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In dieser Studie beschreiben wir Methoden der Dezellularisierung, der physikalischen Charakterisierung, der Bildgebung und der in vivo Implantation von pflanzlichen Biomaterialien sowie Methoden zur Zellaussaat und Differenzierung in den Scaffolds. Die beschriebenen Methoden ermöglichen die Evaluierung von pflanzlichen Biomaterialien für Anwendungen im Bone Tissue Engineering.
Pflanzliche Zellulose-Biomaterialien werden in verschiedenen Tissue-Engineering-Anwendungen eingesetzt. In-vivo-Studien haben die bemerkenswerte Biokompatibilität von Scaffolds aus Zellulose aus natürlichen Quellen gezeigt. Darüber hinaus besitzen diese Gerüste strukturelle Eigenschaften, die für mehrere Gewebe relevant sind, und sie fördern die Invasion und Proliferation von Säugetierzellen. Neuere Forschungen mit dezellularisiertem Apfelhypanthium-Gewebe haben die Ähnlichkeit seiner Porengröße mit der von trabekulärem Knochen sowie seine Fähigkeit, die osteogene Differenzierung effektiv zu unterstützen, gezeigt. In der vorliegenden Studie wurde das Potenzial von aus Äpfeln gewonnenen Zellulosegerüsten für Anwendungen im Bereich Bone Tissue Engineering (HdO) untersucht und ihre mechanischen Eigenschaften in vitro und in vivo bewertet. MC3T3-E1-Präosteoblasten wurden in aus Äpfeln gewonnenen Zellulosegerüsten ausgesät, die dann auf ihr osteogenes Potenzial und ihre mechanischen Eigenschaften untersucht wurden. Die alkalische Phosphatase und die Alizarinrot-S-Färbung bestätigten die osteogene Differenzierung in Scaffolds, die in Differenzierungsmedium kultiviert wurden. Die histologische Untersuchung zeigte eine weit verbreitete Zellinvasion und Mineralisierung über die Scaffolds hinweg. Die Rasterelektronenmikroskopie (REM) zeigte mineralische Aggregate auf der Oberfläche der Gerüste, und die energiedispersive Spektroskopie (EDS) bestätigte das Vorhandensein von Phosphat- und Kalziumelementen. Trotz eines signifikanten Anstiegs des Elastizitätsmoduls nach der Zelldifferenzierung blieb er jedoch niedriger als der von gesundem Knochengewebe. In-vivo-Studien zeigten die Zellinfiltration und die Ablagerung von extrazellulärer Matrix innerhalb der dezellularisierten Apfelgerüste nach 8-wöchiger Implantation in die Schädelknochen der Ratte. Darüber hinaus war die Kraft, die erforderlich war, um die Gerüste aus dem Knochendefekt zu entfernen, vergleichbar mit der zuvor berichteten Frakturbelastung des nativen Schädelknochens. Insgesamt bestätigt diese Studie, dass aus Äpfeln gewonnene Zellulose ein vielversprechender Kandidat für HdO-Anwendungen ist. Die Unähnlichkeit zwischen seinen mechanischen Eigenschaften und denen von gesundem Knochengewebe kann seine Anwendung jedoch auf Szenarien mit geringer Belastung beschränken. Zusätzliche strukturelle Umgestaltungen und Optimierungen können erforderlich sein, um die mechanischen Eigenschaften von aus Äpfeln gewonnenen Zellulosegerüsten für tragende Anwendungen zu verbessern.
Große Knochendefekte, die durch eine Verletzung oder Krankheit verursacht werden, erfordern oft Biomaterialtransplantate für eine vollständige Regeneration1. Derzeitige Techniken zur Verbesserung der Regeneration von Knochengewebe verwenden regelmäßig autologe, allogene, xenogene oder synthetische Transplantate2. Bei der autologen Knochentransplantation, die als "Goldstandard" zur Reparatur großer Knochendefekte gilt, wird dem Patienten Knochen entnommen. Dieses Transplantationsverfahren hat jedoch mehrere Nachteile, darunter Größen- und Formbeschränkungen, Gewebeverfügbarkeit und Morbidität an der Probenahmestelle
Die Versuchsprotokolle wurden vom Tierschutzausschuss der Universität Ottawa geprüft und genehmigt.
