-CaV1.1 (tavşan) vahşi tip plazmidini paylaştığı için teşekkür ederiz. Yale Fizyoloji Bölümü Elektronik Laboratuvarı'na ve özellikle Henrik Abildgaard'a iz ve tutma devreli fotodiyotun tasarımı ve yapımı için teşekkür ederiz. Bu çalışma Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından desteklenmiştir R01-AR075726 ve R01-NS103777

....

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
HyaluronidaseSIGMA ALDRICHH3884-50mg
0.5 mL Eppendorf tubeMillipore SigmaEP022363719-500EA
1 mL syringeMillipore SigmaZ683531-100EAtuberculine slip tip
1/2” long 29-gauge sterile insulin needle and syringeBecton Dikinson324702
35 mm non coated plastic plateFalcon, Corning353001
60 mm non coated plastic plateFalcon, Corning351007
Alcoholic whipPDIB60307
Alexa-533 cube LPChroma49907Ex: 530/30x; BS: 532; Em: 550lp
Arc lampSutter InstrumetsLB-LS 672
Artificial tears creamAkornNDC 59399-162-35
Borosilicate glass Pasteur pipet 5 3/4"VWR14672-200
BTS (N-benzyl-p-toluene sulphonamide)SIGMA ALDRICH203895
collagenase type ISIGMA ALDRICHC0130-1g
Cotton tipVWRVWR-76048-960-BG
Double electrode array  (for electroporation)BTX harvard apparatus45-012010mm 2 needle array tips
EGFP cubeChroma39002ATEx: 480/30x; BS 505; Em: 535/40m
Electroporation apparatus deviceBTX harvard apparatusECM 830
EPC10HEKA Elektronik GmbH  (Harvard Bioscience)895000
FBSBiotechne,  R&D SystemsRND-S11150HFetal Bovine Serum - Premium, Heat Inactivated
glass coverslip 35 mm dishMatTek Life ScienceP35G-1.5-14-C
IsofluraneFluriso (Isoflurane) Liquid for Inhalation502017-250ml
Isothermal heating padBraintree scientific inc39DP
LamininThermo FisherINV-23017015Laminin Mouse Protein, Natural
Latex bulbVWR82024-554
LED 530 nmSutter Instrumets5A-530
Low binding protein 0.2 μm sterile filterPallFG4579acrodisk  syringe filter 0.2um supor membrane low protein binding non pyrogenic
MEMInvitrogenINV-11380037
MTS-5-TAMRABiotium89410-784MTS-5-TAMRA
OriginPro Analysis SoftwareOriginLab CorporationOriginPro 2022 (64-bit) SR1
PhotodiodeCustom MadeNA
PlanApo 60x oil  1.4 N.A/∞/0.17OlympusBFPC2
Platinum wire 0.5 mm, 99.9 % metals basisSIGMA267228-1GTo manufacyte field stimulation electrode
Pulse GeneratorWPIPulsemaster A300
Shutter drive controllerUniblitz100-2B
ShuttterUniblitzVS2582T0-100
S-MEMInvitrogenINV-11380037
Sterile bench padVWRDSI-B1623
Sterile salineSIGMA ALDRICHS8776
Sylgard 184 Silicone Elastomer kitDow Corning1419447-1198
Vaporizer for AnesthesiaParkland ScientificV3000PK
Voltage generatorCustom MadeNA

Referanslar

  1. Catterall, W. A., Wisedchaisri, G., Zheng, N. The chemical basis for electrical signaling. Nature Chemical Biology. 13 (5), 455-463 (2017).
  2. Armstrong, C. M., Hille, B. Voltage-gated ion channels and electrical excitability.

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

BiyolojiSay 196

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır