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Nous présentons ici un protocole qui permet une fabrication rapide, robuste et peu coûteuse de sphéroïdes tumoraux, suivie d’une encapsulation d’hydrogel. Il est largement applicable car il ne nécessite pas d’équipement spécialisé. Il serait particulièrement utile pour explorer les interactions sphéroïde-matrice et construire des modèles de physiologie tissulaire ou de pathologie in vitro .
L’encapsulation tridimensionnelle (3D) des sphéroïdes est cruciale pour reproduire correctement le microenvironnement tumoral pour une croissance cellulaire optimale. Ici, nous avons conçu un modèle de glioblastome 3D in vitro pour l’encapsulation de sphéroïdes afin d’imiter le microenvironnement extracellulaire de la tumeur. Tout d’abord, nous avons formé des moules pyramidaux carrés à micropuits en utilisant du polydiméthylsiloxane. Ces moules à micropuits ont ensuite été utilisés pour fabriquer des sphéroïdes tumoraux avec des tailles étroitement contrôlées de 50 à 500 μm. Une fois les sphéroïdes formés, ils ont été récoltés et encapsulés dans des hydrogels à base de polyéthylène glycol (PEG). Les hydrogels PEG constituent une plate-forme polyvalente pour l’encapsulation de sphéroïdes, car les propriétés de l’hydrogel telles que la rigidité, la dégradabilité et l’adhérence cellulaire peuvent être ajustées indépendamment. Ici, nous avons utilisé un hydrogel souple représentatif (~8 kPa) pour encapsuler les sphéroïdes de glioblastome. Enfin, une méthode de coloration et d’imagerie des sphéroïdes a été développée pour obtenir des images de haute qualité par microscopie confocale. En raison du noyau sphéroïde dense et de la périphérie relativement clairsemée, l’imagerie peut être difficile, mais l’utilisation d’une solution de dégagement et d’un sectionnement optique confocal permet d’atténuer ces difficultés d’imagerie. En résumé, nous montrons une méthode pour fabriquer des sphéroïdes uniformes, les encapsuler dans des hydrogels PEG et effectuer une microscopie confocale sur les sphéroïdes encapsulés pour étudier la croissance des sphéroïdes et diverses interactions cellule-matrice.
Les sphéroïdes tumoraux sont apparus comme des outils in vitro utiles dans l’étude de l’étiologie du cancer, de la pathologie et de la réponse aux médicaments1. Traditionnellement, les sphéroïdes ont été cultivés dans des conditions telles que des plaques à faible adhérence ou des bioréacteurs, où l’adhésion cellule-cellule est privilégiée par rapport à l’adhésion cellule-surface2. Cependant, il est maintenant reconnu que pour récapituler plus fidèlement le microenvironnement tumoral, les modèles sphéroïdes in vitro devraient capturer à la fois les interactions cellule-cellule et cellule-matrice. Cela a....
1. Préparation des solutions
Les plateformes de criblage de médicaments à base de sphéroïdes pour étudier les effets chimiothérapeutiques sont de plus en plus recherchées en raison de l’accent mis sur la modulation du microenvironnement tumoral lors de l’encapsulation des sphéroïdes dans des biomatériaux répliquant les tissus natifs. Ici, nous avons développé une méthode pour la préparation de sphéroïdes tumoraux multicellulaires et l’encapsulation et l’imagerie ultérieures dans un hydrogel 3D. Les sphéroïdes sont prépar.......
Des modèles de sphéroïdes tumoraux multicellulaires à base d’hydrogel sont de plus en plus développés pour faire progresser les découvertes thérapeutiques contre le cancer 11,13,29. Ils sont bénéfiques car ils émulent les paramètres clés du microenvironnement tumoral de manière contrôlée et, malgré leur complexité, sont plus simples et moins chers à utiliser que les modèles in vivo, et beaucoup sont compati.......
Les auteurs n’ont rien à divulguer.
