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Qui, presentiamo un protocollo semplice e rapido per il rilevamento dell'interazione proteica nei siti di danno al DNA.
La risposta al danno al DNA è una salvaguardia dell'informazione genetica che protegge le cellule dal perpetuare il DNA danneggiato. La caratterizzazione delle proteine che cooperano in questo processo consente l'identificazione di bersagli alternativi per l'intervento terapeutico in diverse malattie, come il cancro, le malattie legate all'invecchiamento e l'infiammazione cronica. Il Proximity Ligand Assay (PLA) è emerso come strumento per stimare l'interazione tra proteine e la prossimità spaziale tra organelli o strutture cellulari e consente la localizzazione temporale e l'analisi della co-localizzazione in condizioni di stress, ad esempio. Il metodo è semplice perché è simile all'immunofluorescenza convenzionale e consente la colorazione simultanea di un organello, di una struttura cellulare o di un marcatore specifico come i mitocondri, il reticolo endoplasmatico, i corpi PML o il marcatore a doppio filamento del DNA, yH2AX. La fosforilazione di S139 nella variante dell'istone 2A, H2AX, allora indicata come yH2AX, è ampiamente utilizzata come marcatore molto sensibile e specifico delle rotture del doppio filamento di DNA. Ogni punto focale della colorazione yH2AX corrisponde a una rottura del DNA che si verifica pochi minuti dopo il danno. L'analisi dei cambiamenti nei focolai di yH2AX è il test più comune per studiare se la proteina di interesse è implicata nella risposta al danno del DNA (DDR). Indipendentemente dal fatto che si preveda un ruolo diretto nel sito di danno al DNA, la microscopia a fluorescenza viene utilizzata per verificare la colocalizzazione della proteina di interesse con i focolai yH2AX. Tuttavia, ad eccezione dei nuovi metodi di fluorescenza a super-risoluzione, per concludere, l'interazione locale con i siti di danno al DNA può essere un po' soggettiva. Qui, mostriamo un saggio per valutare la localizzazione delle proteine nella via DDR utilizzando yH2AX come marcatore del sito di danno. Questo test può essere utilizzato per caratterizzare la localizzazione temporale sotto diversi insulti che causano danni al DNA.
Il danno al DNA cellulare si verifica quotidianamente a causa delle reazioni chimiche spontanee ed è anche aumentato da fattori esogeni come agenti genotossici (radiazioni e sostanze chimiche come l'etoposide) e stress ossidativo 1,2,3. Le cellule hanno un complesso macchinario che corregge una miriade di diversi tipi di danno al DNA, dalla rimozione delle basi alla torsione replicativa della forcella o all'interruzione fino alla lesione più deleteria: la rottura del doppio filamento del DNA 4,5
1. Placcatura delle celle
NOTA: Le cellule possono essere seminate in vetrini microscopici a fluorescenza, camere o piastre. Si consiglia l'uso di piccoli vetrini coprioggetti o piastre da 96/384 pozzetti per testare più condizioni e reagenti di ricambio. L'uso di vetrini coprioggetti è consigliabile per linee cellulari che si staccano facilmente, come le cellule HEK293. I vetrini coprioggetti possono essere precedentemente rivestiti con una soluzione di poli-L-lisina per migliorare l'attaccamento.
Abbiamo osservato l'interazione Nek4-Ku70 in assenza di trattamento con etoposide. Tuttavia, questa interazione può avvenire al di fuori del nucleo (Figura 1A). L'interazione Nek4-Ku70 aumenta dopo il danno al DNA e si concentra nel nucleo (Figura 1A). Nel caso dell'interazione Nek5-Topoisomerasi II β (TOPIIβ), utilizzata in questo test come controllo positivo sulla base dei risultati della letteratura18
I dati mostrano che l'uso del PLA in concomitanza con un marcatore danneggiato dal DNA può fornire la maggior parte delle informazioni in un profilo di risposta al danno del DNA, mostrando il comportamento spaziale e temporale dell'interazione dopo l'insulto. Il PLA è un metodo versatile che è stato utilizzato per l'identificazione della dimerizzazione, la determinazione del contatto degli organelli, l'interazione proteina-acido nucleico e principalmente l'inte.......
Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari concorrenti.
Ringraziamo la Fundação de Amparo a Pesquisa do Estado de São Paulo (FAPESP, attraverso la sovvenzione Temático 2022/15126-9 a JK e la borsa di studio 21/09439-1 a LARM) e il Conselho Nacional de Desenvolvimento Cientifico e Tecnológico (CNPq) per aver finanziato questa ricerca.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Black 384-well plates | Perkin Elmer Cell carrier plates | ||
Donkey anti- Rabbit Alexa Fluor 488 | Invitrogen | A21206 | 1:300 |
Duo link Donkey anti Mouse Minus | Sigma | DUO92004 | |
Duolink antibody diluent | Sigma | DUO82008 | |
Duolink blocking solution 1X | Sigma | DUO82007 | |
Duolink Detection reagent Far red | Sigma | DUO92013 | |
Duolink Donkey anti goat plus | Sigma | DUO92003 | |
Duolink Donkey anti rabbit plus | Sigma | DUO92002 | |
Etoposide | Sigma | E1383 | |
Goat anti Nek4 | Santa Cruz Biotechnology | SC-5517 | goat anti Nek4 was used at 1:50 dilution |
Hoechst 33342 | Thermo | H1399 | 0.6 µg/mL |
Leica DMI microscope | Leica | ||
Mouse anti Ku70 | Thermo | MA5-13110 | mouse anti Ku70 was used at 1:100 dilution |
Mouse anti TOPIIβ | Santa Cruz Biotechnology | SC-365071 | 1:25 |
Rabbit anti Nek5 | Santa Cruz Biotechnology | SC-84527 | 1:25 |
Rabbit anti Y H2AX | Cell Signalling | 9718S | 1:100 dilution |
U2OS cell line | ATCC | HTB-96 |
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