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Hier stellen wir ein Protokoll vor, das eine schnelle, robuste und kostengünstige Herstellung von Tumorsphäroiden mit anschließender Hydrogelverkapselung ermöglicht. Es ist weit verbreitet, da es keine spezielle Ausrüstung erfordert. Es wäre besonders nützlich für die Erforschung von Sphäroid-Matrix-Wechselwirkungen und die Erstellung von In-vitro-Gewebephysiologie - oder Pathologiemodellen.
Die dreidimensionale (3D) Verkapselung von Sphäroiden ist entscheidend, um die Tumormikroumgebung für ein optimales Zellwachstum angemessen zu replizieren. Hier haben wir ein In-vitro-3D-Glioblastommodell für die Sphäroidverkapselung entwickelt, um die extrazelluläre Mikroumgebung des Tumors nachzuahmen. Zuerst bildeten wir quadratische pyramidale Mikrotiterformen mit Polydimethylsiloxan. Diese Mikrotiterformen wurden dann zur Herstellung von Tumorsphäroiden mit streng kontrollierten Größen von 50-500 μm verwendet. Sobald sich Sphäroide gebildet hatten, wurden sie geerntet und in Hydrogele auf Polyethylenglykol (PEG)-Basis eingekapselt. PEG-Hydrogele sind eine vielseitige Plattform für die Sphäroidverkapselung, da Hydrogeleigenschaften wie Steifigkeit, Abbaubarkeit und Zelladhäsion unabhängig voneinander eingestellt werden können. Hier verwendeten wir ein repräsentatives weiches (~8 kPa) Hydrogel, um Glioblastom-Sphäroide einzukapseln. Schließlich wurde eine Methode zum Färben und Abbilden von Sphäroiden entwickelt, um mittels konfokaler Mikroskopie qualitativ hochwertige Bilder zu erhalten. Aufgrund des dichten Sphäroidkerns und der relativ spärlichen Peripherie kann die Bildgebung schwierig sein, aber die Verwendung einer Clearing-Lösung und konfokaler optischer Schnitte hilft, diese Bildgebungsschwierigkeiten zu lindern. Zusammenfassend zeigen wir eine Methode zur Herstellung einheitlicher Sphäroide, zur Verkapselung in PEG-Hydrogele und zur Durchführung einer konfokalen Mikroskopie an den verkapselten Sphäroiden, um das Sphäroidwachstum und verschiedene Zell-Matrix-Wechselwirkungen zu untersuchen.
Tumorsphäroide haben sich als nützliche In-vitro-Werkzeuge bei der Untersuchung der Ätiologie, Pathologie und des Ansprechens auf Medikamente bei Krebserwiesen 1. Traditionell wurden Sphäroide unter Bedingungen wie Platten mit geringer Adhäsion oder Bioreaktoren kultiviert, bei denen die Zell-Zell-Adhäsion gegenüber der Zell-Oberflächen-Adhäsion bevorzugt wird2. Es ist jedoch inzwischen anerkannt, dass In-vitro-Sphäroidmodelle sowohl Zell-Zell- als auch Zell-Matrix-Interaktionen erfassen sollten, um die Tumormikroumgebung originalgetreuer zu rekapitulieren. Dies hat mehrere Gruppen dazu veranlasst, Ger....
1. Vorbereitung der Lösungen
Sphäroidbasierte Wirkstoff-Screening-Plattformen zur Untersuchung chemotherapeutischer Wirkungen werden zunehmend nachgefragt, da der Schwerpunkt auf der Modulation der Tumormikroumgebung bei der Sphäroidverkapselung in Biomaterialien liegt, die natives Gewebe replizieren. Hier haben wir eine Methode zur multizellulären Tumorsphäroidpräparation und anschließenden Verkapselung und Bildgebung in einem 3D-Hydrogel entwickelt. Die Sphäroide werden in Mikrotiterformen hergestellt (Abbildung 3A
Hydrogel-basierte multizelluläre Tumor-Sphäroidmodelle werden zunehmend entwickelt, um die Entdeckungen der Krebstherapie voranzutreiben 11,13,29. Sie sind vorteilhaft, weil sie Schlüsselparameter der Tumormikroumgebung auf kontrollierte Weise emulieren und trotz ihrer Komplexität einfacher und kostengünstiger zu verwenden sind als In-vivo-Modelle, und viele sind mit Hochdurchsatz-Screening-Technologien kompatibel. Die Hydr.......
Die Autoren haben nichts offenzulegen.