1. Vorbereitung des Gerüsts
Porengrößenmessung, Zellverteilung und In-vitro-Mineralisierung (Abbildung 1 und Abbildung 2)
Die vollständige Entfernung der nativen zellulären Bestandteile der Apfelgewebegerüste wurde nach der Behandlung der Gerüste mit SDS und CaCl2 erreicht (Abbildung 1A). Die Scaffolds wiesen eine hochporöse Struktur auf, die mittels konfokaler Mikroskopie bestätigt wurde. Die Quantifizierung der.......
Mehrere In-vitro- und In-vivo-Studien haben die Biokompatibilität von pflanzlicher Cellulose und ihre potenzielle Verwendung im Tissue Engineeringnachgewiesen 14,15,16,18,19,20, insbesondere für die osteogene Differenzierung20,21. Ziel der vorliege.......
Erklärung zu Interessenkonflikten: M.L.L., M.T. R.J.H., C.M.C., I.C. und A.P. sind Erfinder von Patentanmeldungen, die von der University of Ottawa und Spiderwort Inc. eingereicht wurden und die Verwendung von pflanzlicher Zellulose für HdO-Anwendungen betreffen. M.L.L., R.J.H., C.M.C. und A.P. haben finanzielle Beteiligungen an Spiderwort Inc.
Finanziert wurde das Projekt vom Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (NSERC) (Discovery Grant) und von der Li Ka Shing Foundation. M.L.L. wurde vom TalentEdge-Programm der Ontario Centers of Excellence unterstützt, und R.J.H. wurde durch ein NSERC-Postgraduiertenstipendium und ein Ontario Graduate Scholarship (OGS) unterstützt.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
4′,6-diamidino-2-phenylindole | ThermoFisher | D1306 | DAPI |
5-bromo-4-chloro-3'-indolyphosphate and nitro-blue tetrazolium | Sigma-Aldrich | B5655 | BCIP/NBT |
Alizarin red S | Sigma-Aldrich | A5533 | ARS |
Ascorbic acid | Sigma-Aldrich | A4403 | Cell Culture |
Calcium Chloride | ThermoFisher | AA12316 | CaCl2 |
Calcofluor White | Sigma-Aldrich | 18909 | |
Dental drill | Surgical tool | ||
Ethanol | ThermoFisher | 615095000 | |
Fetal bovine serum | Hyclone Laboratories | SH30396 | FBS |
Formalin | Sigma-Aldrich | HT501128 | 10% Formalin |
Goldner's trichrome stain | Sigma-Aldrich | 1.00485 | GTC |
Hematoxylin and eosin stain | Fisher Scientific | NC1470670 | H&E |
High-speed resonant confocal laser scanning microscope | Nikon | Nikon Ti-E A1-R | |
Hydrochloric acid | Sigma-Aldrich | 258148 | |
ImageJ software | National Institutes of Health | ||
Irrigation saline | Baxter | JF7123 | 0.9% NaCl |
MC3T3-E1 Subclone 4 cells | ATCC | CRL-2593 | Pre-osteoblast cells |
McIntosh apples | Canada Fancy grade | ||
Methyl methacrylate | Sigma-Aldrich | M55909 | Histological embedding |
Minimum Essential Medium | ThermoFisher | M0894 | α-MEM |
Paraformaldehyde | Fisher Scientific | O4042 | 4%; PFA |
Penicillin/Streptomycin | Hyclone Laboratories | SV30010 | Cell Culture |
Periodic acid | Sigma-Aldrich | 375810 | |
Phosphate buffered saline | Hyclone Laboratories | 2810305 | PBS; without Ca2+ and Mg2+ |
Propidium iodide | Invitrogen | p3566 | |
Scanning electron microscope | JEOL | JSM-7500F FESEM | SEM and EDS |
Slide scanner microscope | Zeiss | AXIOVERT 40 CFL | |
Sodium dodecyl sulfate | Fisher Scientific | BP166 | SDS |
Sodium metabisulphite | Sigma-Aldrich | 31448 | |
Sodium phosphate | ThermoFisher | BP329 | |
Sprague-Dawley rats | Charles-River Laboratories | 400 | Male |
Sutures | Ethicon | J494G | 4-0 |
Trephine | ACE Surgical Supply Co | 583-0182 | 5-mm diameter |
Triton-X 100 | ThermoFisher | 807423 | |
Trypsin | Hyclone Laboratories | SH30236.02 | Cell Culture |
Tween | Fisher Scientific | BP337 | |
Universal compression Device | CellScale | UniVert | |
Von Kossa stain | Sigma-Aldrich | 1.00362 | Histology |
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