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Hier stellen wir ein einfaches und schnelles Protokoll für den Nachweis von Proteininteraktionen an DNA-Schadensstellen vor.
Die DNA-Schadensantwort ist ein genetischer Informationsschutz, der Zellen davor schützt, beschädigte DNA aufrechtzuerhalten. Die Charakterisierung der Proteine, die in diesem Prozess zusammenarbeiten, ermöglicht die Identifizierung alternativer Ziele für therapeutische Eingriffe bei verschiedenen Krankheiten wie Krebs, altersbedingten Krankheiten und chronischen Entzündungen. Der Proximity Ligand Assay (PLA) hat sich als Werkzeug zur Abschätzung der Wechselwirkung zwischen Proteinen sowie der räumlichen Nähe zwischen Organellen oder zellulären Strukturen herauskristallisiert und ermöglicht die zeitliche Lokalisierung und Co-Lokalisationsanalyse unter Stressbedingungen. Die Methode ist einfach, da sie der herkömmlichen Immunfluoreszenz ähnelt und die gleichzeitige Färbung eines Organellen, einer zellulären Struktur oder eines spezifischen Markers wie Mitochondrien, endoplasmatisches Retikulum, PML-Körper oder DNA-Doppelstrangmarker, yH2AX, ermöglicht. Die Phosphorylierung des S139 an der Histon-2A-Variante, H2AX, damals als yH2AX bezeichnet, wird häufig als sehr empfindlicher und spezifischer Marker für DNA-Doppelstrangbrüche verwendet. Jeder Fokus der yH2AX-Färbung entspricht einem Bruch in der DNA, der einige Minuten nach der Schädigung auftritt. Die Analyse von Veränderungen in yH2AX-Foki ist der gebräuchlichste Assay, um zu untersuchen, ob das Protein von Interesse an der DNA-Schadensantwort (DDR) beteiligt ist. Unabhängig davon, ob eine direkte Rolle an der DNA-Schadensstelle erwartet wird, wird die Fluoreszenzmikroskopie verwendet, um die Kolokalisation des interessierenden Proteins mit yH2AX-Herden zu verifizieren. Abgesehen von den neuen superauflösenden Fluoreszenzmethoden kann die lokale Interaktion mit DNA-Schadensstellen jedoch ein wenig subjektiv sein. Hier zeigen wir einen Assay zur Bewertung der Lokalisierung von Proteinen im DDR-Signalweg unter Verwendung von yH2AX als Marker für die Schädigungsstelle. Dieser Assay kann verwendet werden, um die zeitliche Lokalisation unter verschiedenen Beleidigungen zu charakterisieren, die DNA-Schäden verursachen.
Zelluläre DNA-Schäden treten täglich aufgrund der spontanen chemischen Reaktionen auf und werden auch durch exogene Faktoren wie genotoxische Wirkstoffe (Strahlung und Chemikalien wie Etoposid) und oxidativen Stress verstärkt 1,2,3. Die Zellen verfügen über eine komplexe Maschinerie, die eine Vielzahl verschiedener Arten von DNA-Schäden korrigiert, von der Entfernung von Basen über die replikative Gabeltorsion bis hin zur Unterbrechung der schädlichsten Läsion: dem DNA-Doppelstrangbruch 4,5....
1. Beschichtung der Zelle
HINWEIS: Zellen können in mikroskopisch kleinen Fluoreszenz-Objektträgern, -Kammern oder -Platten ausgesät werden. Die Verwendung von kleinen Deckgläsern oder 96/384-Well-Platten wird empfohlen, um mehrere Bedingungen und Ersatzreagenzien zu testen. Die Verwendung von Deckgläsern ist bei Zelllinien ratsam, die sich leicht ablösen, wie z.B. HEK293-Zellen. Die Deckgläser können zuvor mit einer Poly-L-Lysin-Lösung beschichtet werden, um die Befestigung zu verbessern.
Wir haben eine Nek4-Ku70-Wechselwirkung in Abwesenheit einer Etoposidbehandlung beobachtet. Diese Wechselwirkung kann jedoch auch außerhalb des Zellkerns stattfinden (Abbildung 1A). Die Nek4-Ku70-Wechselwirkung nimmt nach DNA-Schäden zu und konzentriert sich im Zellkern (Abbildung 1A). Im Fall der Nek5-Topoisomerase II β (TOPIIβ)-Interaktion, die in diesem Assay als Positivkontrolle auf der Grundlage von Literaturergebnissen.......
Die Daten zeigen, dass die gleichzeitige Verwendung von PLA mit einem DNA-geschädigten Marker die meisten Informationen in einem DNA-Schadensantwort-Profiling liefern kann, das das räumliche und zeitliche Verhalten der Interaktion nach der Beleidigung zeigt. PLA ist eine vielseitige Methode, die zur Identifizierung der Dimerisierung, zur Bestimmung des Kontakts von Organellen, zur Protein-Nukleinsäure-Interaktion und hauptsächlich zur Protein-Protein-Interaktion verwendet wurde 10,11.......
Die Autoren erklären, dass sie keine konkurrierenden finanziellen Interessen haben.
Wir danken der Fundação de Amparo a Pesquisa do Estado de São Paulo (FAPESP, über Grant Temático 2022/15126-9 an JK und Stipendium 21/09439-1 an LARM) und dem Conselho Nacional de Desenvolvimento Cientifico e Tecnológico (CNPq) für die Finanzierung dieser Forschung.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Black 384-well plates | Perkin Elmer Cell carrier plates | ||
Donkey anti- Rabbit Alexa Fluor 488 | Invitrogen | A21206 | 1:300 |
Duo link Donkey anti Mouse Minus | Sigma | DUO92004 | |
Duolink antibody diluent | Sigma | DUO82008 | |
Duolink blocking solution 1X | Sigma | DUO82007 | |
Duolink Detection reagent Far red | Sigma | DUO92013 | |
Duolink Donkey anti goat plus | Sigma | DUO92003 | |
Duolink Donkey anti rabbit plus | Sigma | DUO92002 | |
Etoposide | Sigma | E1383 | |
Goat anti Nek4 | Santa Cruz Biotechnology | SC-5517 | goat anti Nek4 was used at 1:50 dilution |
Hoechst 33342 | Thermo | H1399 | 0.6 µg/mL |
Leica DMI microscope | Leica | ||
Mouse anti Ku70 | Thermo | MA5-13110 | mouse anti Ku70 was used at 1:100 dilution |
Mouse anti TOPIIβ | Santa Cruz Biotechnology | SC-365071 | 1:25 |
Rabbit anti Nek5 | Santa Cruz Biotechnology | SC-84527 | 1:25 |
Rabbit anti Y H2AX | Cell Signalling | 9718S | 1:100 dilution |
U2OS cell line | ATCC | HTB-96 |
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