Ce travail a été financé par des fonds de démarrage fournis au Dr Silviya P Zustiak par l’Université de Saint Louis ainsi que par une subvention de démarrage du Henry and Amelia Nasrallah Center for Neuroscience de l’Université de Saint Louis accordée au Dr Silviya P Zustiak.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
70% Ethanol | Fisher Scientific | LC22210-4 | |
15 mL Conicals | FALCON | 352097 | |
24-Well Plate Ultra Low Attachment plates | Fisher Scientific | 07-200-602 | |
35 mm Petri Dish | Amazon | 706011 | |
4-arm poly(ethylene glycol)-acrylate (4-arm PEG-Ac; 10 kDa) | Laysan Bio | ACRL-PEG-ACRL-10K-5g | |
50 mL Conicals | Fisher Scinetific | 3181345107 | |
6-well AggreWell 400 | StemCell Technologies, Vancouver, Canada | 34421 | Square pyramidal microwells |
anti-adherence rinsing solution | StemCell Technologies, Vancouver, Canada | Cat #: 07010 | |
Aspartic Acid-Arginine-Cysteine-Glycine-Valine-Proline-Methionine-Serine-Methionine-Arginine-Glycine-Cysteine-Arginine- Aspartic Acid (DRCG-VPMSMR-GCRD) peptide | Genic Bio, Shanghai, China | n/a | Custom synthesis |
Chemical Fume Hood | KEWAUNEE | 99151 | |
Corning Matrigel Basement Membrane Matrix, LDEV Free | Corning | 356234 | Basement membrane matrix |
DAPI (4',6-diamidino-2-phenylindole, dihydrochloride) | Thermo Scientific | 62247 | |
Detergent - Triton-X | Sigma Aldrich | T8787 | Nonionic surfactant |
Dimethyl sulfoxide (DMSO) | Fisher Scientific | BP231-100 | |
Disposable Pipettes (1 mL, 2 mL, 5 mL, 10 mL, 25 mL, 50 mL) | Fisher Scinetific | 1 mL: 13-678-11B, 2mL: 05214038, 5mL(FALCON): 357529, 10mL: 13-678-11E, 25mL: 13-678-11, 50mL: 13-678-11F | |
Fetal Bovine Serum | HyClone | SH30073-03 | |
Formaldehyde 37% Solution | Sigma Aldrich | F1635 | |
Glass Plates | Slumpys | GBS4100SFSL | |
Glass Transfer Pipettes | Fisher Scinetific | 5 3/4": 1367820A, 9":136786B | |
Glycine-Arginine-Cysteine-Aspartic Acid-Arginine-Glycine-Aspartic Acid-Serine (GRCD-RGDS) peptide | Genic Bio, Shanghai, China | n/a | Custom synthesis |
Hemacytometer | Bright-Line | 383684 | |
Hydrophobic solution - Repel Silane | GE Healthcare Bio-Sciences | 17-1332-01 | |
Incubator | NUAIRE | NU-8500 | |
Inverted Microscope (Axiovert 25) | Zeiss | 663526 | |
Invitrogen DiOC16(3) (3,3'-Dihexadecyloxacarbocyanine Perchlorate) | Fisher Scientific | D1125 | |
Leica Confocal SP8 | Leica Microsystems Inc. | ||
Light and Flourescent Microscope (Axiovert 200M) | Zeiss | 3820005619 | |
Micro centrifuge tubes | Fisher Scientific | 2 mL: 02681258 | |
Microscope Software | Zeiss | AxioVision Rel. 4.8.2 | |
Nestin Alexa Fluor 594 | Santa Cruz Biotechnology | sc-23927 | |
Parafilm | PARAFILM | PM992 | |
PBS (1x), pH 7.4 | HyClone | SH30256.01 | |
Penicillin Streptomycin | MP Biomedicals | 1670046 | |
Pipette Aid | Drummond Scientific Co. | P-76864 | |
Pipette Tips (1–200 µL, 101–1000 µL) | Fisher Scinetific | 2707509 | |
Plastic Standard Disposable Transfer Pipettes | Fisher Scientific | 13-711-9D | |
Plastic Weigh Boats (100 mL) | Amazon | mdo-azoc-1030 | |
poly(ethylene glycol)-dithiol (PEG-diSH; 3.4 kDa) | Laysan Bio | SH-PEG-SH-3400-5g | |
Polydimehylsiloxane (PDMS) [Slygard 182 Elastomer Kit] | Elsworth Adhesives | 3097358-1004 | Polydimethylsiloxane |
Powder Free Examination Gloves | Quest | 92897 | |
Propidium iodide, 1 mg/mL aqueous soln. | Fisher Scientific | AAJ66584AB | |
RPMI-1640 Medium (1x) | HyClone | SH30027-02 | |
Silicone spacers - Silicone sheet, 0.5 mm thick/13 cm x 18 cm | Grace Bio-Labs | JTR-S-0.5 | |
SOX2 Alexa Fluor 488 | Santa Cruz Biotechnology | sc-365823 | |
Tissue Culture Hood | NUAIRE | NU-425-600 | |
Triethanolamine, ≥99.0% (GC) | Sigma Aldrich | 90279 | |
Trypsin 0.25% (1x) | Sigma Aldrich | SH30042.01 | |
U-87 MG human glioblastoma cells | American Type Culture Collection | HTB-14 |
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