Diese Arbeit wurde durch Startkapital finanziert, das Dr. Silviya P. Zustiak von der Saint Louis University zur Verfügung gestellt wurde, sowie durch ein Anschubstipendium des Henry and Amelia Nasrallah Center for Neuroscience an der Saint Louis University, das Dr. Silviya P. Zustiak gewährt wurde.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
70% Ethanol | Fisher Scientific | LC22210-4 | |
15 mL Conicals | FALCON | 352097 | |
24-Well Plate Ultra Low Attachment plates | Fisher Scientific | 07-200-602 | |
35 mm Petri Dish | Amazon | 706011 | |
4-arm poly(ethylene glycol)-acrylate (4-arm PEG-Ac; 10 kDa) | Laysan Bio | ACRL-PEG-ACRL-10K-5g | |
50 mL Conicals | Fisher Scinetific | 3181345107 | |
6-well AggreWell 400 | StemCell Technologies, Vancouver, Canada | 34421 | Square pyramidal microwells |
anti-adherence rinsing solution | StemCell Technologies, Vancouver, Canada | Cat #: 07010 | |
Aspartic Acid-Arginine-Cysteine-Glycine-Valine-Proline-Methionine-Serine-Methionine-Arginine-Glycine-Cysteine-Arginine- Aspartic Acid (DRCG-VPMSMR-GCRD) peptide | Genic Bio, Shanghai, China | n/a | Custom synthesis |
Chemical Fume Hood | KEWAUNEE | 99151 | |
Corning Matrigel Basement Membrane Matrix, LDEV Free | Corning | 356234 | Basement membrane matrix |
DAPI (4',6-diamidino-2-phenylindole, dihydrochloride) | Thermo Scientific | 62247 | |
Detergent - Triton-X | Sigma Aldrich | T8787 | Nonionic surfactant |
Dimethyl sulfoxide (DMSO) | Fisher Scientific | BP231-100 | |
Disposable Pipettes (1 mL, 2 mL, 5 mL, 10 mL, 25 mL, 50 mL) | Fisher Scinetific | 1 mL: 13-678-11B, 2mL: 05214038, 5mL(FALCON): 357529, 10mL: 13-678-11E, 25mL: 13-678-11, 50mL: 13-678-11F | |
Fetal Bovine Serum | HyClone | SH30073-03 | |
Formaldehyde 37% Solution | Sigma Aldrich | F1635 | |
Glass Plates | Slumpys | GBS4100SFSL | |
Glass Transfer Pipettes | Fisher Scinetific | 5 3/4": 1367820A, 9":136786B | |
Glycine-Arginine-Cysteine-Aspartic Acid-Arginine-Glycine-Aspartic Acid-Serine (GRCD-RGDS) peptide | Genic Bio, Shanghai, China | n/a | Custom synthesis |
Hemacytometer | Bright-Line | 383684 | |
Hydrophobic solution - Repel Silane | GE Healthcare Bio-Sciences | 17-1332-01 | |
Incubator | NUAIRE | NU-8500 | |
Inverted Microscope (Axiovert 25) | Zeiss | 663526 | |
Invitrogen DiOC16(3) (3,3'-Dihexadecyloxacarbocyanine Perchlorate) | Fisher Scientific | D1125 | |
Leica Confocal SP8 | Leica Microsystems Inc. | ||
Light and Flourescent Microscope (Axiovert 200M) | Zeiss | 3820005619 | |
Micro centrifuge tubes | Fisher Scientific | 2 mL: 02681258 | |
Microscope Software | Zeiss | AxioVision Rel. 4.8.2 | |
Nestin Alexa Fluor 594 | Santa Cruz Biotechnology | sc-23927 | |
Parafilm | PARAFILM | PM992 | |
PBS (1x), pH 7.4 | HyClone | SH30256.01 | |
Penicillin Streptomycin | MP Biomedicals | 1670046 | |
Pipette Aid | Drummond Scientific Co. | P-76864 | |
Pipette Tips (1–200 µL, 101–1000 µL) | Fisher Scinetific | 2707509 | |
Plastic Standard Disposable Transfer Pipettes | Fisher Scientific | 13-711-9D | |
Plastic Weigh Boats (100 mL) | Amazon | mdo-azoc-1030 | |
poly(ethylene glycol)-dithiol (PEG-diSH; 3.4 kDa) | Laysan Bio | SH-PEG-SH-3400-5g | |
Polydimehylsiloxane (PDMS) [Slygard 182 Elastomer Kit] | Elsworth Adhesives | 3097358-1004 | Polydimethylsiloxane |
Powder Free Examination Gloves | Quest | 92897 | |
Propidium iodide, 1 mg/mL aqueous soln. | Fisher Scientific | AAJ66584AB | |
RPMI-1640 Medium (1x) | HyClone | SH30027-02 | |
Silicone spacers - Silicone sheet, 0.5 mm thick/13 cm x 18 cm | Grace Bio-Labs | JTR-S-0.5 | |
SOX2 Alexa Fluor 488 | Santa Cruz Biotechnology | sc-365823 | |
Tissue Culture Hood | NUAIRE | NU-425-600 | |
Triethanolamine, ≥99.0% (GC) | Sigma Aldrich | 90279 | |
Trypsin 0.25% (1x) | Sigma Aldrich | SH30042.01 | |
U-87 MG human glioblastoma cells | American Type Culture Collection | HTB-14 |
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