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本手稿提出了一种通过手术从小鼠身上切除节后腰交感神经元的方案。该程序将促进旨在调查交感神经支配在远端组织靶标中的作用的大量研究。
周围神经损伤很常见,只有 10% 的患者在受伤后实现了完全功能恢复。交感神经系统在维持身体稳态方面起着许多关键作用,但很少在周围神经损伤的背景下对其进行研究。目前尚不清楚外围远端靶标中节后交感神经元的功能范围。为了更好地探索外周靶点交感神经支配的作用,手术 “敲除” 模型提供了一种替代方法。虽然这可以通过化学方式实现,但节后交感神经元的化学破坏可以是非特异性的并且是剂量依赖性的。在小鼠中使用手术腰交感神经切除术,曾经被认为在小动物中“几乎不可行”,允许特异性靶向支配后肢的节后交感神经神经元。本手稿描述了如何通过手术切除小鼠的 L2-L5 腰交感神经节作为生存手术,从而可靠地减少后爪汗液反应和坐骨神经中交感神经轴突的数量。
周围神经损伤 (PNI) 可导致远端组织靶区的运动、感觉和交感神经功能障碍,这些目标很少能完全恢复功能1。PNI 研究通常集中在运动和感觉再生上;然而,大鼠坐骨神经的近四分之一由无髓交感神经轴突组成2。然而,交感神经支配在外周组织中的作用尚不完全清楚3。交感神经系统在维持身体稳态、参与免疫调节、体温调节、血管张力、线粒体生物发生等方面起着重要作用 4,5,6,7,8,9,10,11 .当神经肌肉接头处的交感神经支配丧失时,尽管运动神经元神经支配维持,但仍观察到持续的肌肉无力和突触不稳定12。神经肌肉接头突触传递的这种交感神经调节已被证明会随着年龄的增长而下降13,14....
所有实验均已获得埃默里大学机构动物护理和使用委员会 (IACUC) 的批准(根据 IACUC 协议编号 PROTO201700371)。本研究使用了 4 只成年雌性野生型 C57BL/6J 小鼠,年龄为 14 周龄,体重在 16-21 g 之间。此处使用的试剂和设备的详细信息列在 材料表中。
1. 术前准备
该协议描述了从小鼠身上手术切除节后腰交感神经元。2 只小鼠接受腰交感神经切除术,2 只小鼠作为对照。为了实现成功的腰交感神经外科切除术,必须至少实现 L2 和 L3 双侧腰交感神经节的充分可视化,如图 1 所示。切除 L4 和 L5 神经节将实现下半身的完全交感神经去神经支配;然而,下神经节的可视化可能会受到泌尿生殖器官的阻碍。既往逆行追踪研究表明,L2-L5 神经节?.......
腰交感神经节是非常小的结构,位于许多关键的腹部器官和大血管后面。因此,此过程需要很高的精度和准确度。大部分困难在于术中识别交感神经节。建议学习者在尝试在活小鼠中尝试此过程之前,首先能够识别小鼠尸体中的神经节。在肠道改道后识别交感神经节时,通常需要进行故障排除。为了确保足够的可视化,降序号必须可见。腹腔外的肠道改道必须包括盲肠。此外,膀胱可能充盈和扩?.......
作者没有需要披露的利益冲突。
这项工作得到了 NIH 国家神经疾病和中风研究所的支持,奖励编号为 K01NS124912,部分得到了 NIH 资助的埃默里性别差异专业中心U54AG062334和埃默里大学医学院医学科学家培训计划的发展赠款。感谢学士后 David Kim 对坐骨神经进行切片,感谢研究专家 HaoMin SiMa 为我们的立体显微镜 3D 打印手机支架,从而拍摄了视频。
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
5-0 absorable suture | CP Medical | 421A | |
5-0 nylon suture | Med-Vet International | MV-661 | |
70% ethanol | Sigma-Aldrich | E7023-4L | |
Anesthesia Induction Chamber | Kent Scientific VetFlo | VetFlo-0530XS | |
Anesthesia Vaporizer | Kent Scientific VetFlo | 13-005-202 | |
Betadine | HealthyPets | BET16OZ | |
C57BL/6J mice | Jackson Laboratory | #000664 | |
Chicken anti-neurofilament-heavy | Abcam | ab72996 | |
Cryostat | Leica | CM1850 | |
Data Analysis Software | Prism | ||
Fine-tipped tweezers | World Precision Instruments | 500233 | |
Fluorescent microscope | Nikon | Ti-E | |
Goat anti-chicken 488 | Invitrogen | A32931 | |
Goat anti-rabbit 647 | Invitrogen | A21245 | |
Heating pad | Braintree Scientific | 39DP | |
Image Analysis Software | Fiji | ||
Imaging Software | Nikon | NIS-Elements | |
Isoflurane | Med-Vet International | RXISO-250 | |
Meloxicam | Med-Vet International | RXMELOXIDYL32 | |
Needle driver | Roboz Surgical Store | RS-7894 | |
Normal Goat Serum | Abcam | ab7481 | |
Ophthalmic ointment | Refresh | Refresh P.M. | |
Phox2bCre:tdTomato mutant mice | Jackson Laboratory | #016223, #007914 | |
Pilocarpine hydrochloride | Sigma-Aldrich | P6503 | |
Rabbit anti-tyrosine hydroxylase | Abcam | ab112 | |
Small straight scissors | Fine Science Tools | 14084-09 | |
Sterile cotton swabs 2x2 | Dynarex | 3252 | |
Sterile cotton tipped applicators | Dynarex | 4301 | |
Sterile drape | Med-Vet International | DR4042 | |
Sterile saline solution | Med-Vet International | 1070988-BX | |
ThCre:mTmG mutant mice | Mutant Mouse Resource and Research Centers | strain #017262-UCD | Jackson Laboratory, strain #007576 |
ThCre:tdTomato mutant mice | European Mouse Mutant Archive | strain #00254 | Jackson Laboratory, strain #007914 |
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