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本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 代表性结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

该方案简化了逆转录病毒载体的产生和小鼠T细胞的转导,促进了小鼠CAR-T细胞的高效生成。

摘要

利用嵌合抗原受体(CAR)-T细胞的工程细胞疗法在血液系统恶性肿瘤患者中取得了显着的疗效,目前正在开发用于治疗各种实体瘤。到目前为止,新型CAR-T细胞产品的初步评估主要在使用免疫缺陷小鼠的异种移植肿瘤模型中进行。选择这种方法是为了促进人类CAR-T细胞在实验环境中的成功植入。然而,肿瘤和CAR-T细胞来源于同一小鼠品系的同基因小鼠模型允许在功能免疫系统和综合肿瘤微环境(TME)的背景下评估新的CAR技术。此处描述的方案旨在通过提供逆转录病毒转导和 离体 T细胞培养的标准化方法来简化小鼠CAR-T细胞生成过程。本协议中描述的方法可应用于本研究中使用的方法以外的其他CAR构建体,以便在免疫能力系统中对新的CAR技术进行常规评估。

引言

表达嵌合抗原受体 (CAR) 的过继性 T 细胞疗法通过利用适应性免疫系统的力量特异性靶向和消除抗原阳性癌细胞,彻底改变了癌症免疫治疗领域1。虽然靶向B细胞恶性肿瘤的CAR-T细胞疗法的成功已经得到临床验证,但在动物模型中进行的临床前研究对于开发靶向实体瘤的新型CAR仍然至关重要。然而,到目前为止,在实体瘤适应症中已证明临床疗效有限,并且越来越明显的是,单个临床前模型无法准确预测活体药物的药效学和临床疗效2,3。因此,研究人员已开始扩大CAR-T细胞产品的临床前研究,分别包括人类和小鼠癌症的异种移植和同基因模型的平行评估。

与异种移植模型不同,异种移植模型将人类肿瘤和T细胞移植到免疫缺陷小鼠中,同基因模型能够在功能免疫系统的背景下检查CAR-T细胞反应。具体来说,携带同基因肿瘤的免疫能力小鼠提供了一个系统来研究过继转移的 T 细胞与环境特异性环境之间的相互作用——包括已知抑制肿瘤微环境 (TME) 中 T 细胞功能的肿瘤相关巨噬细胞 (TAM) 和调节性 T 细胞 (Tregs)4,5,6

研究方案

所有动物程序均在机构动物护理和使用委员会(哥伦比亚大学,协议AC-AABQ5551和AC-AAAZ4470)的批准下使用体重在20-25克之间的6-8周龄雌性BALB / c或CF57BL / 6小鼠进行。这些动物是从商业来源获得的(见 材料表)。该协议围绕小鼠 T 细胞的“激活后天数”构建,病毒产生从第 -2 天开始。逆转录病毒在初始生产后可以储存在-80°C,并且对于该方案的未来使用,可以从步骤2开始,在第0天分离和激活T细胞。

1. 逆转录病毒载体生产

注意:通过将包装基因分离成两个单独的质粒,使病毒产物具有复制缺陷(参见 材料表),大大降低了重组事件和无意中产生具有复制能力的病毒的可能性。

  1. 在转染前一天(第 -2 天程序)准备 Phoenix Eco 细胞。
    1. 使用 30 mL 培养基(Phoenix Eco 培养基,详见表 1)将大约 1 x 107 个细胞放入 15 cm TC 处理的平板或 T150 培养瓶中。
    2. 在37°C孵育过夜。 18-24小时后,细胞应约70%汇合并均匀分布,以确保高病毒产量而不会过度生长。
      注意:为获得最佳结果,请使用传代率低的细胞,并在接种前一天传代用于病毒生产。在常....

代表性结果

这里描述的方案旨在标准化小鼠T细胞转导产生小鼠CAR-T细胞的过程。 图 1 提供了所涉及步骤的详细说明。该过程始于 通过 将病毒成分共转染到 Phoenix Eco 细胞中来生产逆转录病毒载体。 图 2 显示了转染当天 Phoenix Eco 细胞的最佳密度图像。然后,在转染后24小时或本方案的“第0天”激活分离的T细胞,为第1天的转导做准备。转导后,CAR-T细胞在重.......

讨论

该方案描述了小鼠T细胞逆转录病毒转导以产生用于 体内 研究的CAR-T细胞所需的步骤和试剂。优化逆转录病毒转导条件可实现稳健的CAR表达,而无需通过超速离心或其他试剂进行病毒浓缩。但是,可以对这种方法进行多种修改。

虽然该协议描述了GFP特异性CAR的示例生成,但这些方法可以适应于生成靶向任何感兴趣的细胞外抗原的小鼠CAR-T细胞。本研究中使用的pMSCV_PGK逆?.......

披露声明

没有声明利益冲突。

致谢

我们感谢 L. Brockmann 对手稿的严格审阅。这项工作得到了 NIH 1R01EB030352 和 UL1 TR001873 的支持。

....

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
0.45 μm filtersMilliporeSigmaSLHVR33RS
1 mL syringe Fisher Scientific 14-955-450
1.5 mL microcentrifuge tubes Fisher Scientific 05-408-135
10 mL syringe BD14-823-16E
100 μm strainerCorning07-201-432
15 cm TC treated cell culture dishesThermoFisher Scientific 130183
15 mL conical tubes Falcon14-959-70C
40 μm strainer Corning07-201-430
50 mL conical tubes Falcon14-959-49A
70 μm strainerCorning07-201-431
Attune NxT Flow Cytometer ThermoFisher Scientific 
BALB/C, 6-8 week old Jackson Laboratory651
B-Mercaptoethanol Gibco21985023
Bovine Serum Albumin GOLDBIOA-420-500
DMEM MediumGibco11965092
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (PBS), without Calcium and Magnesium Gibco14-190-250
DynaMag-2 Magnet Invitrogen12-321-D
EasySep Magnet Stemcell Technologies18000
EasySep Mouse T cell Isolation KitStemcell Technologies19851
FACS buffer BDBDB554657
Fetal bovine serum (FBS) CorningMT35011CV
GlutaMAXGibco35-050-061
G-Rex6Wilson Wolf80240M 
HEPES Buffer Solution Gibco15-630-080
Human recombinant IL-15 Miltenyi Biotec130-095-765
Human recombinant IL-2Miltenyi Biotec130-097-748
Human recombinant IL-7Miltenyi Biotec130-095-363
Lipofectamine 3000InvitrogenL3000008
MEM Non-Essential Amino Acids Solution Gibco11140-050
Mouse Anti-CD3 BV421Biolegend100228
Mouse Anti-CD3/CD28 DynabeadsGibco11-453-D
Mouse Anti-CD4 BV605BD563151
Mouse Anti-CD44 APC Biolegend103011
Mouse Anti-CD62L PE-Cy7TonboSKU 60-0621-U025
Mouse Anti-CD8 APC-Cy7TonboSKU 25-0081-U025
Nikon Ti2 with Prime 95B camera Nikon
Non-treated 24 well plates CytoOneCC7672-7524
Opti-MEMGibco31-985-062
pCL-EcoAddgene#12371
Penicillin/Streptomycin SolutionGibco15-070-063
Phoenix Eco cellsATCCCRL-3214
pMDG.2Addgene#12259
pMSCV_PGK_GFP28zN/AProduced by R.LV.
Purified sfGFPN/AProduced by R.LV.
RetroNectin ('transduction reagent')Takara BioT100B
RPMI 1640Gibco21875
Serological pipette 10 mLFisher Scientific 13-678-11E
Serological pipette 25 mLFisher Scientific 13-678-11
Serological pipette 5 mLFisher Scientific 13-678-11D
Sodium PyruvateGibco11-360-070
TC-treated 24 well plates Corning08-772-1
Trypan blue Gibco15-250-061

参考文献

  1. June, C. H., Sadelain, M. Chimeric antigen receptor therapy. N Engl J Med. 379 (1), 64-73 (2018).
  2. Duncan, B. B., Dunbar, C. E., Ishii, K. Applying a clinical lens to animal models of car-t cell therapies. Mol Ther Meth....

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